بررسی شیوع سیستی سرکوس بویس و سارکوسیستیس در دام های ذبح شده در خرم‌آباد طی سال‌های 1400-1391
الموضوعات :
آزاده رشیدی مهر
1
,
حسن نایب زاده
2
,
Zahra Amini Farsani
3
,
مجید حاتمی نیا
4
1 - دانشکده دامپزشکی دانشگاه لرستان
2 - گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه لرستان، خرم آباد، ایران
3 - Bayesian Imaging and Spatial Statistics Group, Institute for Statistics, Ludwig-Maximilians University of Munich, Germany
4 - اداره کل دامپزشکی لرستان، خرم آباد، ایران
الکلمات المفتاحية: سارکوسیستیس, سیتی‌سرکوس بویس, کشتارگاه دام, خرم‌آباد,
ملخص المقالة :
مدیریت و کنترل موفق بیماری‌ها مستلزم نظارت موثر می‌باشد. بازرسی‌های کشتارگاهی فرصت‌های بسیاری برای جمع‌آوری کارآمد داده‌های مربوط به بیماری‌ها از دام‌های ذبح شده فراهم می‌کند. اهمیت سیستی‌سرکوس بویس و سارکوسیستیس از دیدگاه بهداشت عمومی آشکار است زیرا باعث عفونت مشترک انسان و دام می شوند. این مطالعه گذشته‌نگر به منظور بررسی میزان شیوع سیستی‌سرکوس بویس و کیست‌های ماکروسکوپی سارکوسیستیس در دام‌های ذبح‌شده در شهرستان خرم‌آباد انجام شد. در این بررسی میزان شیوع انگل سیستی‌سرکوس بویس و سارکوسیستیس در گاو، گوسفند و بز طی یک دوره ده ساله (1391-1400) بررسی شد. داده‌ها با استفاده از نرم افزار SPSS (27) با هدف مقایسه شیوع بیماری‌ها بین گونه‌های مختلف دام‌های ذبح شده در هر دو دوره فصلی و سالانه آنالیز شد. نتایج این بررسی نشان داد که سیستی‌سرکوس بویس و سارکوسیستیس دارای الگوی فصلی می‌باشند به طوری که سیستی‌سرکوس بویس در فصل تابستان و سارکوسیستیس در فصل پاییز شیوع بیشتری داشته‌اند. همچنین سارکوسیستیس در گوسفند نرخ شیوع بسیار بالاتری نسبت به گاو و بز دارد و با وجود کاهش شیوع سارکوسیستیس در طی این سال‌ها همچنان میزان شیوع آن در گوسفند بالاست. به طور کلی شیوع بیماری های انگلی مذکور در نشخوارکنندگان در طی سال‌های اخیر کاهش یافته است. با این حال مناطقی که شیوع بالاتری دارند می‌توانند عفونت‌های انگلی را به مناطق دیگر انتقال دهند و به عنوان تهدیدی برای شیوع احتمالی در آینده باشند. بنابراین باید از شیوه‌های مدیریتی کارآمد برای کنترل بیماری‌ها بر اساس فصل شیوع و میزبان‌های واسط در کنار شیوه‌های مدیریت مرتع و درمان راهبردی استفاده کرد.
1. Elshahawy IS, Mohammed E, Gomaa A, Fawaz M. Sarcocystis cruzi in Egyptian slaughtered cattle (Bos taurus): epidemiology, morphology and molecular description of the findings. Iranian Journal of Veterinary Research. 2022;23(4):337.
2. Jaja IF, Mushonga B, Green E, Muchenje V. Financial loss estimation of bovine fasciolosis in slaughtered cattle in South Africa. 2017;2(4):27–34.
3. Borji H, Azizzadeh M, Kamelli M. A retrospective study of abattoir condemnation due to parasitic infections: economic importance in Ahwaz, southwestern Iran. Journal of Parasitology. 2012;98(5):954-7.
4. Ezatpour B, Hasanvand A, Azami M, Anbari K, Ahmadpour F. Prevalence of liver fluke infections in slaughtered animals in Lorestan, Iran. Journal of parasitic diseases. 2015;39:725-9.
5. Charlier J, van der Voort M, Kenyon F, Skuce P, Vercruysse J. Chasing helminths and their economic impact on farmed ruminants. Trends in parasitology. 2014;30(7):361-7.
6. Elbayoumi ZH, El-Bahrawy A, Meshhal HF, Elkhtam AO, AbouLaila M, Hadad GA, et al. Prevalence and Economic Impact of Cysticercus Bovis in Slaughtered Cattle at El-Menofia Governorate, Egypt. Alexandria Journal of Veterinary Sciences. 2023;77(2):55-.
7. Dorny P, Praet N, Deckers N, Gabriël S. Emerging food-borne parasites. Veterinary parasitology. 2009;163(3):196-206.
8. Geinoro T, Bedore B. Prevalence of Cysticercus bovis in cattle slaughtered at Bishoftu municipal abattoir; public health significance and community perception about zoonotic importance of taeniosis in Bishoftu. International Journal of Advanced Research in Biological Sciences. 2019;6(4):52-61.
9. WHO. Investing in health research and development report of the committee on health research relating to the future intervention options, Geneva, Switzerland. 2006. p. 278.
