تاثیر کودهای پتاسیم، سیلیس و ورمی کمپوست بر کنترل بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی (Rhizoctonia solani) لوبیا چیتی
الموضوعات :
دو فصلنامه تحقیقات بیماریهای گیاهی
مهناز زابلی
1
,
طاهره بصیرنیا
2
,
سیدمحمدرضا موسوی
3
1 - دانش آموخته کارشناسی ارشد، گروه بیماری شناسی گیاهی، واحد مرودشت، دانشگاه آزاد اسلامی، مرودشت، ایران.
2 - استادیار، گروه بیماری شناسی گیاهی، واحد مرودشت، دانشگاه آزاد اسلامی، مرودشت، ایران.
3 - گروه بیماریشناسی گیاهی. واحد مرودشت. دانشگاه آزاد اسلامی. مرودشت. ایران
تاريخ الإرسال : 10 الأحد , ربيع الثاني, 1438
تاريخ التأكيد : 13 الأحد , شعبان, 1439
تاريخ الإصدار : 04 الأربعاء , ربيع الأول, 1439
الکلمات المفتاحية:
شدت بیماری,
سیلیکات کلسیم,
صفات بیوشیمیایی,
کود پتاسیم,
لوبیاچیتی,
ملخص المقالة :
با توجه به خطرات زیستمحیطی و ایجاد مقاومت در نتیجه کاربرد سموم شیمیایی، توجه به سایر روشهای کنترل مانند مدیریت زراعی میتواند در کنترل بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی مفید باشد. این پژوهش با هدف بررسی اثر کودهای پتاسیم، سیلیس و ورمیکمپوست بر کنترل پوسیدگی ریزوکتونیایی در لوبیا چیتی به صورت آزمایش فاکتوریل بر پایه طرح کاملاً تصادفی با 18 تیمار و چهارتکرار طی سالهای 1392 تا1393 انجام شد. عاملهای مورد مطالعه در این آزمایش شامل سه سطح کود پتاس (0، 50 و 100 کیلوگرم در هکتار)، سه سطح سیلیکات کلسیم (0، 400 و 800 کیلوگرم در هکتار) و دو سطح ورمی کمپوست (0 و 5 درصد حجمی/حجمی) بود. براساس نتایج حاصل از این پژوهش، کاربرد هر یک از فاکتورهای اصلی بهتنهایی (پتاسیم، سیلیس و ورمیکمپوست) سبب بهبود خصوصیات رویشی گیاه لوبیا چیتی و کنترل بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی شد. بهطوری که کاربرد 100 کیلوگرم کود پتاسیم و یا 400 و 800 کیلوگرم در هکتار کود سیلیکاتکلسیم و همچنین ورمیکمپوست به طور معنیداری خصوصیات رویشی گیاه لوبیا چیتی از قبیل وزن تر و خشک ساقه و ریشه را بهبود بخشید. این ترکیبات با بهبود خصوصیات بیوشیمیایی گیاه لوبیا از قبیل میزان گایاکول پراکسیداز، سبب کاهش معنیدار شدت بیماری پوسیدگی ریزوکتونیایی در گیاهان لوبیا چیتی مورد مطالعه شدند. بر اساس نتایج مشخص شدکه کاربرد غلظتهای 400 و 800 کیلوگرم بر هکتار سیلیکات کلسیم و همچنین 100 کیلوگرم بر هکتار کود پتاسیم بیشترین تأثیررا در کنترل پوسیدگی ریزوکتونیایی لوبیا چیتی داشته و ضمن بهبود خصوصیات رویشی گیاه باعث کنترل این بیماری شده است.
المصادر:
Anonymous. 1999. Phosphorus Nutrition Improves Plant Disease Resistance. Better Crops 83: 26–27. [cited 2017 Jun 17]. Available from: http://www.ipni.net/publication/bettercrops.nsf/0/205764E4A50B0A13852579800082018B/$FILE/Better%20Crops%201999-1%20p26.pdf
Ashraf Modares M, Roostaei A and Etebarian HR. 2007. Interaction effect of plant nutrition (nitrogen, phosphorus, potassium and calcium) and charcoal rot disease (M. phaseolina) on melon cultivars. Paper presented at: 2nd National Congress of Ecological Agriculture; 17–18 October; Gorgan: Iran.
Bagheri A, Mahmoudi A and Ghazali F. 2001. Bean cultivation and breeding. Mashad: Jahad-e-Daneshgahi Publishing, 556 pp.
Bradford MM. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical biochemistry 72: 248–254.
Cherf M, Menzies JG, Ehret DL, Bopgdanoff C and Belanger RR. 1994. Yield of cucumber infected with Pythium aphanidermatum when grown with soluble silicon. HortScience 29: 896–897.
