کد مقاله : JFH-2307-1411 (R1) بازدید : 202 صفحه: 65 - 77

نوع مقاله: پژوهشی

تعیین بار میکروبی کلی، آلودگی کلی‌فرمی و الگوی مقاومت آنتي‌بیوتیکي سویه‌های اشريشیاکلي در میگوی عرضه‌شده در شهر کرمان

محورهای موضوعی : بهداشت مواد غذایی

فائزه فاتحی ¹ , محبوبه باقری ² , امیر ستاری ³

1 - دانش‌آموخته دکترای عمومی دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران
2 - استادیار گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی بردسیر، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران
3 - دانشیار گروه بهداشت مواد غذایی و بهداشت عمومی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران

تاریخ دریافت : 1402/05/10 تاریخ پذیرش : 1402/08/01 تاریخ انتشار : 1402/11/15

کلید واژه: میگو, شمارش کلی, کلی‌فرم مدفوعی, اشریشیاکلی, مقاومت آنتی‌بیوتیکی,

چکیده مقاله :

میگـو یک منبـع پروتئین دریایی پرطرفدار است که ارزش غذایی و اقتصادی بالایی دارد. در این مطالعه، شمارش باکتری‌های مزوفیل هوازی (روش شمارش پلیت هوازی)، کلی‌فرم، کلی‌فرم مدفوعی و اشریشیاکلی (روش محتمل ترین تعداد) به منظور ارزیابی کیفیت میکروبی میگوی عرضه شده در سطح فروشگاه‌های شهر کرمان در 21 نمونه‌ی میگو خام در بازه زمانی 3 ماهه در پاییز سال 1400 انجام پذیرفت. در ادامه مقاومت آنتی‌بیوتیکی 125 جدایه‌ی اشریشیاکلی در برابر 9 آنتی‌بیوتیک سفوتاکسیم، سیپروفلوکساسین، نیتروفورانتوئین، جنتامایسین، سفکسیم، آمیکاسین، سولفامتوپریم، سفتریاکسون و نالیدیکسیک اسید به روش انتشار دیسک مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج نشان داد که بیشترین میزان بار میکروبی 108×8 CFU/ml و کمترین میزان آن 105×3/3 CFU/ml بود. شمارش کلی‌فرم در نمونه‌ها از صفرکلی‌فرم در گرم درچهار نمونه (19درصد) تا 97/4383 کلی‌فرم درگرم متغیر بود. همچنین شمارش کلی‌فرم‌های مدفوعی در این مطالعه‌ در دامنه‌ی 32/1898-0 کلی‌فرم مدفوعی در‌گرم بود و در 9 نمونه (86/42 درصد) کلی‌فرم مدفوعی مشاهده نشد. باکتری‌ اشریشیاکلی از 14/57 درصد از نمونه‌ها جدا شد. بیشترین مقاومت در‌ برابر آنتی‌بیوتیک نالیدیکسیک اسید (8/16 درصد) و بیشترین حساسیت در برابر آنتی‌بیوتیک نیتروفورانتوئین و آمیکاسین (2/99‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌‌ درصد) مشاهده شد. وضعیت مقاومت آنتی‌بیوتیکی در جدایه ها نگران‌کننده نبود اما آلودگی به کلی‌فرم مدفوعی و اشریشیا‌کلی حاکی از شرایط نامناسب بهداشتی است و بایستی با نظارت بیشتر و همچنین تهیه و آموزش پروتکل‌های صحیح صید، حمل، نگهداری و آماده‌سازی میگو، وضعیت بهداشتی و کیفیت میگو های عرضه شده را افزایش داد.

چکیده انگلیسی:

Shrimp, a valuable marine protein source, was assessed for microbial quality in Kerman stores over a 3-month period during fall 2021. Aerobic mesophilic bacteria, coliforms, fecal coliforms, and Escherichia coli were quantified in 21 raw shrimp samples. Additionally, antibiotic resistance profiles of 125 Escherichia coli isolates against nine antibiotics (cefotaxime, ciprofloxacin, nitrofurantoin, gentamicin, cefixime, amikacin, sulfamethoprim, ceftriaxone, and nalidixic acid) were evaluated via disk diffusion assay. Results indicated microbial counts ranging from 3.3×105 to 8×108 CFU/ml (5.52 to 8.9 log CFU/ml). Coliform counts varied from zero per gram in 19% of samples to 4383.97 per gram. Fecal coliforms ranged from 0.1898 to 0.32 per gram, absent in 42.86% of samples. E. coli was isolated from 57.14% of samples, exhibiting the highest resistance to nalidixic acid (16.8%) and the highest sensitivity to nitrofurantoin and amikacin (99.2%). While antibiotic resistance levels were not alarming, the presence of fecal coliforms and E. coli suggests inadequate hygiene, necessitating closer monitoring and adherence to proper protocols for catching, transportation, storage, and preparation of shrimp.

منابع و مأخذ:

متن کامل:

«مقاله پژوهشی: 1411»

تعیین بار میکروبی کلی، آلودگی کلی‌فرمی و الگوی مقاومت آنتي‌بیوتیکي سویه‌های اشريشیاکلي در میگوی عرضه‌شده در شهر کرمان

کیفیت میکروبی میگو در شهر کرمان

فائزه فاتحی1، محبوبه باقری2، امیرستاری3*

1- دانش‌آموخته دکترای عمومی دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران

2- استادیار گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی بردسیر، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران

3- دانشیار گروه بهداشت مواد غذایی و بهداشت عمومی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران

*نویسنده مسوول مکاتبات:amirsatari@uk.ac.ir

(دریافت مقاله: 10/5/1402 پذیرش نهایی: 1/8/1402)

چکیده

واژه‌های کلیدی: میگو، شمارش کلی، کلی‌فرم مدفوعی، اشریشیاکلی، مقاومت آنتی‌بیوتیکی

مقدمه

میگـو یک منبـع پروتئین دریایی پرطرفدار در ‌سراسـر جهان است که ارزش غذایی و اقتصادی بالایی دارد (Qing et al., 2005). صنعت میگو به‌عنوان یک صنعت جدید در اقتصاد کشور مطرح می‌باشد و در طی سه دهه گذشته تولید میگوی پرورشی به‌حدود ۴۵ هزار تن در ‌سال رسیده است. این موضوع در‌حالی است که میزان صید دریایی میگو در‌طی سال‌های گذشته همیشه بین ۴ تا ۸ هزار تن ثابت بوده است (Abdulhai et al.,2019).

