پلی‌مورفیسم ژن aroA در استافیلوکوکوس اورئوس‌های جدا شده از شیر خام و پنیر سنتی
الموضوعات :
عزیزه حسین خانی
1
,
علیرضا منادی سفیدان
2
,
جلال شایق
3
1 - دانش‌آموخته کارشناسی ارشد میکروب‌شناسی، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامی، ارومیه، ایران
2 - دانشیار میکروب شناسی گروه علوم آزمایشگاهی، دانشکده پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
3 - استادیار گروه دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شیستر، ایران
تاريخ الإرسال : 04 الأحد , جمادى الثانية, 1442
تاريخ التأكيد : 04 الأربعاء , شعبان, 1442
تاريخ الإصدار : 06 الإثنين , جمادى الأولى, 1442
الکلمات المفتاحية:
PCR-RFLP,
مواد لبنی,
آنزیمTaqI,
aroA,
استافیلوکوکوس اورئوس,
ملخص المقالة :
با توجه به بیماری‌زایی استافیلوکوکوس اورئوس و حضور آن در مواد لبنی و اهمیت انتقال این باکتری به واسطه مواد لبنی، هدف از این مطالعه آنالیز ژن aroA در استافیلوکوکوس اورئوس‌های جدا شده از شیر گاو و پنیر سنتی است. بدین منظور تعداد 40 جدایه استافیلوکوکوس اورئوس شامل 14 جدایه از پنیر سنتی، 19 جدایه از شیر گاو و 7 جدایه از شیر گاومیش به روش PCR-RFLP مورد آزمایش قرار گرفتند. برش آنزیمی پس از تکثیر ژن کوآگولاز با پرایمرهای اختصاصی، با استفاده از آنزیمTaqI به‌عمل آمد. نتیجه تکثیر شده برای ژن aroA تولید باندی با اندازه 1153 جفت باز بود. هضم باند مذکور با آنزیم TaqI سه الگوی مختلف برش از ژن مورد نظر نمایش می‌داد. الگوی اول شامل سه باند، الگوی دوم دو باند و الگوی سوم چهار باند بودند. از 40 نمونه استافیلوکوکوس اورئوس مورد مطالعه در این پژوهش تعداد 29 نمونه حاوی ژن aroA با الگوی سه باندی، 9 نمونه با الگوی دو باندی و 2 نمونه الگوی 4 باندی بودند. با توجه به این که این روش قادر به تشخیص تفاوت بین سویه‌های با منشأ غذایی مختلف نیست، لازم است با روش‌های مکمل جایگزین شود. هم‌چنین نتایج این بررسی نشان‌دهنده نیاز به توجه بیشتر به نکات بهداشتی در تهیه مواد غذایی حاصل از مواد لبنی و نیز توجه بیشتر دامپزشکان در برخورد با استافیلوکوکوس اورئوس و انتخاب رویکرد درمانی مناسب برای آن می‌باشد.
المصادر:
Buzzola F.R, Barbagelata M.S, Caccuri R.L and Sordelli D. (2006). Attenuation and persistence of and ability to induce protective immunity to a Staphylococcus aureus aroA mutant in mice. Infection and Immunity, 74: 3498–3506.
El-Huneidi, W., Bdour, S. and Mahasneh, A. (2006). Detection of enterotoxin genes seg, seh, sei, and sej and of a novel aroA genotype in Jordanian clinical isolates of Staphylococcus aureus. Diagnostic Microbiology and Infectious disease, 56: 127–132.
Galal, H.M., Abdrabou, M.I., Faraag, A.H., Mah, C.K. and Tawfek, A.M. (2021). Evaluation of commercially available aroA delated gene coli O78 vaccine in commercial broiler chickens under Middle East simulating field conditions. Scientific Reports, 11(1): 1–12.
Grossmann, A., Frobose, N.J., Mellmann, A., Alabi, A.S., Schaumburg, F. and Niemann, S. (2021). An in vitro study on Staphylococcus schweitzeri Scientific Reports, 11(1): 1–10.
Marcos, J.Y., Soriano, A.C., Salazar, M.S., Moral, C.H., Ramos, S.S., Smeltzer, M.S. et al. (1999). Rapid identification and typing of Staphylococcus aureus by PCR-restriction fragment length polymorphism analysis of the aroA Journal of Clinical Microbiology, 37: 570–574.
de Oliveira, M.D., Araújo, J.D.O., Galúcio, J.M., Santana, K. and Lima, A.H., (2020). Targeting shikimate pathway: In silico analysis of phosphoenolpyruvate derivatives as inhibitors of EPSP synthase and DAHP synthase. Journal of Molecular Graphics and Modelling, 101: 107735.
Saei, H.D., Ahmadi, M., Mardani, K. and Batavani, R.A. (2010). Genotyping of Staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis based on PCR-RFLP analysis of the aroA Comparative Clinical Pathology, 19(2): 163–168.
