تحرک، زنده‌مانی و نابهنجاری اسپرماتوزوآ گاو نر Bali با رقیق کننده‌های Andromed و تریس-زرده تخم ‌مرغ نگهداری شده در دمای 4 درجه سلسیوس

Subject Areas : Camel

ر. سوهاردی ¹ ( School of Agricultural Technology, Walailak University, Nakhon Si Thammarat, Thailand|Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Mulawarman University, Samarinda, East Kalimantan, Indonesia )
م. مگاواتی ² ( Vocational High School 1 Penajam Paser Utara, Majoring in Animal Husbandry, Sepaku, East Kalimantan, Indonesia )
ف. اردهانی ³ ( Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Mulawarman University, Samarinda, East Kalimantan, Indonesia )
پ. سامپون ⁴ ( Food Technology and Innovation Research Center of Excellence, School of Agricultural Technology, Walailak University, Nakhon Si Thammarat 80161, Thailand )
س. ووتیسوتیمتو ⁵ ( School of Agricultural Technology, Walailak University, Nakhon Si Thammarat, Thailand )

Received: 2019-05-31 Accepted : 2019-07-15 Published : 2020-06-01

Keywords: ناهنجاری, زنده‌مانی, تحرک, ®Andromed, منی گاو Bali, تریس-زرده تخم ‌مرغ,

Abstract :

گاو نر Bali پتانسیل بالایی برای توسعه به­ عنوان یک منبع گوشت ملی در اندونزی دارد که می‌تواند نگرانی‌های مربوط به واردات گوشت را برطرف کند. پرورش گاو نر Bali تنها نیازمند سیستم‌های نگهداری کوچک است، دارای باروری بالا و مرگ­و­میر گوساله پایین به ­عنوان مزایای آن یک سرمایه‌گذاری در حال رشد از طریق تلقیح مصنوعی (AI) با منی جمع‌آوری شده گاوهای نر برتر فنوتیپی است. با این حال، ابزار کارآمد برای حفظ کیفیت منی گاو نر Bali با استفاده از رقیق­کننده‌ها هنوز هم نیاز به اکتشاف در سطح ملی دارد. هدف از این پژوهش تعیین اینکه کدام یک از رقیق­کننده‌های انتخاب شده به بهترین وجه کیفیت مایع منی گاو نر Bali محلی را برای مدت پنج روز در دمای 4 درجه سلسیوس حفظ می‌کند. رقیق­کننده‌های Andromed و تریس-زرده تخم ‌مرغ در حفظ کیفیت منی جمع آوری شده از گاوهای هفت ساله با حداقل تحرک 70 درصد مقایسه شدند. تحرک، زنده‌مانی، و نابهنجاری اسپرماتوزوآ مشاهده و مقایسه شدند. این تحقیق از طرح فاکتوریل کاملا تصادفی با دو فاکتور که هر فاکتور دارای دو سطح و پنج سطح با سه سطح زمانی استفاده کرده است. نتایج این مطالعه نشان داد اسپرماتوزوآ گاو نر Bali 51.66 درصد تحرک، 59.13 درصد زنده‌مانی، و تنها 22.68 درصد نابهنجاری تا روز پنج در رقیق­کننده تریس-زرده تخم ‌مرغ نشان داده است. در مقایسه، رقیق­کننده Andromed 33/23 درصد تحرک، 59/45 درصد زنده‌مانی، و 23.15 درصد نابهنجاری تحت شرایط مشابه نشان داده است. برای نتیجه­گیری، تریس-زرده تخم ‌مرغ یک رقیق کننده قوی هنگام مقایسه با Andromed در نگهداری کیفیت اسپرم گاوهای بومی Bali با بهترین حفظ تحرک، زنده‌مانی اسپرماتوزوآ و کمترین درصد نابهنجاری هنگام ذخیره برای 5 روز در دمای 4 درجه سلسیوس است. این داده‌ها اطلاعات مفیدی برای پرورش دهندگان گاو نر فراهم می‌کند، به ویژه پرورش دهندگان گاو نر Bali در اندونزی در عمل تلقیح مصنوعی برای در نظر گرفتن دقیق انتخاب رقیق‌کننده نسبت به زمان نگهداری و دما در بهبود روش‌های پرورش گاو برای افزایش بهره‌وری گوشت در این منطقه می‌باشد.

References:

Asher G.W., Berg D.K. and Evans G. (2000). Storage of semen and artificial insemination in deer. Anim. Reprod. Sci. 62, 195-211.