بیماری‌های منتقله از غذا طیف وسیعی از بیماری‌هایی هستند که پس‌از خوردن غذا‌های آلوده بروز پیدا می‌کنند و سالیانه منجر ‌به خسارات اقتصادی چشمگیر و موارد بستری و مرگ‌و‌میر فراوان می‌شوند. غذاهای دریایی به‌خصوص میگو نقش مهمی در بیماری‌های غذازاد دارند (Abdolhai et al., 2019). کلی‌فرم‌ها در علم ایمنی مواد غذایی به‌عنوان شاخصی از وضعیت بهداشتی فراوری ماده غذایی مطرح هستند. اشریشیا‌کلی به‌عنوان شاخص آلودگی مدفوعی در آب و مواد غذایی مطرح می‌باشد و همچنین به‌عنوان گونه شاخص در مطالعات مربوط‌به بررسی وضعیت مقاومت آنتی‌بیوتیکی در میکروفلور حیوانات مزرعه و انسان مورد استفاده قرار می‌گیرد (de Miranda et al., 2022).

در سال‌های اخیر موضوع مقاومت آنتی‌بیوتیکی به‌یک نگرانی جهانی و چالش مهم در مبحث سلامت عمومی تبدیل شده است و به‌طور گسترده‌ای در‌میان حیوانات، آبزیان و انسان در‌حال گسترش می‌باشد. این روند موجب ناکامی در‌ درمان عفونت‌ها شده است (Xie et al., 2018). آنتی‌بیوتیک‌ها برای درمان عفونت‌ها در انسان‌ها، حیوانات و آبزیان مصرف می‌شوند و همچنین در مزارع پرورشی به‌عنوان مکمل‌های غذایی مورد استفاده قرار می‌گیرند. میکروارگانیسم‌های مقاوم یا عوامل مقاومت آنتی‌بیوتیکی از طریق فاضلاب وارد رودخانه‌ها شده و با آلوده شدن آب و محیط به آبزیان منتقل می‌شوند (Sanz et al., 2022). از‌آن‌جایی‌که باکتری‌هایی چون اشریشیا‌کلی به زنجیره غذایی انسان راه پیدا می‌کنند نقش بالقوه‌ی آن‌ها به‌عنوان مخزن ژن‌های مقاومت آنتی‌بیوتیکی غیرقابل‌انکار است (Rasheed et al., 2014).

باتوجه‌ به دستکاری زیاد میگو در پروسه‌ی صید، حمل‌ونقل، آماده‌سازی و مخاطرات ناشی از آن، داشتن اطلاعات کافی از وضعیت ایمنی و بهداشتی آن ضروری به‌نظر می‌رسد. تا‌به‌حال مطالعه‌ای در خصوص شاخص‌های کیفی و بهداشتی مربوط‌به این ماده غذایی مانند تعداد کلی میکروارگانیسم‌‍‌‌‌‌‌‌‌ها و میزان آلودگی این فرآورده به کلی‌فرم‌ها در شهر کرمان به‌عنوان مرکز وسیع‌ترین استان کشور صورت نپذیرفته است. از طرفی مطالعات محدودی در‌مورد مقاومت آنتی‌بیوتیکی جدایه‌های اشریشیا‌کلی از میگو انجام شده است و برای آنکه بتوان استراتژی مناسبی برای تجویز و مصرف آنتی‌بیوتیک‌ها داشت لازم است که درک درستی از وضعیت مقاومت آنتی‌بیوتیکی در جمعیت میکروبی آبزیان داشته باشیم. هدف از این مطالعه ارزیابی تعداد کلی میکروارگانیسم‌ها، میزان آلودگی به کلی‌فرم‌ها و تعیین الگوی مقاومت آنتي‌بیوتیکي سویه های اشريشیاکلي در نمونه‌های میگوی اخذ شده از شهر کرمان بود.

مواد و روش‌ها

به منظور تهیه نمونه میگو و آماده‌سازی رقت‌های متوالی تعداد بیست‌و‌یک نمونه میگوی کامل به صورت تصادفی در‌فاصله بین مهر تا آذرماه 1400 از فروشگاه‌های ماهی و میگوی سطح شهر کرمان تهیه و با‌ حفظ زنجیره سرما به آزمایشگاه بهداشت‌ مواد‌غذایی دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید باهنر کرمان منتقل شد. جهت تهیه رقت‌های متوالی، 25 گرم از‌ ‌هر نمونه میگو (کامل به همراه پوست) به ‌همراه 225 میلی‌لیتر پپتون واتر 1/0 درصد استریل (Merck, Germany) در داخل کیسه‌های استاندارد ریخته شده و با استفاده از دستگاه بگ میکسر (Bag mixer, Interscience®, England) سوسپانسیون یکنواخت باکتریایی جهت ساخت رقت‌های متوالی لگاریتمی بعدی تهیه شد (ISIRI,8923/3).

به منظور شمارش کلی میکروارگانیسم‌های مزوفیل هوازی به روش کشت سطحی از 3 رقت متوالی آخر به صورت سه‌گانه (سه پلیت به ازای هر رقت)، بر روی محیط کشت آگار مغذی (Merck, Germany) کشت سطحی داده شد و رقتی که در هر پلیت آن تعداد 300-30 کلنی رشد کرده بود برای شمارش انتخاب و به روش استاندارد شمارش شد و تعداد کلی میکروارگانیسم‌ها بر حسب واحد تشکیل دهنده‌ی پرگنه درهر میلی‌لیتر (CFU/ml) گزارش شد (ISIRI,5272/2). برای شمارش کلی فرم‌ها و کلی فرم مدفوعی، اشریشیا‌کلی و تایید اشریشیا‌کلیاز روش محتمل‌ترین تعداد (MPN) به صورت سه لوله‌ای استفاده شد. در مرحله‌ی اول برای هر نمونه سه چینش سه لوله‌ای لاکتوز براث (Quelab, Canada) حاوی لوله دورهام تهیه شد (هر رقت سه لوله) و از هر رقت یک میلی ‌لیتر به هر یک از لوله‌ها تلقیح شد. سپس لوله‌ها در دمای 35 درجه سلسیوس به مدت زمان 48 ساعت گرمخانه‌گذاری شدند. لوله‌های دارای کدورت و تجمع گاز در لوله‌ی دورهام به‌ عنوان مثبت گزارش شد.

