تاثیر کودهای پتاسیم، سیلیس و ورمی کمپوست بر کنترل بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی (Rhizoctonia solani) لوبیا چیتی

محورهای موضوعی : دو فصلنامه تحقیقات بیماریهای گیاهی

مهناز زابلی ¹ , طاهره بصیرنیا ² , سیدمحمدرضا موسوی ³

1 - دانش آموخته کارشناسی ارشد، گروه بیماری شناسی گیاهی، واحد مرودشت، دانشگاه آزاد اسلامی، مرودشت، ایران.
2 - استادیار، گروه بیماری شناسی گیاهی، واحد مرودشت، دانشگاه آزاد اسلامی، مرودشت، ایران.
3 - گروه بیماری‌شناسی گیاهی. واحد مرودشت. دانشگاه آزاد اسلامی. مرودشت. ایران

تاریخ دریافت : 1395/10/19 تاریخ پذیرش : 1397/02/09 تاریخ انتشار : 1396/09/01

کلید واژه: شدت بیماری, سیلیکات کلسیم, صفات بیوشیمیایی, کود پتاسیم, لوبیاچیتی,

چکیده مقاله :

با توجه به خطرات زیست­محیطی و ایجاد مقاومت در نتیجه کاربرد سموم شیمیایی، توجه به سایر روش­های کنترل مانند مدیریت زراعی می­تواند در کنترل بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی مفید باشد. این پژوهش با هدف بررسی اثر کودهای پتاسیم، سیلیس و ورمی­کمپوست بر کنترل پوسیدگی ریزوکتونیایی در لوبیا چیتی به صورت آزمایش فاکتوریل بر پایه طرح کاملاً تصادفی با 18 تیمار و چهارتکرار طی سال­های 1392 تا1393 انجام شد. عامل­های مورد مطالعه در این آزمایش شامل سه سطح کود پتاس (0، 50 و 100 کیلوگرم در هکتار)، سه سطح سیلیکات کلسیم (0، 400 و 800 کیلوگرم در هکتار) و دو سطح ورمی کمپوست (0 و 5 درصد حجمی/حجمی) بود. براساس نتایج حاصل از این پژوهش، کاربرد هر یک از فاکتورهای اصلی به­تنهایی (پتاسیم، سیلیس و ورمی­کمپوست) سبب بهبود خصوصیات رویشی گیاه لوبیا چیتی و کنترل بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی شد. به­طوری که کاربرد 100 کیلوگرم کود پتاسیم و یا 400 و 800 کیلوگرم در هکتار کود سیلیکات­کلسیم و همچنین ورمی­کمپوست به طور معنی­داری خصوصیات رویشی گیاه لوبیا چیتی از قبیل وزن تر و خشک ساقه و ریشه را بهبود بخشید. این ترکیبات با بهبود خصوصیات بیوشیمیایی گیاه لوبیا از قبیل میزان گایاکول پراکسیداز، سبب کاهش معنی­دار شدت بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی در گیاهان لوبیا چیتی مورد مطالعه شدند. بر اساس نتایج مشخص شدکه کاربرد غلظت­های 400 و 800 کیلوگرم بر هکتار سیلیکات کلسیم و همچنین 100 کیلوگرم بر هکتار کود پتاسیم بیشترین تأثیررا در کنترل پوسیدگی ریزوکتونیایی لوبیا چیتی داشته و ضمن بهبود خصوصیات رویشی گیاه باعث کنترل این بیماری شده است.

چکیده انگلیسی:

With consideration to environmental risks and appearance of resistance in pathogens due to use of chemical pesticides, application of other managing measures such as cultural methods can be useful in controlling Rhizoctonia rot. This experiment was conducted to investigate the effects of potassium, silicon and vermicompost on controlling of Rhizoctonia rot (Rhizoctonia solani) of pinto bean. A factorial pot experiment with four replication was conducted in 2014 based on completely randomized design with three factors including potassium (0, 50 and 100 kg ha^-1), calcium silicate (0, 400 and 800 kg ha^-1) and vermicompost (0 and 5 % V/V). The results showed that main factors increased vegetative growth parameters of pinto bean and reduced the level of Rhizoctonia rot. So that, application of 100 kg ha^-1 of potassium or 400-800 kg ha^-1 of calcium silicate and vermicompost significantly increased vegetative growth (root and shoot) fresh and dry weight. The treatments also significantly improved biochemical characteristics such as the amount of gaiacol peroxidase. In general, our results showed that plant nutrient greatly improved plant vegetative parameters and plant resistance to biotic stress. Accordingly, we found that the use of calcium silicate (400 and 800 kg. ha^-1) and 100 kg.ha^-1 of potassium had highest effect on controlling Rhizoctonia rot and improving plant vegetative growth.

منابع و مأخذ:

 

1. Anonymous. 1999. Phosphorus Nutrition Improves Plant Disease Resistance. Better Crops 83: 26–27. [cited 2017 Jun 17]. Available from: http://www.ipni.net/publication/bettercrops.nsf/0/205764E4A50B0A13852579800082018B/$FILE/Better%20Crops%201999-1%20p26.pdf


2. Ashraf Modares M, Roostaei A and Etebarian HR. 2007. Interaction effect of plant nutrition (nitrogen, phosphorus, potassium and calcium) and charcoal rot disease (M. phaseolina) on melon cultivars. Paper presented at: 2nd National Congress of Ecological Agriculture; 17–18 October; Gorgan: Iran.