Shayegh J., Barzegari A. and Mikaili P. (2013). Molecular characteristics of Staphylococcus aureus isolates from buffalo’s milk. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 19 (4): 665–668.
Seiberling, K.A., Aruni, W., Kim, S., Scapa, V.I., Fletcher, H. and Church, C.A. (2013). The effect of intraoperative mupirocin irrigation on Staphylococcus aureus within the maxillary sinus. International Forum of Allergy & Rhinology, 3(2): 94–98.
Smith, E.M., Green, L.E., Medley, G.F., Bird, H.E., Fox, L.K., Schukken, Y.H. et al. (2005) Multilocus sequence typing of intercontinental bovine Staphylococcus aureus Journal of Clinical Microbiology, 43: 4737–4743.
Stepan, J. Pantucek, R. and Doskar, J. (2004). Molecular diagnostics of clinically important staphylococci. Folia Microbiologica, 49(4): 353–386.
Sung, J.M.L., Lloyd, D.H. and Lindsay, J.A. (2008). Staphylococcus aureus host specificity: comparative genomics of human versus animal isolates by multi-strain microarray. Microbiology, 154(7): 1949–1959.
Zeinhom, M. and Abed, A.H. (2021). Prevalence, characterization, and control of Staphylococcus aureus isolated from raw milk and Egyptian soft cheese. Journal of Veterinary Medical Research, 27(2): 152–160.
_||_
Buzzola F.R, Barbagelata M.S, Caccuri R.L and Sordelli D. (2006). Attenuation and persistence of and ability to induce protective immunity to a Staphylococcus aureus aroA mutant in mice. Infection and Immunity, 74: 3498–3506.
El-Huneidi, W., Bdour, S. and Mahasneh, A. (2006). Detection of enterotoxin genes seg, seh, sei, and sej and of a novel aroA genotype in Jordanian clinical isolates of Staphylococcus aureus. Diagnostic Microbiology and Infectious disease, 56: 127–132.
Galal, H.M., Abdrabou, M.I., Faraag, A.H., Mah, C.K. and Tawfek, A.M. (2021). Evaluation of commercially available aroA delated gene coli O78 vaccine in commercial broiler chickens under Middle East simulating field conditions. Scientific Reports, 11(1): 1–12.
Grossmann, A., Frobose, N.J., Mellmann, A., Alabi, A.S., Schaumburg, F. and Niemann, S. (2021). An in vitro study on Staphylococcus schweitzeri Scientific Reports, 11(1): 1–10.
Marcos, J.Y., Soriano, A.C., Salazar, M.S., Moral, C.H., Ramos, S.S., Smeltzer, M.S. et al. (1999). Rapid identification and typing of Staphylococcus aureus by PCR-restriction fragment length polymorphism analysis of the aroA Journal of Clinical Microbiology, 37: 570–574.
de Oliveira, M.D., Araújo, J.D.O., Galúcio, J.M., Santana, K. and Lima, A.H., (2020). Targeting shikimate pathway: In silico analysis of phosphoenolpyruvate derivatives as inhibitors of EPSP synthase and DAHP synthase. Journal of Molecular Graphics and Modelling, 101: 107735.
Saei, H.D., Ahmadi, M., Mardani, K. and Batavani, R.A. (2010). Genotyping of Staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis based on PCR-RFLP analysis of the aroA Comparative Clinical Pathology, 19(2): 163–168.
Shayegh J., Barzegari A. and Mikaili P. (2013). Molecular characteristics of Staphylococcus aureus isolates from buffalo’s milk. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 19 (4): 665–668.
Seiberling, K.A., Aruni, W., Kim, S., Scapa, V.I., Fletcher, H. and Church, C.A. (2013). The effect of intraoperative mupirocin irrigation on Staphylococcus aureus within the maxillary sinus. International Forum of Allergy & Rhinology, 3(2): 94–98.
Smith, E.M., Green, L.E., Medley, G.F., Bird, H.E., Fox, L.K., Schukken, Y.H. et al. (2005) Multilocus sequence typing of intercontinental bovine Staphylococcus aureus Journal of Clinical Microbiology, 43: 4737–4743.
Stepan, J. Pantucek, R. and Doskar, J. (2004). Molecular diagnostics of clinically important staphylococci. Folia Microbiologica, 49(4): 353–386.
Sung, J.M.L., Lloyd, D.H. and Lindsay, J.A. (2008). Staphylococcus aureus host specificity: comparative genomics of human versus animal isolates by multi-strain microarray. Microbiology, 154(7): 1949–1959.
Zeinhom, M. and Abed, A.H. (2021). Prevalence, characterization, and control of Staphylococcus aureus isolated from raw milk and Egyptian soft cheese. Journal of Veterinary Medical Research, 27(2): 152–160.