در مرحله‌ی دوم با استفاده از آنس حلقه‌ای استریل از هر لوله‌ی مثبت در مرحله‌ی قبل (بر اساس مشاهده کدورت و تجمع گاز) به یک لوله محیط بریلینت گرین بایل لاکتوز براث (Biolife, Italy) حاوی لوله دورهام تلقیح انجام شد. سپس لوله‌ها در دمای 35 درجه سلسیوس به مدت 48 ساعت گرمخانه‌گذاری شدند. در ادامه جهت تخمین تعداد کلی‌فرم درهر نمونه از فرمول توماس (Swanson et al., 2001) به شرح ذیل استفاده شد:

MPN/g = محتمل‌ترین تعداد در هر گرم از ماده غذایی

P = تعداد لوله‌های مثبت

N = مقدار کل نمونه در تمام لوله‌های منفی

T= مقدار کل نمونه در تمام لوله‌ها

و تخمین حدود اطمینان 95 درصد از طریق زیر محاسبه گردید:

a = نسبت رقیق‌سازی (10 تایی)

n = تعداد لوله‌ها در هر رقت

در مرحله‌ی سوم برای شمارش کلی‌فرم‌های مدفوعی مانند مرحله دوم عمل شد با این تفاوت که دمای گرمخانه‌گذاری لوله‌ها جهت رشد کلی فرم های مدفوعی 5/44 درجه سلسیوس بود. در ادامه جهت تخمین تعداد کلی‌فرم مدفوعی در هر نمونه از فرمول توماس استفاده شد.

از لوله‌های مثبت مرحله‌ی کلی‌فرم‌ مدفوعی روی پلیت حاوی محیط کشت ائوزین متیلن بلو بصورت خطی کشت داده شد و دمای 37 درجه سلسیوس به مدت زمان 48 ساعت گرمخانه گذاری انجام شد. در صورت رشد کلنی‌های سبزرنگ با جلای فلزی اشریشیا‌کلی مشکوک تلقی شد. تایید جدایه‌ها از طریق آزمون‌های بیوشیمیایی انجام شد. در این مرحله‌ جدایه‌های انتخاب شده در محیط هایTSI ،SIM ، MRVP و سیترات (Merck, Germany) کشت داده شدند. در ادامه جدایه‌ها بر اساس نتایج تست‌های بیوشیمیایی به عنوان باکتری اشریشیاکلی مورد تأیید قرار گرفتند. در صورت تایید کلنی اشریشیاکلی، لوله‌ی مربوطه از نظر اشریشیاکلی مثبت تعیین شد (Chandrapati and Williams, 2014).

در نهایت جهت انجام بررسی مقاومت فنوتیپی آنتی‌بیوتیکی در جدایه‌های اشریشیاکلی هر یک از جدایه‌ها در براث مغذی تلقیح شده و به مدت 18 ساعت در 35 درجه سلسیوس گرمخانه‌گذاری شد. سوسپانسیون سلولی با کدورت معادل 5/0 مک فارلند آماده‌سازی شد و از آن با یک سواب استریل به صورت کشت چمنی روی محیط کشت مولر-هینتون (Merck, Germany) کشت داده شد. سپس با یک پنس استریل دیسک‌های آنتی‌بیوتیکی روی سطح پلیت قرار داده شد و از دیسک کاغذی خالی به‌عنوان کنترل منفی استفاده شد. پلیت‌ها در دمای 37 درجه سلسیوس به مدت 24 ساعت گرمخانه‌گذاری شدند. آزمون برای هر جدایه سه بار تکرار شد. قطر هاله عدم رشد اطراف دیسک اندازه‌گیری و ثبت شد و براساس معیار‌های موسسه استانداردهای آزمایشگاهی و بالینی (CLSI, M100S) مورد تفسیر قرار گرفت. نتایج به صورت حساس، نیمه‌حساس و مقاوم بر اساس جدول 1 گزارش شد.

جدول 1- معیار‌های موسسه استانداردهای آزمایشگاهی و بالینی (CLSI) برای برخی آنتی‌بیوتیک‌ها بر مبنای قطر هاله عدم رشد اطراف دیسک (اعداد برحسب میلی‌متر)

نوع آنتی‌بیوتیک	کد	حساس	نیمه‌حساس	مقاوم
ونکومایسین	V	≥17	15-16	≤14
آمیکاسین	AN	≥17	15-16	≤14
جنتامایسین	GM	≥15	13-14	≤12
سیپروفلوکساسین	CP	≥21	16-20	≤15
تری‌متو‌پریم-سولفامتوکسازول	SXT	≥16	11-15	≤10
نیتروفورانتوئین	FM	≥17	15-16	≤14
سفتری‌اکسون	CRO	≥18	13-17	≤12
نالیدیکسیک‌اسید	NA	≥19	14-18	≤13
سفوتاکسیم	CTX	≥26	23-25	≤22
سفیکسیم	CFM	≥19	14-18	≤13

یافته‌ها

-شمارش کلی میکروارگانیسم‌های مزوفیل هوازی

نتایج حاصل از شمارش کلی میکروارگانیسم‌ها نشان داد که بیشترین میزان بار میکروبی 108×8 CFU/ml (9/8 log CFU/ml) و کمترین میزان 105×3/3 CFU/ml (52/5 log CFU/ml) بود

براساس نتایج شمارش کلی‌فرم‌ها به روش بیشترین تعداد احتمالی، تعداد کلی‌فرم‌ها در نمونه‌های ما از صفر در چهار نمونه تا 102×84/43 کلی‌فرم در گرم متغیر بود. در 4 نمونه (19 درصد) از نمونه‌ها میزان آلودگی صفر، در 5 نمونه (8/23%) از نمونه‌ها میزان آلودگی کمتر از 100، در 10 نمونه (6/47 درصد) میزان آلودگی 1000-100 و در 2 نمونه (6/9 %) از نمونه‌ها آلودگی بالای 1000 باکتری کلی‌فرم در هر گرم ماده غذایی بود.

