بررسی اثر فرآیند استخراج به روش‌های پرکولاسیون و مایکروویو بر ترکیبات زیست فعال جلبک قرمز Gracilariacorticata

محورهای موضوعی : روشهای استخراج ترکیبات موثره

آتوسا شاعری ¹ (گروه علوم و صنایع غذایی، واحدعلوم وتحقیقات، دانشگاه آزاداسلامی، تهران، ایران.)
مسعود هنرور ² (گروه علوم و صنایع غذایی، واحدعلوم وتحقیقات، دانشگاه آزاداسلامی، تهران، ایران.)
نرگس مورکی ³ (گروه شیلات، دانشکده علوم وفنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاداسلامی، تهران، ایران.)

تاریخ دریافت : 1399/11/26 تاریخ پذیرش : 1400/02/12 تاریخ انتشار : 1403/01/01

کلید واژه: استخراج, مایکروویو, ترکیبات زیست فعال, پرکولاسیون, جلبک Gracilariacortica,

چکیده مقاله :

هدف از این مطالعه بکارگیری روش پرکولاسیون و روش تسهیل شده با مایکروویو جهت استخراج ترکیبات فنولی، کاروتنوئیدی و کلروفیل از جلبک قرمز Gracilaria corticata بود. طی این پژوهش در روش تسهیل شده با مایکروویو از متغیرهای نوع حلال (آب، اتانول و متانول)، زمان (10، 20 و 30 دقیقه)، توان (90، 180 و 270 وات) و نسبت حلال به نمونه (5، 5/12 و 20) استفاده گردید. در روش پرکولاسیون نیز از متغیرهای نوع حلال (آب، اتانول و متانول)، زمان (24، 48 و 72 ساعت) و نسبت حلال به نمونه (5، 5/12 و 20) استفاده شد. براساس نتایج به دست آمده در طی این پژوهش مشخص شد که در روش پرکولاسیون اثر متقابل حلال و زمان، اثر متقابل حلال و نسبت حلال به نمونه، توان دوم نوع حلال روی محتوی کلروفیل aاستخراج شده تاثیر معنی‌داری داشت (05/0>p). برای استخراج کاروتنوئیدها در روش پرکولاسیون حلال نوع 1 (آب) و نسبت حلال به نمونه برابر 20 بیشترین کارآیی را داشتند. متغیرهای روش استخراج پرکولاسیون و روش استخراج تسهیل شده با مایکروویو تاثیر معنی‌داری روی محتوی فنل نداشتند. در روش استخراج تسهیل شده با مایکروویو متغیر نسبت حلال به نمونه و توان دوم نوع حلال تاثیر معنی‌داری (05/0>p) روی محتوی کلروفیل عصاره‌ها داشتند. برای استخراج کاروتنوئیدها با استفاده از روش تسهیل شده با مایکروویو، نوع حلال و نسبت حلال به نمونه تاثیر معنی‌داری روی راندمان استخراج داشتند (05/0>p).

منابع و مأخذ:

1. فراست،‌ م.،‌ خاوری‌نژاد،‌ ر.، نبوی، م. و نامجویان، ف. 1392.‌ فعالیت ‌آنتی ‌اکسیدانی‌ عصاره‌ متانولی‌ جلبک سبز دریایی‌‌(Caulerpa sertularioides‌ f.farlowii). مجله زیست‌شناسی دریا (بیولوژی دریا)، جلد 5، شماره20،56-42.


2. گرمسیری، ا،.رضائی ،م.، سفری، پ. و باباخانی، آ. 1396.‌تعیین ‌ویژگی‌های‌ ضداکسیدانی ‌عصاره‌ جلبک های قرمزگونهHypnea hamulosa ‌‌ وGracilaria‌ corticata

 

 خلیج‌فارس. نشریه علوم و فنون شیلات،جلد 6، شماره3، 145-131.

3. لشکان بایاخانی، آ.، رضائی، م.، رضایی، ک.، سیف آبادی، ج. 1391. بهینه‎سازی استخراج ترکیبات آنتی‎اکسیدانی جلبک قهوهایSargassum angustifolium خلیج فارس به روش استخراج به کمک مایکروویو. مجله شیلات، جلد65، شماره3، 255-243.


4. مرادی، پ. وامینی، ک. 1396. استخراج و شناسایی عصاره‌اندام‌های‌مختلف‌گیاه‌گزنه‌دوپایه Urtica dioica Lو بررسی‌اثرات‌ضد باکتریایی وضد قارچی آن. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران‌، شماره74، 151-85.


5. Andersen R A. 2005. Algal culturing techniques: Elsevier.


6. Ha‌, NTT., Koike, K. and Nhuan, MT. 2014. Improved accuracy of chlorophyll-a concentration estimates from MODIS imagery using a two-band ratio algorithm and geostatistics: As applied to the monitoring of eutrophication processesover Tien Yen Bay (Northern Vietnam).Remote Sensing, 6(1):421-42.


7. Heffernan, N., Smyth, TJ., FitzGerald, RJ., Soler‐Vila, A. and Brunton, N. 2014. Antioxidant activity and phenolic content of pressurised liquid and solid–liquid extracts from four Irish origin macroalgae. International Journal of Food Science & Technology, 49(7):1765-72.


8. Holdt, SL. and Kraan, S. 2011. Bioactive compounds in seaweed: functional food applications and legislation. Journal of applied phycology,23(3):543-97.


9. Kumar, CS., Ganesan, P., Suresh, P. and Bhaskar, N. 2008.Seaweeds as a source of nutritionally beneficial compounds-a review. Journal of Food Science and Technology, 45(1):1.


10. Mabeau, S. and Fleurence, J. 1993. Seaweed in food products: biochemical and nutritional aspects. Trends in Food Science & Technology,4(4):103-7.


11. Maeda, H., Hosokawa, M., Sashima, T., Funayama, K. and Miyashita, K. 2005. Fucoxanthin from edible seaweed, Undaria pinnatifida, shows antiobesity effect through UCP¹expression in white adipose tissues. Biochemical and biophysical research communications, 332(2):392-7.


12. Milledge, JJ., Smith, B., Dyer, PW. and Harvey, P. 2014. Macroalgae-derived biofuel: a review of methods of energy extraction from seaweed biomass. Energies, 7(11):7194-222.


13. Murphy, V., Hughes, H. and McLoughlin P. 2008. Comparative study of chromium biosorption by red, green and brown seaweed biomass. Chemosphere, 70(6):1128-34.


14. Rebey, IB., Bourgou, S., Debez, IBS., Karoui, IJ., Sellami, IH., Msaada, K. and et al. 2012. Effects of extraction solvents and provenances on phenolic contents and antioxidant activities of cumin (Cuminum cyminum L.) seeds. Food and Bioprocess Technology, 5(7):2728-36.


15. Sarkar, CR., Das‌, L., Bhagawati, B. and Goswami, BC. 2012. A comparative study of carotenoid extraction from algae in different solvent systems. Asian J Plant Sci Res, 2:546-59.


16. Smit, AJ. 2004. Medicinal and pharmaceutical uses of seaweed natural products: A review. Journal of applied phycology,16(4):245-62.


17. Sumanta, N., Haque, CI., Nishika, J. and Suprakash, R. 2014. Spectrophotometric analysis of chlorophylls and carotenoids from commonly grown fern species by using various extracting solvents. Res J Chem Sci, 2231: 60-6.


18. Wang , T., Jonsdottir, R. and Ólafsdóttir, G. 2009. Total phenolic compounds, radical scavenging and metal chelation of extracts from Icelandic seaweeds. Food chemistry,116(1):240-8.