اثر فصل، جنسیت و سویههای مختلف اگروباکتریوم رایزوژنز در توانایی القاء ریشههای نابجا در دو پایه نر و ماده سرو کوهی (Juniperus communis L.)
Subject Areas : Journal of Ornamental Plants
مصطفی
خوشحال سرمست
1
(گروه علوم باغبانی، دانشکده تولیدات گیاهی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران)
رودابه
کردکتولی
2
(گروه علوم باغبانی، دانشکده تولیدات گیاهی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران)
زهرا
رضایی
3
(گروه علوم باغبانی، دانشکده تولیدات گیاهی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران)
عظیم
قاسم نژاد
4
(گروه علوم باغبانی، دانشکده تولیدات گیاهی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران)
Keywords: فصل, اگروباکتریوم رایزوژنز, سرو کوهی, ریشه های نابجا, دو پایگی,
Abstract :
موشکافی جنبه­های مختلف افزایش رویشی سرو کوهی ایرانی یکی از مهمترین اولویت­ها در رابطه با جلوگیری از انقراض این گونه­ها به حساب می­آید. در این پژوهش اثر سویه­های مختلف اگروباکتریوم رایزوژنز، ترکیبات هومونی مختلف (ایندول بوتریک اسید، پاکلوبوترازول، پوتریسین و سدیم نیتروپروساید)، فصول مختلف و جنسیت­های متفاوت در توانایی ریشه­زایی دو پایه نر و ماده سرو کوهی مورد بررسی قرار گرفت. ریشه­زایی قلمه­های نیمه خشبی سرو کوهی در هر دو پایه در پاییز موفقیت­آمیزتر بود. قلمه­های گرفته شده در سپتامبر بالاترین درصد ریشه­زایی را در پایه ماده داشتند در حالی که تفاوت معنی­داری در توانایی ریشه­زایی در پایه­های نر که در دسامبر و سپتامبر گرفته شده بود دیده نشد.گرایش به ریشه­زایی در پایه ماده بیشتر از نر بود. تیمار پایه­های ماده با IBA ریشه­زایی را به نصف کاهش داد و حتی این تنظیم کننده رشد ریشه­زایی را در پایه نر نسبت به کنترل به صفر رساند. تفاوت در درصد ریشه­زایی بین پایه­ها تا حدی به­وسیله تفاوت ژنتیکی مشاهده شده در دو پایه با استفاده از تکثیر تصادفی مکان­های ژنی آن­ها قابل توجیه خواهد بود. سویه A4 اگرو باکتریوم رایزوژنز در مقایسه با دیگر سویه­ها ریشه­زایی را در پایه ماده به 5/53 درصد رساند. تشکیل ریشه­های نابجا مرتبط با جنسیت در سرو کوهی که به کمک داده­های ژنتیکی حمایت می­شود راه را برای مطالعات پایه­ای برای آشکار نمودن حلقه گم شده در سازوکار ریشه­زایی گیاهان آشکار خواهد نمود.
Carpenter, C.D., O'Neill, T., Picot, N., Johnson, J.A., Robichaud, G.A., Webster, D. and Gray, C.A. 2012. Anti-mycobacterial natural products from the Canadian medicinal plant Juniperus communis. Journal of Ethnopharmacology,143: 695-700.
Carroll, J.F., Tabanca, T., Kramer, M., Elajalde, N.M., Wedge, D.E., Bernier, U.R., Coy, M., Becnel, J.J., Demirci, B., Baser, K.H., Zhang, L. and Zhang, S. 2011. Essential oils of Cupressus funebris, Juniperus communis, and J. chinensis (Cupressaceae) as repellents against ticks (Acari: Ixodidae) and mosquitoes (Diptera: Culicidae) and as toxicants against mosquitoes. Journal of Vector Ecology, 36: 258–268.
Davis, T.D. and Haissig, B.E. 1990. Chemical control of adventitious root formation in cuttings. Plant Growth Regulation Society, 18: 1–18.
Gergoff Grozeff, G.E., De Los, Á., Romero, M. and Videla, A. 2018. Nitric oxide in combination with indole-3-butyric acid improves root growth in ‘Ferdor Julior’ hardwood cuttings (Prunus insistitia (L.) × Prunus domestica (L.)). Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 93: 175-184.
Hartmann, H.T., Kester, D.E., Davis, F.T. and Geneve, R.L. 2011. Plant propagation: principles and practices, 8th ed. Prentice-Hall Inc., Englewood Cliffs. 878. P.
Henrique, A., Campinhos, E.N., Ono, E.O. and Pinho, S.Z. 2006. Effect of plant growth regulators in the rooting of Pinus cuttings. Brazilian Archives of Biology and Technology, 49: 189–196.
Kusari, S., Lamshöft, M. and Spiteller, M. 2009. Aspergillus fumigatus Fresenius, an endophytic fungus from Juniperus communis L. Horstmann as a novel source of the anticancer pro‐drug deoxypodophyllotoxin. Journal of Applied Microbiology, 107: 1019-1030.
McAfee, B., White, E., Pelcher, L. and Lapp, M. 1993. Root induction in pine (Pinus) and larch (Larix) spp. using Agrobacterium rhizogenes. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 34: 53-62.
Pagnussat, G.C., Lanteri, M.L. and Lamattina, L. 2003. Nitric oxide and cyclic GMP are messengers in the indole acetic acid-induced adventitious rooting process. Plant Physiology, 132: 1241-1248.
Ragonezi, C., Klimaszewska, K., Castro, M.R., Lima, M., de Oliveira, P. and Zavattieri, M.A. 2010. Adventitious rooting of conifers: Influence of physical and chemical factors. Trees, 24: 975–992.
Rifaki, N., Economou, A. and Hatzilazarou, S. 2002. Factors affecting vegetative propagation of Juniperus exelsa Bieb. by stem cuttings. Propagation of Ornamental Plants, 2: 9-13.
Sarmast, M.K. 2016. Genetic transformation and somaclonal variation in conifers- a review. Plant Biotechnology Report, 10: 309-325.
Sarmast, M.K. 2018. In vitro establishment of conifers by mature shoots. Journal of Forestry Research, 29: 565-574.
Sarmast, M.K., Salehi, H. and Khosh-Khui, M. 2012. In vitro rooting of Araucaria excelsa R. Br. using Agrobacterium rhizogenes. Journal of Central European Agriculture, 13: 123-130.
Sarmast, M.K., Salehi, H. and Niazi, A. 2015. Biochemical differences underlie varying drought tolerance in four Festuca arundinacea Schreb. genotypes subjected to short water scarcity. Acta Physiologiae Plantarum, 37(192): 1-13.
Tang, W. and Newton, R.J. 2005. Polyamines promote root elongation and growth by increasing root cell division in regenerated Virginia pine (Pinus virginiana Mill.) plantlets. Plant Cell Reports, 24: 581–589.
Villalobos-Amador, E., Rodríguez-Hernández, G. and Pérez-Molphe-Balch, E. 2002. Organogenesis and Agrobacterium rhizogenes-induced rooting in Pinus maximartinezii Rzedowsky and P. pinceana Gordon. Plant Cell Reports, 20: 779–785.
Wiesman, Z. and Lavee, S. 1995. Enhancement of IBA stimulatory effect on rooting of olive cultivar stem cutting. Scientia Horticulturae, 65: 189–198.