تأثیر سمیت تحت حاد نانو اکسید روی (ZnO NPs) بر برخی شاخص‌های خون شناسی ماهی کاراس طلایی (Carassius auratus

الموضوعات :

سیدعلی اکبر هدایتی ¹ , عبدالرضا جهان بخشی ²

1 - استادیار، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران *(مسوول مکاتبات).
2 - دکتری تخصصی، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران.

تاريخ الإرسال : 29 الثلاثاء , ربيع الأول, 1436 تاريخ التأكيد : 04 الإثنين , صفر, 1437 تاريخ الإصدار : 22 الثلاثاء , جمادى الثانية, 1438

الکلمات المفتاحية: آلودگی, نانو توکسیکولوژی, هماتولوژی, ماهی قرمز,

ملخص المقالة :

زمینه و هدف: پیشرفت فناوری نانو وکاربردهای وسیع نانو ذرات در صنایع مختلف باعث شده است که بررسی اثرات مخرب نانو مواد بر روی موجودات اهمیت زیادی داشته باشد. این تحقیق به منظور بررسی اثرات تحت حاد نانو اکسید روی بر عوامل خونی ماهی کاراس طلایی انجام شد. روش بررسی: در این تحقیق ابتدا با تعیین دامنه ای از غلظت های نانو اکسید روی به منظور تعیین LC50، تلفات ماهیان کاراس طلایی در زمان های 24، 48، 72 و 96 ساعت محاسبه شد. سپس با توجه به میزان LC50 آزمایش جداگانه ای طراحی شد و با القای غلظت تحت حاد این ماده پارامترهای خون شناسی ماهی مورد بررسی قرار گرفت. نمونه های خون در بچه ماهیان کاراس طلایی که 7 روز در معرض غلظت تحت حاد (50% غلظت (LC50نانو اکسید روی قرار داشتند به همراه ماهیانی که در معرض مواد نانو نبودند، گرفته شد. یافته ها: نتایج نشان داد که نانو ذرات روی موجب تغییرات در پارامترهای خونی ماهی کاراس طلایی می گردد که این تغییرات در شاخص های خونی با افزایش سطح گلبول قرمز(RBC)، هموگلوبین، هماتوکریت و MCV در تیماری که تحت تاثیر نانو ذرات روی قرار داشت، همراه بود (5/0>P) و کاهش گلبول های سفید(WBC) در تیماری که ماهیان در معرض غلظت تحت حاد نانو ذرات روی بودند نسبت به گروه شاهد مشاهده شد (5/0>P) اما شاخص های MCH و MCHC تفاوت معنی داری را نشان ندادند (5/0<P). نتیجه گیری: نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که سمیت تحت حاد نانو ذرات روی می تواند بر شاخص های خونی ماهی کاراس طلایی تاثیرگذار بوده و این ماهی نسبت به ماهیان دیگر دارای مقاومت بیشتری در برابر این سم می باشد

المصادر:

1. رنگ هره دشت. م، و میرواقفی. ع، 1391، کابرد فناوری نانو در شیلات. ماهنامه فناوری نانو، 11(6): صص 15-13.


2. مومنی ها. ف، و ندافی. ک، 1391، بررسی سمیت نانوذرات  ZnOتماس یافته با رنگ آبی 29 با استفاده از دافنیا مگنا، مجله تحقیقات نظام سلامت، سال هشتم، شماره دوم.


3. منصف خوشحاب، ز، 1391، سنتز اکسیدروی با استفاده از روش رسوب گیری شیمیایی، انتشارات دانشگاه پیام نور مرکز قزوین، سال اول، شماره چهارم، 11صفحه.


4. Bahmani, M., Kazemi, R., Donskaya, P., 2001. A comparative study of some hematological features in young reared sturgeons (Acipenser persicus and Huso huso). Fish Physiology and Biochemistry 24, 135-140.


5. Hrubec, T.C., Cardinale, J.L., Smith, S.A., 2008. Hematology and plasma chemistry reference intervals for cultured tilapia (Oreochromis hybrid). Veterinary Clinical Pathology 29, 7-12.


6. Roche, H., Bogé, G., 2000. In vivo effects of phenolic compounds on blood parameters of a marine fish (Dicentrarchus labrax). Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Pharmacology, Toxicology and Endocrinology 125, 345-353.


7. Fadaeifard, F. 2010. An investigation of ectoparasites of gold fish. Journal of veterinary modern Research, 1(4): pp: 17-24.


8. Blaxhall, P.C. Daisley, K.W., 1973. Routine hematological methods for use with fish blood .Journal of Fish Biology Volume 5 Issue (6), p. 771-781.


9. Lin, D.H., Tian, X.L., Wu, F.C. and Xing, B.S. 2010. Fate and transport of engineered nano-materials in the environment. J. Environ. Qual. 39: 1896-1908.


10. Goel, K. and K. Gupta . 1985. "Haematobiochemical characteristics of Heteropneustes fossilis under the stress of zinc." Indian Journal of Fisheries 32(2): 256-259. 


11. Zhang XD, Wu HY, Wu D, Wang YY, Chang JH, Zhai ZB, et al. 2010. Toxicologic effects of gold nanoparticles in vivo by different administration routes. Int J Nanomedicine; 5: 771-81.


12. Ololade, I.A., Oginni, O., 2010 .Toxic stress and hematological effects of nickel on African catfish, Clarias gariepinus, fingerlings. Journal of Environmental and Chemical. Ecotoxiccol 22, 14-19.


13. Remyla, S.R., Ramesh, M., Sajwan ,K.S., Senthil Kumar, K., 2008. Influence of zinc on cadmium induced haematological and biochemical responses in a freshwater teleost fish Catla catla. Fish Physiology and Biochemistry 34, 169-174.


14. Kavitha, C., Malarvizhi, A., Senthil Kumaran, S., Ramesh, M., 2010. Toxicological effects of arsenate exposure on hematological, biochemical and liver transaminases activity in an Indian major carp, Catla catla. Food and Chemical Toxicology 48, 2848-2854.


15. Barnhoorn, I.E.J., 1996. Effects of manganese on the haematology of Oreochromis mossambicus and the bioaccumulation of metals in Labeo umbratus. 68 p.


16. Wiench, K., Wohlleben, W., Hisgen, V., Radke, K., Salinas, E., Zok, S., Landsiedel, R. 2009. Acute and chronic effects of nano- and non-nano-scale TiO2 and ZnO particles on mobility and reproduction of the freshwater invertebrate Daphnia magna. Chemosphere 76, 1356–1365.


17. Mortimer M, Kasemets K, Kahru A. 2010. Toxicity of ZnO and CuO nanoparticles to ciliated protozoa Tetrahymena thermophila. Toxicology. 269(2-3): 182-9.


18. Heinlaan M, Ivask A, Blinova I, Dubourguier HC, Kahru A. 2008. Toxicity of nanosized and bulk ZnO, CuO and TiO2 to bacteria Vibrio fischeri and crustaceans Daphnia magna and Thamnocephalus platyurus. Chemosphere. 71(7): 1308-16.


19. Zhu, X. 2008. Oxidative stress and growth inhibition in the freshwater fish (Carassius auratus) induced by chronic exposure to sublethal fullerene aggregates. Environmental Toxicology and Chemistry. 27: 1979-1985.


20. علیشاهی. م، و مصباح. م، 1389، مقایسه سمیت نانوذرات نقره در ماهیان آمور (Ctenopharyngodon idella) شیربت (Barbus grypus) اسکار (Astronorus ocellatus) و سوروم (Cichlosoma severums)، مجله بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز، 2(7): صص 51-45.