بررسی تنوع ژنتیکی جدایه های سودوموناس آئروژینوزا بدست آمده از موارد ورم پستان گاو در شهر تبریز

محورهای موضوعی : باکتری شناسی

سامان مهدوی ¹

1 - استادیار گروه میکروبیولوژی، واحد مراغه، دانشگاه آزاد اسلامی ، مراغه، ایران

تاریخ دریافت : 1401/11/04 تاریخ پذیرش : 1402/03/20 تاریخ انتشار : 1401/12/01

کلید واژه: پسودوموناس آئروژینوزا, ورم پستان گاو, RAPD-PCR,

چکیده مقاله :

باکتری پســودوموناس آئروژینوزا از مهمترین پاتوژن‌های فرصت‌طلب بوده که موجب بروز ورم پســتان‌های تحت بالینی مقاوم به درمان در گاوهای شیری می‌باشد. بررسی الگوی ژنتیکی ایزوله‌ها، در مدیریت عفونت‌های ناشی از این باکتری ضروری است. هدف از این مطالعه، بررسی تنوع ژنتیکی جدایه های سودوموناس آئروژینوزا بدست آمده از موارد ورم پستان گاو در شهر تبریز بود. در این مطالعه توصیفی مقطعی، از 200 راس گاو مبتلا به ورم پستان در گاوداری‌های شهر تبریز نمونه‌گیری انجام شد. پس از انجام آزمایشات بیوشیمیایی اختصاصی و رنگ آمیزی، موارد مثبت جهت آزمایشات مولکولی مورد استفاده قرار گرفتند. از مجموع 200 مورد گاو مبتلا به ورم پستان، 90 ایزوله (%45) پسودوموناس آئروژینوزا شناسایی شد. نتایج حاصل از RAPD-PCR نشان داد که 80 ایزوله (9/%88) از نمونه‌های تحت مطالعه، با هر دو پرایمر مورد استفاده، قابل تایپ بودند و 10 ایزوله (%10) با پرایمرهای مورد استفاده تایپ نشدند. ایزوله‌های تایپ شده در 14گروه مجزا قرار داشتند و هر کدام حاوی چندین نمونه پسودوموناس آئروژینوزا بودند. گروه‌های I و VII بیشترین ایزوله را داشتند و گروه‌های IX، X و XII دارای کمترین ایزوله بودند. نتایج نشان داد که RAPD-PCR، روش ابزار ژنوتیپ‌بندی با قدرت افتراق بالا در مطالعات اپیدمیولوژی و پلی‌مورفیسم سویه‌های پسودوموناس آئروژینوزا می‌باشد. با توجه به داده‌های این مطالعه، کنترل منابع عفونت در ورم پستان ناشی از این باکتری، جهت کنترل و پیشگیری از انتقال این باکتری تأکید می‌شود.

منابع و مأخذ:

تفویضی، ف.، تاج آبادی ابراهیمی، م.، حیدری نصر آبادی، م.، بهرامی، ه. (1390). بررسی تنوع ژنتیکی لاکتوباسیل­های جدا شده از محصولات لبنی سنتی ایران توسط .RAPD PCR مجله تازه­های بیوتکنولوژی سلولی و مولکولی. دوره 1، شماره 3، صفحات 42-33.

2. حیدری، ف.، راشکی قلعه­نو، ز. (1394). بررسی جمعیت شناختی مولکولی و حساسیت دارویی سودوموناس آئروژینوزای جداشده از بیماران بستری در بیمارستانهای آموزشی زابل. مجله دانشگاه علوم پزشکی بیرجند. دوره 22، شماره 4، صفحات 391-386.


3. صادق­پور، م.، استبرقی، ا.، مختاری، ع. ر.، ریحانی، س. (1396). بررسی الگوی مقاومت آنتی­بیوتیکی و عوامل میکروبی جدا شده از نمونه­های شیر خام گرفته شده از موارد حاد و تحت حاد ورم پستان در دام­ها. پیاورد سلامت. دوره 11، شماره 6، صفحات 659-650.


4. مهدوی، س. (1392). مطالعه فراوانی شش ژن مولد آنتروتوکسین در استافیلوکوکوس آرئوس­های جدا شده از پنیرهای محلی به روش Multiplex PCR . بهداشت مواد غذایی. دوره 3، شماره 4، صفحات 7-1.


5. Akanji, B. O., Ajele, J. O., Onasanya, A., Oyelakin, O. (2011). Genetic fingerprinting of Pseudomonas aeruginosa involved in nosocomial infection as revealed by RAPD-PCR markers. Biotechnology. 10:70-77.