Banday M.N., Lone F.A., Rasool F., Rather H.A. and Rather M.A. (2017). Does natural honey act as an alternative to antibiotics in the semen extender for cryopreservation of crossbred ram semen? Iranian J. Vet. Res. 18(4), 258-263.

Da-Costa N., Susilawati T., Isnaini N. and Ihsan M.N. (2016). The difference of artificial insemination successful rate of ongole filial cattle using cold semen with different storage time with tris aminomethane egg yolk dilution agent. IOSR J. Pharm. 6(6), 13-19.

David I., Kohnke P., Lagriffoul G., Praud O., Plouarboué F., Degond P. and Druart X. (2015). Mass sperm motility is associated with fertility in sheep. Anim. Reprod. Sci. 161, 75-81.

Gharajelar S.N., Sadrkhanloo R.A., Onsori M. and Saberivand A. (2016). A comparative study on the effects of different cryoprotectants on the quality of canine sperm during vitrification process. Vet. Res. Forum. 7(3), 235-239.

Hafez E.S.E. (2000). Semen Evaluation in Reproduction in Farm Animals. Lippincott Wiliams and Wilkins. Maryland, USA.

Han X.F., Niu Z.Y., Liu F.Z. and Yang C.S. (2005). Effect of diluents, cryoprotectants, equilibration time and thawing temperature on cryopreservation of duck semen. Poult. Sci. 4, 197-201.

Haryani R., Toleng A.L., Sonjaya H. and Yusuf M. (2016). Characteristic of Bali bulls’ sperms assessed using computerized assisted semen analysis (CASA). Int. J. Sci. Basic Appl. Res. 28(2), 161-168.

John R., Newcombe N. and Cuervo-Arango J. (2015). The effect of time of breeding relative to ovulation on pregnancy rate when using cooled transported semen or natural mating in the mare. J. Equine Vet. Sci. 35(11), 956-959.

Kubkomawa H.I. (2018). The use of artificial insemination (AI) technology in improving milk, beef and reproductive efficiency in tropical Africa: A review. J. Dairy Vet. Sci. 5(2), 1-18.

Kunowska-Slósarz M., Przysucha T., Gołębiewski M., Slósarz J. and Balcerak M. (2015). The influence of selected factors on the beef bull’s sperm quality used for artificial insemination. Elect. J. Polish Agric. Univ. 18(1), 1-5.

Lopes G., Ferreira P. and Rocha A. (2015). Tris egg yolk glycerol (TEY) extender developed for freezing dog semen is a good option to cryopreserve bovine epididymal sperm cells. Reprod. Domest. Anim. 50(1), 97-103.

Malik A., Wahid H., Rosnina Y., Kasim A. and Sabri M. (2012). Effects of timed artificial insemination following estrus synchronization in postpartum beef cattle. Open Vet. J. 2, 1-5.

Mara L., Dattena M., Pilichi S., Sanna D., Branca A. and Cappai P. (2007). Effect of different diluents on goat semen fertility. Anim. Reprod. Sci. 102(1), 152-157.

Ministry of Agriculture of the Republic of Indonesia. (2006). Good Breeding Practice. No. 54/Permentan/OT.140/10/2006, Jakarta.

Mohammed A. (2018). Artificial insemination and its economical significancy in dairy cattle: review. Int. J. Res. Stud. Microbiol. Biotechnol. 4(1), 30-43.

Mohanty T.K., Lone S.A., Kumaresan A., Bhakat M., Kumar R., Baithalu R.K., Sinha R., Paray A.R., Yadav H.P., Sahu S.K. and Mohanty A.K. (2018). Sperm dosage and site of insemination in relation to fertility in bovines. Asian Pac. J. Reprod. 7(1), 1-5.

O’Brien J.K., Steinman K.J., Schmitt T. and Robeck T.R. (2018). Semen collection, characterisation and artificial insemination in the beluga (Delphinapterus leucas) using liquid-stored spermatozoa. Reprod. Fertil. Dev. 20(7), 770-783.

Papa P.M., Maziero R.D., Guasti P.N., Junqueira C.R., Freitas-Dell’Aqua C.P., Papa F.O., Vianna F.P., Alvarenga M.A., André M., Crespilho A.M. and Dell’Aqua Jr J.A. (2015). Effect of glycerol on the viability and fertility of cooled bovine semen. Theriogenology. 83(1), 107-113.