نتایج حاصل از شمارش کلی‌فرم‌های مدفوعی در دامنه 102×98/18–0 کلی‌فرم مدفوعی در گرم بود. به‌طور کلی از 14/57 % از نمونه‌ها باکتری‌های کلی‌فرم مدفوعی جدا شد و در تعداد 9 نمونه (86/42 %) با روش بیشترین تعداد احتمالی کلی‌فرم مدفوعی شناسایی نشد. نتایج در جدول 2 به‌صورت خلاصه آورده شده است.

جدول 2 - نتایج شمارش میکروارگانیسم‌های مزوفیل هوازی، کلی‌فرم‌ها، کلی‌فرم مدفوعی و اشریشیا کلی

ردیف

کد نمونه

شمارش کلی میکروارگانیسم‌ها

شمارش کلی‌فرم

شمارش کلی‌فرم مدفوعی

شمارش اشریشیاکلی

واحد تشکیل دهنده کلنی/گرم

لگاریتم واحد تشکیل دهنده کلنی/گرم

محتمل ترین تعداد/گرم

حدود اطمینان 95%

محتمل ترین تعداد/گرم

حدود اطمینان 95%

محتمل ترین تعداد/گرم

حدود اطمینان 95%

پایینترین

بالاترین

پایینترین

بالاترین

پایینترین

بالاترین

22/7( 1 )

106 × 4/4

64/6

9/35

71/15

05/82

22/7(2 )

107 × 45/6

81/7

06/457

97/199

66/1044

49/30

34/13

69/69

49/30

34/13

69/69

29/7 (3 )

106 × 93/1

29/6

29/7 ( 4 )

107 × 83/8

95/7

03/95

58/41

20/217

8/8 ( 5 )

107 × 89/1

28/7

90/35

71/15

05/82

90/35

71/15

05/82

90/35

71/15

05/82

8/8 ( 6 )

107 × 41/2

38/7

8/8 ( 7 )

107 × 91/1

28/7

13/8 (8 )

105 × 3/3

52/5

13/8 ( 9 )

105 × 4/1

61/5

03/95

58/41

20/217

13/8 ( 10 )

108 × 2/1

08/8

06/457

97/199

66/1044

39/73

11/32

74/167

49/30

34/13

69/69

27/8 ( 11 )

107 × 7/5

76/7

55/150

87/65

10/344

08/61

72/26

60/139

08/61

72/26

60/139

27/8 (12 )

106 × 13/8

91/6

89/226

27/99

58/518

54/122

61/53

08/280

54/122

61/53

08/280

2/9( 13 )

107 × 56/2

41/7

95/61

10/27

59/141

95/61

10/27

59/141

95/61

10/27

59/141

2/9 ( 14 )

107 ×1/2

32/7

17/108

33/47

23/247

17/108

33/47

23/247

17/108

33/47

23/247

4/9 ( 15 )

108 × 8

9/8

12/492

31/215

79/1124

12/492

31/215

79/1124

12/492

31/215

79/1124

4/9 ( 16 )

108 × 46/2

39/8

97/4383

08/1918

10020

59/1156

03/506

50/2643

59/1156

03/506

50/2643

4/9 ( 17 )

108 × 13/1

05/8

50/717

92/313

92/1639

17/548

59/255

18/1335

17/584

59/255

18/1335

6/9( 18 )

108 × 5/3

54/8

32/1898

56/830

80/4338

32/1898

56/830

80/4338

32/1898

56/830

80/4338

6/9 ( 19 )

108 × 45/2

39/8

08/312

54/136

29/713

08/312

54/136

29/713

08/312

54/136

29/713

18/9 ( 20 )

106 × 23/2

35/6

34/110

28/48

19/252

18/9 ( 21 )

106 × 3/8

92/6

78/192

35/84

62/440

به‌طورکلی از 14/57 درصد از نمونه‌ها باکتری‌ اشریشیاکلی جدا شد. در مجموع تعداد 125 سویه اشریشیاکلی از نمونه‌ها جدا و تایید شد و مقاومت آنتی‌بیوتیکی آن‌ها نسبت به 9 آنتی‌بیوتیک مورد استفاده بررسی گرفت. نتایج در جدول شماره 3 قابل مشاهده است.

جدول 3- تعداد جدایه ها و درصد جدایه‌های مقاوم، نیمه حساس و حساس به تفکیک نسبت به آنتی بیوتیک های آمیکاسین، جنتامایسین، سیپروفلوکساسین، تریمتوپریم سولفامتوکسازول، نیتروفورانتویین، سفتریاکسون، نالیدیکسیک اسید، سفوتاکسیم و سفیکسیم در 125 جدایه‌ی اشریشیاکلی

تعداد جدایه های مقاوم (درصد)	تعداد جدایه های نیمه‌حساس (درصد)	تعداد جدایه های حساس (درصد)	آنتی‌بیوتیک مورد بررسی
(0%) 0	(8/0%) 1	(2/99%) 124	آمیکاسین
(2/3%) 4	(8/4%) 6	(92%) 115	جنتامایسین
(6/5%) 7	(8/0%) 1	(6/93%) 118	سیپروفلوکساسین
(4/6%) 8	(6/5%) 7	(88%) 110	تریمتوپریم- سولفامتوکسازول
(0%) 0	(8/0%) 1	(2/99%) 124	نیتروفورانتویین
(0%) 0	(6/1%) 2	(4/98%) 123	سفتریاکسون
(8/16%) 21	(20%) 25	(2/63%) 72	نالیدیکسیک اسید
(8/0%) 1	(8/12%) 16	(4/86%) 108	سفوتاکسیم
(2/3%) 4	(4/6%) 8	(4/90%) 113	سفیکسیم

بحث و نتیجه‌گیری

اگرچه عوامل باکتریایی چون برخی ویبریوها، فلاووباکتریوم‌ها و آیروموناس‌ها همگی از میگوهای پرورشی ایران (چوئبده آبادان) شناسایی‌شده و ضمن اهمیت‌شان در دامپزشکی آبزیان به‌عنوان بیماری‌های مشترک و همچنین عوامل فساد فراورده‌ها مطرح‌اند (Seyed mortezaei et al., 2007) اما میکروارگانیسم‌های مزوفیل هوازی نیز به‌عنوان معرف شرایط بهداشتی محیط نگهداری و پروسه فرآوری، دارای اهمیت بهداشت عمومی بوده و شمارش آنها دیدگاهی کلی نسبت به میزان آلودگی نمونه‌ها و کیفیت میکروبی آن‌ها به دست می‌دهد.