6. Chen, J., Su, Z., Liu, Y., Wang, S., Dai, X., Li, Y., Peng, S., Shao, Q., Zhang, H., Wen, P., Yu, J., Huang, X., Xu, H. (2009). Identification and characterization of class 1 integrons among Pseudomonas aeruginosa isolates from patients in Zhenjiang, China. International Journal of Infectious Diseases. 13: 717-721.


7. Daly, M., Power, E., Bjorkroth, J., Sheehan, P., O’ Connell, A., Colgan, M., Korkeala, H., Fanning, S. (1999). Molecular analysis of Pseudomonas aeruginosa: epidemiological investigation of mastitis outbreaks in Irish dairy herds. Applied and Environmental Microbiology, 65: 2723- 2729.


8. Da Silva Filho, L. V., Levi, J. E., Bento, C. N., Rodrigues, J. C., da Silvo Ramos, S. R. (2001). Molecular epidemiology of Pseudomonas aeruginosa infections in a cystic fibrosis outpatient clinic. Journal of Medical Microbiology. 50:261-7.


9. Eftekhar, F., Hosseinkhan, N., Asgharzadeh, A., Tabatabaii, A. (2009). Genetic profiling of Pseudomonas aeruginosa isolates from Iranian patients with cystic fibrosis using RAPD-PCR and PFGE. Iranian Journal of Basic Medical Sciences. 12:126-32.


10. Ghaboli Mehrbani, R. M. S., Khakpour, M. (2012). Assess the antibiotic susceptibility of bacteria causing mastitis in dairy cows dry period in Tabriz. Journal of Veterinary Laboratory Research. 4: 140.


11. Ktari, S., Mnif, B., Znazen, A., Rekik, M., Mezghani, S., Mahjoubi-Rhimi, F., Hammami, A. (2011). Diversity of beta-lactamases in Pseudomonas aeruginosa isolates producing metallo-beta-lactamase in two Tunisian hospitals. Microbial Drug Resistance, 17: 25-30.


12. Kong, K. F., Jayawardena, S. R., Indulkar, S. D., Del Puerto, A. (2005). Pseudomonas aeruginosa AmpR is a global transcriptional factor that regulates expression of AmpC and PoxB β-lactamases, proteases, quorum sensing, and other virulence factors. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 49: 4567-4575.


13. Maiden, M. C. (2006). Multilocus sequence typing of bacteria. Annual Review of Microbiology. 60:561-88.


14. Nanvazadeh, F., Dokht Khosravi, A., Zolfaghary, M. R., Parhizgari, N. (2013). Genotyping of Pseudomonas aeruginosa strains isolated from two wards of Taleghani Hospital by RAPD-PCR in Ahvaz city of Iran. Jentashapir Scientific Medical Journal. 2: 49-58.


15. Qingyu, J., Yufeng, Y., Kerui, X., Xiudong, B., Mengchao, L., Bei, Z., Chunqiu, L., Zhenyu, Y., Jianhua, H., Dongbo, S. (2015). Microbial diversity analysis of subclinical mastitis in dairy cattle in Northeast China. African Journal of Microbiology Research. 9: 687-694.


16. Salimi, H., Owlia, P., Yakhchali, B., Rastegar Lari, A. (2010). Characterization of Pseudomonas aeruginosa in burn patients using PCR- Restriction Fragment Length Polymorphism and Random Amplified Polymorphic DNA Analysis. Iranian Journal of Medical Science. 35:236-41.


17. Singh, A., Goering, R.V., Simjee, S., Foley, S.L., Zervos, M. J. (2006). Application of molecular techniques to the study of hospital infection. Clinical Microbiology Review. 19:512-30.


18. Tang, Y. W., Stratton, C. W. (2013). Advanced techniques in diagnostic microbiology. 2^nd Edition. New York: Springer: 91: 246.


19. Thangaraj, M., Prem, V., Ramesh, T., Lipton, A. P. (2011). RAPD fingerprinting and demonstration of genetic variation in three pathogens isolated from Mangrove environment. Asian Journal of Biotechnology. 3:269-74.


20. Tazumi, A., Maeda, Y., Buckley, T., Millar, B., Goldsmith, C., Dooley, J., Stuart Elborn, J., Matsuda, M., Moore, J. (2009). Molecular epidemiology of clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa isolated from horses in Ireland. Irish Veterinary Journal. 62:456-9.


21. Williams, J. G., Kubelik, A. R., Livak, K. J., Rafalski, J. A., Tingey, S. V. (1990). DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Nucleic Acids Research. 18:6531-5.


22. Winn, W., Allen, S., Janda, W., Koneman, E., Procop, G., Schreckenberger, P., Woods, G. (2006). Koneman’s color atlas and textbook of diagnostic microbiology. 6^th Edition, Lippincott Williams and Wilkins. New York: 752-770