اثر تخم شنبلیله (Trigonella foenum-graecum) و ریشه مارچوبه (Asparagus officinalis) بر هضم و کینتیک تولید گاز یونجه با استفاده از تکنیک آزمایشگاهی

Subject Areas : Camel

و. ناصری ¹ , ف. کفیل‌زاده ² , ف. هژبری ³

1 - Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Razi University, Kermakshah, Iran
2 - Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Razi University, Kermakshah, Iran
3 - Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Razi University, Kermakshah, Iran

Received: 2014-04-24 Accepted : 2014-11-15 Published : 2015-09-01

Keywords: یونجه, قابلیت هضم, تخم شنبلیله, تولید گاز, ریشه مارچوبه, برون تنی,

Abstract :

این تحقیق به منظور مطالعه اثر تخم شنبلیله و ریشه مارچوبه بر قابلیت هضم و کینتیک تولید گاز علوفه یونجه در شرایط آزمایشگاهی انجام شد. تخم شنبلیله (FS) و ریشه مارچوبه (AR) در سطوح مختلف (0، 5، 10، 15 و 20 درصد ماده خشک) اضافه شده بودند. کل ترکیبات فنولی علوفه یونجه (AH)، تخم شنبلیله و ریشه مارچوبه به ترتیب 9/5، 10 و 3/8 گرم در کیلوگرم ماده خشک، کل تانن 4/0، 8/3 و 5/1 گرم در کیلوگرم ماده خشک و ساپونین 4/10، 3/27 و 3/40 گرم در کیلوگرم ماده خشک بود. قابلیت هضم آزمایشگاهی ماده خشک (DM)، ماده آلی (OM) و دیواره سلولی (NDF) یونجه با اضافه کردن سطوح مختلف تخم شنبلیله کاهش (05/0P<) یافت، اما با اضافه کردن ریشه مارچوبه تحت تأثیر قرار نگرفته بود. افزودن تخم شنبلیله تأثیری بر قابلیت هضم پروتئین خام (CP) یونجه نداشت، اما ریشه مارچوبه در سطح 5 و 20 درصد ماده خشک قابلیت هضم پروتئین خام یونجه را کاهش (05/0P<) داده بود. انرژی قابل متابولیسم (ME) یونجه بواسطه اضافه کردن تخم شنبلیله و ریشه مارچوبه به ترتیب افزایش و کاهش یافته بود (05/0P<). اضافه کردن تخم شنبلیله (در سطح 10 درصد ماده خشک) و ریشه مارچوبه (در سطح 5 درصد ماده خشک) پتانسیل تولید گاز یونجه را کاهش (05/0P<) داده بود. نرخ‌های ثابت تولید گاز (c و d) بواسطه اضافه کردن تخم شنبلیله و ریشه مارچوبه تحت تأثیر قرار نگرفته بودند. تخم شنبلیله و ریشه مارچوبه در سطح 5 درصد ماده خشک فاز تأخیر (l) را کاهش داده بودند. تخم شنبلیله تأثیری بر نرخ تخمیر (h-1) یونجه نداشت، اما ریشه مارچوبه در سطح 10 درصد ماده خشک نرخ تخمیر را افزایش (05/0P<) داده بود. نتایج این تحقیق پیشنهاد می‌کند که تخم شنبلیله و ریشه مارچوبه به واسطه محتوای متابولیت‌های ثانویه ممکن است پتانسیل بهبود ارزش غدایی علوفه یونجه را داشته باشند.

References:

Alexander G., Singh B., Sahoo A. and Bhat T.K. (2007). In vitro screening of plant extracts to enhance the efficiency of utilization of energy and nitrogen in ruminant diets. Anim. Feed Sci. Technol. 145, 229-242.

AOAC. (1990). Official Methods of Analysis. Vol. I. 15^th Ed. Association of Official Analytical Chemists, Arlington, VA, USA.

Baccou J.C., Lambert F. and Sauvaire Y. (1977). Spectrophotometric method for determination of total steroidal sapogenin. Analyst. 102, 458-465.

Blümmel M. and Becker K. (1997). The degradability characteristics of 54 roughages and roughage neutral detergent fiber as described by in vitro gas production and their relationship to voluntary feed intake. Br. J. Nutr. 77, 757-786.

ChurchD.C. and Pond W.G. (1988). Basic Animal Nutrition and Feeding. J. Wiley and S. Inc, Ed. New York, USA.