Parker H.M. and McDaniel C.D. (2006). The immediate impact of semen diluent and rate of dilution on the sperm quality index, ATP utilization, gas exchange, and ionic balance of broiler breeder sperm. Poult. Sci. 85(1), 106-116.

Prastowo S., Kusuma M.S.T., Widyas N., Ratriyanto A., Pramono A. and Setyawan I.A. (2018a). Effect of season on semen production and quality parameter in Indonesian Bali Cattle (Bos javanicus). Pp. 23-24 in Proc. Int. Conf. Sci. Appl. Sci., Surakarta, Indonesia.

Prastowo S., Dharmawan P., Nugroho T., Bachtiar A., Lutojo L. and Pramono A. (2018b). Age effect on Bali cattle (Bos javanicus) fresh semen quality. J. Ilmu Ternak. 18(1), 1-8.

Rakha B.A., Hussain I., Akhter S., Ullah N., Andra S.N.H. and Ansari M.S. (2013). Evaluation of tris–citric acid, skim milk and sodium citrate extenders for liquid storage of Punjab Urial (Ovis vignei punjabiensis) spermatozoa. Reprod. Biol. 13(3), 238-242.

Ratnawati D., Isnaini N. and Susilawati T. (2018). Character motility of liquid semen on Ongole crossbreed (PO), Bali and Madura bulls with different diluents at cold storage. Asian J. Microbiol. Biotechnol. Environ. Sci. 20(1), 21-28.

Said S., Arman C. and Tappa B. (2014). Conception rates and sex concomitant of Bali calves following oestrus synchronization and artificial insemination of frozen sexed semen under farm conditions. J. Indonesian Trop. Anim. Agric. 39(1), 10-16.

Secretariat General Ministry of Agriculture of the Republic of Indonesia. (2000). Official Procedure for Frozen Semen Production and Distribution. Ministry of Agriculture, Directorate General of Animal Husbandry Production, Jakarta.

Sieme H., Katila T. and Klug E. (2004). Effect of semen collection practices on sperm characteristics before and after storage and on fertility of stallions. Theriogenology. 61(4), 769-784.

Solihati N. and Kune P. (2009). Effect of type of diluent on motility and survival of spermatozoa of liquid cement Simmental cattle. Faculty of Animal Husbandry. Padjajaran University Press, Bandung, Indonesia.

Solihati N., Idi R., Rasad S.D., Rizal M. and Fitriati M. (2008). Quality of Ongole breeds in cauda epididymal spermatozoa in milk thinners, tris and egg yolk citrate at storage 4 ˚C. J. Anim. Prod. 10(1), 22-29.

SPSS Inc. (2011). Statistical Package for Social Sciences Study. SPSS for Windows, Version 21. Chicago SPSS Inc., USA.

Thun R., Hurtado M. and Janett F. (2002). Comparison of biociphos-plus and tris-egg yolk extender for cryopreservation of bull semen. Theriogenology. 57(3), 87-94.

Toelihere M.R. (1985). Reproductive Physiology in Livestock. Angkasa Publisher, Bandung, Indonesia.

Toelihere M.R. (1993). Artificial Insemination in Livestock. Angkasa Publisher, Bandung, Indonesia.

Udeh I. and Oghenesode B. (2011). Effects of type of extender and storage conditions on the motility of goat spermatozoa. Int. J. Anim. Vet. Adv. 3(5), 282-286.

Vera-Munoz O., Amirat-Briand L., Bencharif D., Anton M., Desherces S., Shmitt E., Thorin C. and Tainturier D. (2011). Effect of low-density lipoproteins, spermatozoa concentration and glycerol on functional and motility parameters of bull spermatozoa during storage at 4 ˚C. Asian J. Androl. 13(2), 281-286.

Yendraliza Y., Harap A.E., Handoko J. and Rodiallah M. (2019). Quality of sexed sperm of Bali bull in regional artificial insemination center of Riau province. Bull. Anim. Sci. 43(2), 86-91.

Zen Z., Putih S.G.D. and Leswita L. (2001). Effect of citrate of soybean milk as a cement thinner on the percentage of life, abnormalities and survival of spermatozoa of Frisian Holstein cattle. J. Anim. Husband. 24, 89-94.

Zhou J., Chen L., Li J., Li H., Hong Z., Xie M., Chen S. and Yao B. (2015). The semen pH affects sperm motility and capacitation. PLoS One. 10(7), 1-15.