دراین مطالعه بازه زمانی مهر تا آذر ماه (فصل عرضه میگوی تازه در کرمان) برای نمونه گیری انتخاب شده و مشاهده شد که موارد با بار میکروبی بالاتر در انتهای این بازه (انتهای آبان ماه و ابتدای آذر ماه) بیشتر دیده شدند. هرچند آنگاه که بررسی ها طی سه فصل تابستان، پاییز و زمستان بر روی آلودگی میگوها به عواملی همچون سالمونلا صورت گرفته بالاتر بودن آلودگی در فصل تابستان نسبت به دو فصل بعدی آشکار بوده است (Razzaghi manesh et al., 2012). در بررسی ما آلودگی در بیش از 57 درصد از نمونه‌های میگوی کرمان به کلی فرم مدفوعی تنها در فصل پاییز دیده شده و دور از ذهن نیست که میزان آلودگی احتمالی در فصل تابستان و در نمونه‌های ذخیره شده از فصل صید گذشته از این مقدار نیز بالاتر باشد. چنانچه عاملی چون دسترسی محدود و گرانی قیمت میگوی خارج فصل منجر به کاهش تقاضای خرید و متعاقبا ذخیره‌سازی غیر اصولی مقادیری میگو در فروشگاه‌ها گردد مشاهده میگوهای با بار آلودگی کلیفرمی بیشتر در خارج از فصول صید پدیده ای محتمل خواهد بود. میکروارگانسیم‌های آب استخر پرورش میگو را به عنوان نقطه آغاز آعشتگی به باکتری نباید نادیده گرفت کمااینکه آلودگی‌های کلی میکروبی آب مزارع پرورش میگو بین 102 × 21/0 تا 103 × 3/15 واحد تشکیل‌دهنده پرگنه در میلی‌لیتر گزارش شده، هرچند که این میزان کمتر از بار میکروبی وااپسین در خود میگوهاست (Jeyasekaran et al., 2006; Yousuf et al., 2008; Hooshmand et al., 2009; Sana and Hosseini siahi., 2018; Zeng et al. 2020,). این واقعیت گواه تزاید باکتری ها و یا رخداد آلودگی‌های جدید در فرایندهای پس از صید تا عرضه به مصرف‌کننده است.

سازمان استاندارد ملی ایران حداکثر میزان باکتری‌های مزوفیلیک هوازی در سخت‌پوستان دریایی خام را 107 CFU/ml تعیین کرده است (ISIRI, 2394-1/2000). بدین ترتیب 7 نمونه از 21 نمونه این مطالعه (33/33 درصد) دارای بار میکروبی کمتر از حداکثر حد مجاز استاندارد، 8 نمونه (09/38 درصد) درحد مرزی آلودگی قرار داشتند که تقریبا مقدارش با حد مجاز استاندارد یکی بود و 6 نمونه (57/28 درصد) دارای میزان بار میکروبی بالاتر از حد مجاز بودند.

نتایج مطالعه ما حاکی از وجود آلودگی کلی‌فرمی در مقادیر متفاوت و در 95/80 درصد از نمونه‌های میگو بود. از دلایل ممکن برای وجود این میزان از آلودگی می‌توان به آلودگی آب استخر پرورش یا محیط صید، آلودگی آب مورد استفاده در تهیه‌ی یخ، عدم کفایت بهداشت حمل‌و‌نقل و عرضه و نگهداری طولانی در فروشگاه‌ها تا هنگام فروش محصول اشاره کرد. از دیدگاه شیوه های بررسی، بهره گیری از روش های دیگری چون شستشوی لاشه در محیط کشت آب پپتونه بافره یکی از روش‌های ارزیابی میکروبی میگوست که طی یک بررسی در خوزستان با این شیوه میانگین آلودگی میگوها 20000 باکتری در هر میلی‌لیتر مایع شستشوی لاشه گزارش شده که 4/13 درصد از نمونه‌های میگوی خوزستان به باکتری‌های جنس سالمونلا آلوده بودند (Sana and Hosseini siahi., 2018). این در حالیست که حداقل میزان بار آلودگی کلی در نمونه‌های مطالعه ما 330000 باکتری در هر گرم از بافت میگوی مورد آزمایش بوده است (پوسته خارجی و عضله میگو) که به واسطه نمونه‌گیری و سنجش از خود بافت بدن (25گرم از بدن هر نمونه میگو) این میزان ازآلودگی دیده شده است. حقیقت دیگر در ارتباط با موضوع بار میکروبی سطحی و آلودگی بالای سطح بدن میگو این است که شرایط عرضه این محصول در کنار گوشت قرمز و مرغ در فروشگاه‌ها می‌تواند بر میزان و شدت آلودگی کلی باکتریایی میگو موثر باشد چرا که به‌طور کلی آلودگی کلی‌فرمی در این گوشت‌ها بیش از آبزیان است. هرچند فرایندها و فرآوری‌های بعدی چون انجماد، پخت و نمک سود کردن بر کاهش میزان بار آلودگی کلی فرمی در میگوها تاثیرگذار است (Vanderzant and Matthys, 1973; Fatima et al., 1988; Tavakoli et al., 2009, Ali et al., 2012; Dumen et al., 2020; Hwang et al., 2021 ).