Duncan D.B. (1955). Multiple range and multiple F-tests. Biometrics. 11, 1-42.

France J., Dijkstra J., Dhanoa M.S., Theodorou M.K., Lister S.J., Davies D.R. and Isac D.A. (1993). A model to interpret gas accumulation profiles associated with in vitro degradation of ruminant feeds. J. Theoret. Biol. 163, 99-111.

Getachew G., Blummel M., Makkar H.P.S. and Becker K. (1998). In vitro gas measuring techniques for assessment ¨ of nutritional quality of feeds: a review. Anim. Feed Sci. Technol. 72, 261-281.

Getachew G., Depeters E.J. and Robinson P.H. (2004). In vitro gas production provides effective method for assessing ruminant feeds. Cal. Agric. 58(1), 54-58.

Julkunen-Titto R. (1985). Phenolics constituents in the leaves of northern willows: methods for the analysis of certain phenolics. J. Agric. Food Chem. 33, 213-217.

Lopez S., Dhanoa M.S., Dijkstra J., Bannink A., Kebreab E. and France J. (2007). Some methodological and analytical considerations regarding application of the gas production technique. Anim. Feed Sci. Technol. 135, 139-156.

Makkar H.P.S., Blummel M. and Becker K. (1995). In vitro effects of and interactions between tannins and saponins and fate of tannins in the rumen. J. Sci. Food Agric. 69, 481-493.

Makkar H.P.S. (2004). Recent advances in the in vitro gas method for evaluation of nutritional quality of feed resources. Pp. 55-88 in Assessing Quality and Safety of Animal Feeds. FAO Animal Production and Health Series. Rome.

Makkar H.P.S. (2005). In vitro gas methods for evaluation of feeds containing phytochemicals. Anim. Feed Sci. Technol. 123, 291-302.

Menke K.H. and Steingass H. (1988). Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Anim. Res. Dev. 28, 7-55.

Mirzaei-Aghsaghali A., Maheri-Sis N., Mansouri H., Razeghi ME., Shayegh J. and Aghajanzadeh-Golshani A. (2011). Evaluating nutritional value of apple pomace for ruminants using in vitro gas production technique. Ann. Biol. Res. 2, 100-106.

Naseri V., Hozhabri F. and Kafilzadeh F. (2012). Assessment of in vitro digestibility and fermentation parameters of alfalfa hay based diet following direct incorporation of fenugreek seed (Trigonella foenum) and asparagus root (Asparagus officinalis). J. Anim. Physiol. Anim. Nutr.97(4), 773-784.

Newbold C.J., Lassalas B. and Jouany J.P. (1995). The importance of methanogens associated with ciliate protozoa in ruminal methane production in vitro. Lett. Appl. Microbiol. 21, 230-234.

Pell A.N., Mackie R.I., Mueller-Harvey I. and Ndlovu L.R. (2001). Tannins: analysis and biological effects in ruminant feed (special issue). Anim. Feed Sci. Technol. 91(1), 1-113.

SAS Institute. (1996). SAS^®/STAT Software, Release 6.11. SAS Institute, Inc., Cary, NC. USA.

Scehovic J. (1999). Evaluation in vitro de l’activité de la population microbienne du rumen en présence d’extraits végétaux. Rev. Suisse. Agric. 31, 89-93.

Sliwinski B.J., Soliva C.R., Machmuller A. and Kreuzer M. (2002). Efficacy of plant extracts rich in secondary constituents to modify rumen fermentation. Anim. Feed Sci. Technol. 101, 101-104.

Stumm C.K. and Zwart K.B. (1986). Symbiosis of protozoa with hydrogen utilizing methanogens. Microbial. Sci. 3, 100-105.

Theodorou M.K., Williams B.A., Dhanoa M.S., McAllan A.B. and France J. (1994). A simple gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminant feeds. Anim. Feed Sci. Technol. 48, 185-197.

Tilley J.M.A. and Terry R.A. (1963). A two-stage technique for the in vitro digestion of forage crops. J. Br. Grassl. Soc. 18, 2.

Van Soest P.J., Robertson J.B. and Lewis B.A. (1991). Carbohydrate methodology, metabolism and nutritional implications in dairy cattle. J. Dairy Sci.74, 3583-3597.

Wang Y., McAllister T.A., Yanke L.J. and Cheek P.R. (2000). Effect of steroidaul saponin from Yucca schidigera extract on ruminant microbes. J. Appl. Microbiol. 88, 887-896.