3. Bagheri A, Mahmoudi A and Ghazali F. 2001. Bean cultivation and breeding. Mashad: Jahad-e-Daneshgahi Publishing, 556 pp.


4. Bradford MM. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical biochemistry 72: 248–254.


5. Cherf M, Menzies JG, Ehret DL, Bopgdanoff C and Belanger RR. 1994. Yield of cucumber infected with Pythium aphanidermatum when grown with soluble silicon. HortScience 29: 896–897.


6. Dann EK and Muir S. 2002. Peas grown in media with elevated plant-available silicon levels have higher activities of chitinases and ß-1, 3-glucanase, are less susceptible to a fungal leaf spot pathogen and accumulate more foliar silicon. Australian Journal of Plant Pathology 31: 9–13.


7. Doube MB, Stephen PM, Davoren H and Ryder M. 1994. Interaction between earthworms, beneficial soil micro-organisms and root pathogens. Soil Ecology Journal 1: 3–10.


8. Edwards CA, Domínguez J, Arancon NQ. 2004. The influence of vermicompost on plant growth and pest incidence. pp. 396–419, In Shakir SH and Mikhaïl WZA (eds). Soil zoology for sustainable development in the 21st century. Cairo, Egypt: Self-Publisher.


9. Ersahin SY, Haktanir K and Yaner Y. 2009. Vermicompost suppresses Rhizoctonia solani Kühn in cucumber seedlings. Journal of Plant Diseases and Protection 116: 182–188.


10. Fauteux FF, Chain F, Belzile JG, Menzies R and Bélanger R. 2006.The protective role of silicon in the Arabidopsis-powdery mildew pathosystem. Proceedings of the National Academy of Sciences 103: 7554–7559.


11. Fawe A, Abou-Zaid M, Menzies JG and Bélanger RR. 1998. Silicon-mediated accumulation of flavonoid phytoalexins in cucumber. Phytopathology 88: 396–401.


12. Goldstein J. 1998. Compost suppresses disease in the lab and on the fields. Biocycle 39: 62–65.


13. Huang C-H, Roberts PD, Datnoff LE. 2011. Silicon suppresses Fusarium crown and root rot of tomato. Journal of Phytopathology 159: 546–554.


14. Inanga S, Okasaka A and Tanaka S. 1995. Does silicon exist in association with organic compounds in rice plant? Japanese Journal of Soil Science and Plant Nutrition 11: 111–117.


15. Kholdebarin B and Eslamzadeh T. 2001. Mineral nutrition of higher plants. First Edition. Shiraz: Shiraz University Press. 902 pp.


16. Lak MR and Ghanbari AA. 2005. The effect of planting date and pinto bean lines on hypocotyl and root rot disease. Paper presented at: 1st National Conference on cereals; 20–21 November; Mashhad, Iran.


17. Panella LW and Ruppel EG. 1996. Availability of germplasm for resistance against Rhizoctonia ssp. pp. 515–527, In B Sneh B, Jabaji-Hare S, Neate S and Dijst G (eds). Rhizoctonia species: Taxonomy, molecular biology, ecology, pathology and disease control. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers.


18. Prabhu AS, Fageria ND, Huber DM and Rodrigues FA. 2007. Potassium and plant disease. pp. 57–78, In Datnoff L.E, Elmer WH and Huber DM (eds). Mineral nutrition and plant disease. St. Paul: APS Press.


19. Prabhu AS, Fageria ND, Huber DM and Rodrigues FA. 2007. Potassium and plant disease. pp 57–78, In Datnoff E and Huber DM (eds.). Mineral nutrition and plant disease. New York: APS Press.


20. Ravf BA and Ahmad I. 1998. Studies on correlation of seed infection to field incidence of Alternaria alternata and Macrophomina phaseolina in Sunflower. Paper presented at: 13th Iranian Plant Protection Congress; 23–27 August; Karaj, Iran.


21. Rivera MC, Wright ER, Lopez MV, Garda D and Barrague MY. 2004. Promotion of growth and control of damaping-off (Rhizoctonia solani) of greenhouse tomatoes amended with vermicompost. Phyton (International Journal of Experiment Botany) 73: 229–235.


22. Rodrigues FA, McNally D, Datnoff LE, Jones JB, Labbé C, Benhamou N, Menzies JM and Bélanger R. 2003. Silicon enhances the accumulation of diterpenoidphytoalexins in rice: a potential mechanism for blast resistance. Phytopathology 93: 74.


23. Singh UP, Maurya S and Singh DP. 2003. Antifungal activity and induced resistance in pea by aqueous extract of vermicompost and for control of powdery mildew of pea and balsam. Journal of Plant Diseases and Protection 110: 544–553.


24. Van Loon LC. 1997. Induced resistance in plants and role of pathogenesis-related proteins. European Journal of Plant Pathology 103: 735– 765.


25. Zhang GL, Dai QZ and Zhang HC. 2006. Silicon application enhances resistance to sheath blight (Rhizoctonia solani) in rice. Journal of Plant Physiology and Molecular Biology (Zhi Wu Sheng Li Yu Fen Zi Sheng Wu XueBao) 32: 600–606.