Dann EK and Muir S. 2002. Peas grown in media with elevated plant-available silicon levels have higher activities of chitinases and ß-1, 3-glucanase, are less susceptible to a fungal leaf spot pathogen and accumulate more foliar silicon. Australian Journal of Plant Pathology 31: 9–13.
Doube MB, Stephen PM, Davoren H and Ryder M. 1994. Interaction between earthworms, beneficial soil micro-organisms and root pathogens. Soil Ecology Journal 1: 3–10.
Edwards CA, Domínguez J, Arancon NQ. 2004. The influence of vermicompost on plant growth and pest incidence. pp. 396–419, In Shakir SH and Mikhaïl WZA (eds). Soil zoology for sustainable development in the 21st century. Cairo, Egypt: Self-Publisher.
Ersahin SY, Haktanir K and Yaner Y. 2009. Vermicompost suppresses Rhizoctonia solani Kühn in cucumber seedlings. Journal of Plant Diseases and Protection 116: 182–188.
Fauteux FF, Chain F, Belzile JG, Menzies R and Bélanger R. 2006.The protective role of silicon in the Arabidopsis-powdery mildew pathosystem. Proceedings of the National Academy of Sciences 103: 7554–7559.
Fawe A, Abou-Zaid M, Menzies JG and Bélanger RR. 1998. Silicon-mediated accumulation of flavonoid phytoalexins in cucumber. Phytopathology 88: 396–401.
Goldstein J. 1998. Compost suppresses disease in the lab and on the fields. Biocycle 39: 62–65.
Huang C-H, Roberts PD, Datnoff LE. 2011. Silicon suppresses Fusarium crown and root rot of tomato. Journal of Phytopathology 159: 546–554.
Inanga S, Okasaka A and Tanaka S. 1995. Does silicon exist in association with organic compounds in rice plant? Japanese Journal of Soil Science and Plant Nutrition 11: 111–117.
Kholdebarin B and Eslamzadeh T. 2001. Mineral nutrition of higher plants. First Edition. Shiraz: Shiraz University Press. 902 pp.
Lak MR and Ghanbari AA. 2005. The effect of planting date and pinto bean lines on hypocotyl and root rot disease. Paper presented at: 1st National Conference on cereals; 20–21 November; Mashhad, Iran.
Panella LW and Ruppel EG. 1996. Availability of germplasm for resistance against Rhizoctonia ssp. pp. 515–527, In B Sneh B, Jabaji-Hare S, Neate S and Dijst G (eds). Rhizoctonia species: Taxonomy, molecular biology, ecology, pathology and disease control. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers.
Prabhu AS, Fageria ND, Huber DM and Rodrigues FA. 2007. Potassium and plant disease. pp. 57–78, In Datnoff L.E, Elmer WH and Huber DM (eds). Mineral nutrition and plant disease. St. Paul: APS Press.
Prabhu AS, Fageria ND, Huber DM and Rodrigues FA. 2007. Potassium and plant disease. pp 57–78, In Datnoff E and Huber DM (eds.). Mineral nutrition and plant disease. New York: APS Press.
Ravf BA and Ahmad I. 1998. Studies on correlation of seed infection to field incidence of Alternaria alternata and Macrophomina phaseolina in Sunflower. Paper presented at: 13th Iranian Plant Protection Congress; 23–27 August; Karaj, Iran.
Rivera MC, Wright ER, Lopez MV, Garda D and Barrague MY. 2004. Promotion of growth and control of damaping-off (Rhizoctonia solani) of greenhouse tomatoes amended with vermicompost. Phyton (International Journal of Experiment Botany) 73: 229–235.
Rodrigues FA, McNally D, Datnoff LE, Jones JB, Labbé C, Benhamou N, Menzies JM and Bélanger R. 2003. Silicon enhances the accumulation of diterpenoidphytoalexins in rice: a potential mechanism for blast resistance. Phytopathology 93: 74.
Singh UP, Maurya S and Singh DP. 2003. Antifungal activity and induced resistance in pea by aqueous extract of vermicompost and for control of powdery mildew of pea and balsam. Journal of Plant Diseases and Protection 110: 544–553.
Van Loon LC. 1997. Induced resistance in plants and role of pathogenesis-related proteins. European Journal of Plant Pathology 103: 735– 765.
Zhang GL, Dai QZ and Zhang HC. 2006. Silicon application enhances resistance to sheath blight (Rhizoctonia solani) in rice. Journal of Plant Physiology and Molecular Biology (Zhi Wu Sheng Li Yu Fen Zi Sheng Wu XueBao) 32: 600–606.
_||_