نتایج حاصل از شمارش کلی‌فرم‌های مدفوعی در این مطالعه در محدوده 32/1898-0 کلی‌فرم در گرم بود. در حال حاضر از کلی‌فرم‌های مدفوعی و اشریشیاکلی به‌عنوان شاخص آلودگی مدفوعی غذا و آب استفاده می‌شود و این باکتری‌های شاخص برای نظارت بر وضعیت آلودگی آب‌های ساحلی و غذاهای دریایی بسیار مفید هستند. آلودگی کلی‌فرمی و کلی‌فرم مدفوعی در میگوها هنگام پرورش میگو تابع د چون دما، تابش نور خورشید، شوری، پی اچ، وجود مجتمع‌های مسکونی، زمین های کشاورزی و بازارها و واحدهای گردشگری دراطراف محل پرورش باشد که باعث بالا بردن سطح آلودگی می‌شوند (Mitra and Zaman, 2016). در مرحله‌ی پس از برداشت، افزایش آلودگی کلی‌فرم مدفوعی می‌تواند به‌دنبال علل مختلفی مثل نوسانات دمایی، دستکاری افراد، کیفیت یخ و آب مصرفی در مراحل مختلف فرآوری و حمل‌و‌نقل و همچنین طول دوره فرآوری و حمل‌و‌نقل باشد. به‌طور کلی آلودگی به کلی‌فرم مدفوعی نشان‌دهنده‌ی وجود آلودگی مدفوعی در هر یک از مراحل ذکر شده می‌باشد (Boyd, 1997). فرایندهایی چون ردیف‌سازی (23/7 درصد)، سایزبندی (93/6درصد)، پوست‌کنی (27/6درصد) و حتی نازل اسپری‌کننده آب شستشو (06/14درصد) در انتشار آلودگی کلی فرمی در میگوها موثر شناخته شده اند (Keeratipibul et al., 2009). درایران دامنه استاندارد آلودگی کلی‌فرم مدفوعی در محدوده 400-4 باکتری/گرم برای میگو اعلام شده‌است (ISIRI, 2394-1/2000). در این مطالعه تعداد 17 نمونه ( 95/80 درصد) در دامنه‌ی استاندارد قرار داشتند ولی 4 نمونه (05/9 درصد) آلودگی کلی فرم مدفوعی بالاتر از دامنه‌ی استاندارد را نشان دادند که می‌تواند یک خطر بالقوه برای بهداشت و سلامت جامعه محسوب شود.

یکی از شاخص‌های اندازه‌گیری شده در این مطالعه تعداد باکتری اشریشیاکلی در هر نمونه بود که براساس روش محتمل‌ترین تعداد از بیش از نیمی از نمونه‌ها (1/ 57 درصد) باکتری‌ اشریشیاکلی جدا شد. منبع اصلی اشریشیاکلی در محیط مدفوع انسان و حیوانات خونگرم است‌ و به همراه آب‌های غیرتصفیه‌شده بیشترین منابع آلودگی موادغذایی به این میکروب هستند و حضور اشریشیاکلی در فرآورده‌های دریایی به‌طور معمول به‌عنوان آلودگی ماده غذایی با یک منشاء مدفوعی مورد توجه قرار می‌گیرد (Karim, 2015). از آنجا که اشریشیاکلی در محیط آبی برای مدت طولانی نمی‌تواند باقی بماند، بنابراین میزان آلودگی به آن در آبزیانی که از ساحل و لایه‌های سطحی‌تر آب برداشت می‌شوند بسیار پایین است. در نتیجه وجود آلودگی اشریشیاکلی در آبزیان بیشتر مربوط به آلودگی پس از صید هم‌چون دستکاری افراد و صیادان، آلودگی در بازار خرده‌فروش‌ها یا آلودگی در یخ و آبی که در آن نگهداری می‌شود، می‌باشد (Sanath et al., 2001; Prakasan et al., 2022).

در میگوی سفید (Penaeus occidentalis) بیشترین تعداد باکتری کل شمارش شده 108 × 7/2 واحد تشکیل دهنده پرگنه‌در گرم گزارش شده است (Afolayan et al., 2020). بیش از 80 درصد از نمونه‌های این مطالعه دارای میزان آلودگی کمتر از حد استاندارد بودند و کیفیت مناسبی داشتند به‌گونه‌ای که از 85/42 درصد از نمونه‌ها هیچ‌گونه آلودگی‌ای جدا نشد. ولی در 05/19 درصد از نمونه‌ها شمارش اشریشیاکلی بالاتر از حد مجاز بود که میتوانند به عنوان یک خطر بالقوه برای بهداشت و سلامت عمومی محسوب ‌شوند (ISIRI, 2394-1/2000).

در بخش دیگری از این مطالعه مقاومت و حساسیت جدایه‌های اشریشیاکلی به آنتی‌بیوتیک‌های رایج مورد ارزیابی قرار گرفت. بی اثر یا کم اثر شدن آنتی بیوتیک های رایج به دلیل استفاده بي‌رويه از آنتي‌بيوتيك‌ها خصوصاً انواعي كه مصرف مشترك انساني دارند، ‌زمينه‌ساز ايجاد مقاومت‌هاي باكتريايي گسترده و به‌خطر افتادن بهداشت عمومي است. باتوجه به نتایج به‌دست‌آمده از آنتی‌بیوگرام بیشترین مقاومت نسبت به آنتی‌بیوتیک‌های نالیدیکسیک‌اسید و بیشترین حساسیت نسبت به آنتی‌بیوتیک‌های نیتروفورانتوئین، سفتریاکسون، آمیکاسین مشاهده شد.

در یک مطالعه در سوییس، مقاومت آنتی‌بیوتیکی در جدایه‌های اشریشیاکلی از آبزیانی از جمله میگو و ماهی سالمون بررسی شد و بیشترین مقاومت نسبت به آنتی‌بیوتیک سیپروفلوکساسین (22 درصد) گزارش شد. از دیگر آنتی‌بیوتیک‌های مشترک بین دو مطالعه می‌توان جنتامایسین و سفوتاکسیم را نام برد که مقاومت نسبت به آن‌ها در سطح پایینی قرار داشت (Boss et al., 2016). بررسی میگوهای وارداتی از آسیا و عرضه شده در خرده‌فروشی‌های دانمارک نشان‌دهنده‌ی حساسیت صددرصدی و مقاومت صفر نسبت به آنتی‌بیوتیک‌های ونکومایسین و کارباپنم بود (Ellis- Iversen et al., 2020). اشریشیاکلی جدا شده از محیط دریایی منطقه گناوه (آب دریا و شن‌های ساحلی) دارای حساسیت صددرصدی نسبت به جنتامایسین، سفتریاکسون و سفوتاکسیم بود که مشابه نتایج مطالعه حاضر است (Sardari and Bahador, 2016). تفاوت‌های مشاهده شده در الگوی مقاومت آنتی‌بیوتیکی سویه‌های اشریشیاکلی می‌تواند ناشی از تفاوت الگوی تجویز و مصرف انواع آنتی‌بیوتیک در مناطق مختلف باشد. وجود مقاومت نسبت به بتالاکتام ها در باکتری‌های دریایی می‌تواند به علت انتشار پلاسمید‌های مقاوم به آنتی‌بیوتیک‌ها در محیط زیست دریا باشد (Ibargüen-Mondragón et al., 2021).