10. Prakas P, Butkauskas D, Juozaitytė-Ngugu E. Molecular identification of four Sarcocystis species in the herring gull, Larus argentatus, from Lithuania. Parasites & vectors. 2020;13:1-6.
11. Dubey J, Calero-Bernal R, Rosenthal B, Speer C, Fayer R. Sarcocystosis of Animals and Humans: CRC Press, Boca Raton; 2015.
12. Šlapeta JR, Modrý D, Votýpka J, Jirků M, Lukeš J, Koudela B. Evolutionary relationships among cyst-forming coccidia Sarcocystis spp.(Alveolata: Apicomplexa: Coccidea) in endemic African tree vipers and perspective for evolution of heteroxenous life cycle. Molecular Phylogenetics and Evolution. 2003;27(3):464-75.
13. Hoeve-Bakker BJA, van der Giessen JWB, Franssen FFJ. Molecular identification targeting cox1 and 18S genes confirms the high prevalence of Sarcocystis spp. in cattle in the Netherlands. International journal for parasitology. 2019;49(11):859-66.
14. Berenji FARIBA, Behniafar H, Zabolinejad NONA, Fata ABDOLMAJID, Salehi M, Sadabadi F. Prevalence of sarcocystis infection in slaughtered sheep by macroscopic and histopathologic method in mashhad. Medical Journal of Mashhad University of Medical Sciences. 2019;62(3):1556-61.
15. Abdullah SH. Investigation of Sarcocystis spp. in slaughtered cattle and sheep by peptic digestion and histological examination in Sulaimani Province, Iraq. Veterinary World. 2021;468:14(2).
16. Ola-Fadunsin SD, Uwabujo PI, Halleed IN, Richards B. Prevalence and financial loss estimation of parasitic diseases detected in slaughtered cattle in Kwara State, North-central Nigeria. Journal of Parasitic Diseases. 2020;44:1-9.
17. Faraji R, Nazari N, Negahdary M. Prevalence of cysticercus of Taenia saginata in cattle slaughtered. International Journal of Research in Medical Sciences. 2015;3(7):1662.
18. Mirzaei M, Nematolahi A, Ashrafihelan J, Rezaei H. Prevalence of infection with the larval form of the cestode parasite Taenia saginata in cattle in northwest Iran and its zoonotic importance. Türkiye Parazitolojii Dergisi. 2016;40(4):190.
19. Abdel Aziz A, Abd Alrahman N, El-Seify M, Sultan K. Cysticercus bovis at Sohag Province: Prevalence, morphological and molecular characterizations. Sohag Journal of junior Scientific Researchers. 2022;2(3):23-32.
20. Dyab AK, Ahmed HA, Hefnawy YA, Abdel Aziz AR, Gomaa MA. Prevalence of Tissue Parasites in Cattle and Buffaloes Slaughtered in El-Minia Governorate Abattoirs, Egypt. Journal of Veterinary Research. 2019;4(2):49-58.
21. Franco C, Schnittger L, Florin-Christensen M. Sarcocystis. In: Florin-Christensen M, Schnittger L (eds) Parasitic protozoa of farm animals and pets: Springer, Cham; 2018.
22. Nematollahia A, Khoshkerdar A, Helan JA, Shahbazi P, Hassanzadeh P. A study on rate of infestation to Sarcocystis cysts in supplied raw hamburgers. Journal of Parasitic Diseases. 2015;39:276-9.
23. Daryani A, Alaei R, Arab R, Sharif M, Dehghan MH, Ziaei H. Prevalence of liver fluke infections in slaughtered animals in Ardabil province, Northwestern Iran. Journal of Animal and Veterinary Advances. 2006;5(5):408-11.
24. Yakubchak O, Taran T. Changes in quality indicators of meat at sarcocystosis. National university of bioresources 2015.
25. Anvari D, Narouei E, Hosseini M, Narouei MR, Daryani A, Shariatzadeh SA, et al. Sarcocystosis in ruminants of Iran, as neglected food-borne disease: A systematic review and meta-analysis. Acta Parasitologica. 2020;65:555-68.
26. Kalantari N, Khaksar M, Ghaffari S, Hamidekish SM. Molecular analysis of Sarcocystis spp. isolated from sheep (Ovis aries) in Babol area, Mazandaran province, Northern Iran. Iranian Journal of Parasitology. 2016;11(1):73-80.
27. Abuelwafa SA, Alaraby MA, Abbas IE, Elmishmishy BM. Prevalence of Sarcocystis species infecting sheep from Egypt. Egyptian Veterinary Medical Society of Parasitology Journal (EVMSPJ). 2016;12(1):74-90.
28. Mavi SA, Teimouri A, Mohebali M, Yazdi MKS, Shojaee S, Rezaian M, et al. Sarcocystis infection in beef and industrial raw beef burgers from butcheries and retail stores: A molecular microscopic study. Heliyon. 2020;6(6):e04171.
29. Vangeel L, Houf K, Chiers K, Vercruysse J, D'HERDE K, Ducatelle R. Molecular-based identification of Sarcocystis hominis in Belgian minced beef. Journal of food protection. 2007;70(6):1523-6.