علیرغم درصد نسبتا پایین مقاومت به آنتی‌بیوتیک های مورد بررسی در این مطالعه، وجود سویه‌های اشریشیاکلی مقاوم به آنتی‌بیوتیک در محیط‌های آبی و آبزیان که ناشی از مصرف بی‌رویه‌ی آنتی‌بیوتیک‌ها در صنایع دامپروری، آبزی‌پروری و انتشار ترکیبات آنتی‌بیوتیکی از طریق پساب‌های شهری، کشاورزی و دامی در محیط و اکوسیستم‌های آبی می‌باشد؛ همچنان حائز اهمیت است. لذا اقدامات کنترلی در تجویز و مصرف ترکیبات ضدمیکروبی جهت پیشگیری از گسترش طیف باکتری‌های مقاوم به آنتی بیوتیک ها از منظر بهداشت عمومی و سلامت مواد غذایی ضروری به‌نظر می‌رسد که این جستار به ویژه توجه دامپزشکان و مسوولین فنی بهداشتی مراکز آبزی‌پروری را به استفاده درست و تنها در صورت ضرور از آنتی‌بیوتیک‌ها در مراکز تکثیر و پرورش جلب می‌نماید.

سنجش میزان آلودگی کلی‌فرمی، کلی‌فرم مدفوعی و اشریشیاکلی در میگوهای فروخته‌شده در سطح شهر کرمان می‌تواند اطلاعات اپیدمیولوژیکی مفیدی را در‌اختیار مقامات بهداشت عمومی برای بهبود شرایط ایمنی مواد غذایی و بهداشت عمومی فراهم کند. آلودگی به کلی‌فرم مدفوعی و اشریشیا‌کلی حاکی از شرایط نامناسب بهداشتی است و بایستی با نظارت بیشتر و همچنین تهیه و آموزش پروتکل‌های صحیح صید، حمل، نگهداری و آماده‌سازی میگو، بهداشت و کیفیت میگوهای عرضه‌شده را افزایش داد.

منابع

· Abdulhai, H., Madani, V., Nowrozi, Sh. And Hajebnejad, K. (2019). Shrimp propagation and cultivation in Iran and the future prospects of the industry. shrimp and crustaceans. 4(1): 4-8. [In Persian]

· Afolayan, O.A., Moruf, R.O. and Lawal-Are, A.O. (2020). Bacterial contamination and heavy metal residues in frozen shellfish retailed within Lagos Metropolis, Nigeria. Science World Journal, 15(1): 11-14

· Boss, R., Overesch, G. and Baumgartner, A. (2016). Antimicrobial resistance of Escherichia coli, Enterococci, Pseudomonas aeruginosa, and Staphylococcus aureus from raw fish and seafood imported into Switzerland. Journal of food protection, 79(7): 1240-1246.

· Ali, M.Y., Hossain, M.B. and Shamsuddin, M. (2012). Microbiological status in a fully export oriented shrimp processing plant. World Applied Sciences Journal, 16(7): 903-906.

· Boyd, C.E. )1997(. Practical aspects of chemistry in pond aquaculture. The Progressive Fish‐Culturist, 59(2): 85-93.

· Clinical and Laboratory Standards Institute. (CLSI) (2016). Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. 26th ed. Wayne: PA; CLSI supplement M100S.

· Chandrapati, S. and M. G. Williams. (2014). "Total viable counts| Most Probable Number (MPN)." pp.621- 624.

· de Miranda, J. O., de Sá Oliveira, S. A., de Sales, S. L. R., Rosa, D. S., Coelho, J. X., da Costa, M. M., et al. (2022). Prevalence, biofilm formation, and antimicrobial resistance of Escherichia coli, Staphylococcus aureus, and Salmonella isolates from goat meat marketed in Petrolina, Brazil. Food Protection Trends, 42(2), 139-150.

· Dumen, E., Ekici, G., Ergin, S. and Bayrakal, G.M. (2020). Presence of foodborne pathogens in seafood and risk ranking for pathogens. Foodborne pathogens and disease, 17(9): 541-546.

· Ellis-Iversen, J., Seyfarth, A.M., Korsgaard, H., Bortolaia, V., Munck, N. and Dalsgaard, A. (2020). Antimicrobial resistant E. coli and enterococci in Pangasius fillets and prawns in Danish retail imported from Asia. Food Control, 114: 1-6, 106958.

· Fatima, R., Khan, M.A. and Qadri, R.B. (1988). Shelf life of shrimp (Penaeus merguiensis) stored in ice (0° C) and partially frozen (-3° C). Journal of the Science of Food and Agriculture, 42(3): 235-247.

· Hooshmand, H., Seyed mortezaee, S.R. and Ahangarzadeh, M. (2009). Investigating the bacterial quality of Bahmanshir river water and shrimp breeding ponds in Choebde- Abadan region. Iranian Veterinary Journal. 5(4): 52-58.

· Hwang, C.C., Lin, C.S., Lee, Y.C., Wei, C.I., Tung, H.N., Ou, T.Y., et al., (2021). Physicochemical and microbial quality of prepackaged shrimp processed by a scaled-up microwave-assisted induction heating technology. Applied Sciences, 11(20): p.9514.

· Ibargüen-Mondragón, E., Prieto, K. and HIDALGO-BONILLA, S.P. (2021). A model on bacterial resistance considering a generalized law of mass action for plasmid replication. Journal of Biological Systems, 29(02): 375-412.

· Institute of Standards and Industrial Research of Iran. (ISIRI). (2000). Fish and Shrimp Microbiologic properties. ISIRI No. 2394-1. [In Persian]

· Institute of Standards and Industrial Research of Iran. (ISIRI). (2018). Microbiology of the food chain - test preparation, initial suspension and decimal dilutions for microbiology test - part 3: special regulations for the preparation of fish and its products. ISIRI No. 8923-3. [In Persian].

· Institute of Standards and Industrial Research of Iran. (ISIRI). (2015). Microbiology of the food chain-Horizontal method for enumeration of microorganisms-Part1: Colony count at 30°C by the Pour Plate Technique. ISIRI No. 5272-2. [In Persian].

· Jeyasekaran, G., Ganesan, P., Anandaraj, R., Shakila, R.J., Sukumar D. (2006). Quantitative and qualitative studies on the bacteriological quality of Indian white shrimp (Penaeus indicus) stored in dry ice. Food Microbiology. 23(6): 526–33.

· Karim., G. (2015). Microbial examinations of food. 6th edition. University of Tehran publications, pp. 36-39 [in Persian].

· Keeratipibul Techaruwichit, P. and, S., Chaturongkasumrit, Y.)2009(. Contamination sources of coliforms in two different types of frozen ready-to-eat shrimps. Food Control, 20(3): 289-293.

· Mitra, A. and Zaman, S. (2016). Basics of marine and estuarine ecology. Springer. pp.251-261

· Pinu, F.R., Yeasmin, S., BARI, M.L. and Rahman, M.M. (2007). Microbiological conditions of frozen shrimp in different food market of Dhaka city. Food science and technology research, 13(4): 362-365.

· Prakasan, S., Lekshmi, M., Ammini, P., Balange, A.K., Nayak, B.B. and Kumar, S.H. (2022). Occurrence, pathogroup distribution and virulence genotypes of Escherichia coli from fresh seafood. Food Control, 133: 108669.

· Qing, Z.Z., Thorarinsdottir, K. A. and Olafsdottir, G. (2005). 'Quality changes of shrimp (Pandalus borealis) stored under different cooling conditions', Journal of Food Science, 70(7): S459-S466.

· Rasheed, M.U., Thajuddin, N., Ahamed, P., Teklemariam, Z. and Jamil, K. (2014). Antimicrobial drug resistance in strains of Escherichia coli isolated from food sources. Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo, 56: 341-346.

· Razzaghi Manesh, M., Ghasemi, A., Rahimi, E., Shakrian, A., Dadar, . (2012). "Study of contamination with Salmonella serotypes in shrimp, lobster and fish sold in Isfahan market", Veterinary research and biological products, 26(2): 15-19.

· Safaian, Sh., Moghadam, Z., Hosseini, H. and Esmaili, A. (2014). Antibiotic resistance in Gram- negative bacteria isolated from the intestine of wild Carp in Anzali lagoon. Environmental Science and Technology Quarterly, 15(4): 65-74 [In Persian].

· Sana, M.J. and Hosseini Siahi, Z. (2018). The determination of total microbial count and prevalence of Salmonella in the shrimp supply in Khuzestan province. Iranian Journal of Health and Environment, 11(2): 149-156.

· Sanath Kumar, H., Otta, S.K., Karunasagar, I. and Karunasagar, I. (2001). Detection of Shiga‐toxigenic Escherichia coli (STEC) in fresh seafood and meat marketed in Mangalore, India by PCR. Letters in Applied Microbiology, 33(5): 334-338.

· Sanz, C., Casado, M., Navarro-Martin, L., Cañameras, N., Carazo, N., Matamoros, V. et al., (2022). Implications of the use of organic fertilizers for antibiotic resistance gene distribution in agricultural soils and fresh food products. A plot-scale study. Science of the Total Environment, 815: 1-12 (p.151973).

· Sardari, R. and Bahador, N. (2016). Phylogenetic analysis and antibiotic pattern determination of Escherichia coli strains isolated from the coasts of Ganaveh region. Marine Biology, 8(32):13-20 [In Persian].

· Seyed Mortezaei, S.R., Kor, N.M., Tamjidi, B., and Jahanshahi, A.A. (2007). Bacterial contamination in shrimp farms in ABADAN area. Pajouhesh-va Sazandegi. 20(2): (75In Animal and Fisheries Sciences) 160-165. [In Persian].

· Swanson, K., Petran, R. and Hanlin, J. (2001). Culture methods for enumeration of microorganisms, In: Pouch Downes, F. and Ito, K. (Editors), Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods, 4th Edition, American Public Health Association, Washington DC, pp:53–62

· Tavakoli, H. R., Hosseini, H. and Khaksar, R. (2009). Bacteriological quality evaluation of salted fishes that are produced traditionally in the North of Iran. Iran's food sciences and industries, 21(6):105- 111. [In Persian].

· Vanderzant, C., Matthys, A.W. and Cobb III, B.F. (1973). Microbiological, chemical, and organoleptic characteristics of frozen breaded raw shrimp. Journal of Food Protection, 36(5): 253-261.

· Xie, J., Jin, L., He, T., Chen, B., Luo, X., Feng, B. et al., (2018). Bacteria and antibiotic resistance genes (ARGs) in PM2. 5 from China: implications for human exposure. Environmental science & technology, 53(2): 963-972.

· Yousuf, A.H.M., Ahmed, M.K., Yeasmin, S., Ahsan, N., Rahman, M.M. and Islam, M.M. (2008). Prevalence of microbial load in shrimp, Penaeus monodon and prawn, Macrobrachium rosenbergii from Bangladesh. World Journal of Agricultural Sciences, 4(5): 852-855.

· Zeng, S., Khoruamkid, S., Kongpakdee, W., Wei, D., Yu, L., Wang, H., et al. )2020(. Dissimilarity of microbial diversity of pond water, shrimp intestine and sediment in Aquamimicry system. AMB Express, 10(1): 1-11.

اشتراک گذاری

آدرس مقاله

تعیین بار میکروبی کلی، آلودگی کلی‌فرمی و الگوی مقاومت آنتي‌بیوتیکي سویه‌های اشريشیاکلي در میگوی عرضه‌شده در شهر کرمان

سکوی نشر دانش

پیوندهای سایت

مراکز مرتبط

پشتیبانی

صفحات رسمی