‌آسیب‌شناسی بافتی دستگاه تنفس ماکیان پس از واکسیناسیون علیه برونشیت عفونی H120

محورهای موضوعی : پژوهش های بالینی دام های بزرگ

تاریخ دریافت : 1400/04/20 تاریخ پذیرش : 1400/04/20 تاریخ انتشار : 1388/10/01

کلید واژه: برونشیت عفونی, واکسیناسیون, ماکیان, واکسن H120,

چکیده مقاله :

استفاده از واکسن برونشیت به‌روش اسپری ممکن با عوارض تنفسی در جوجه‌ها همراه باشد و زمینه را برای بروز سایر بیماری‌های عفونی تنفسی فراهم می‌آورد. هدف این تحقیق، ارزیابی هیستوپاتولوژیک دستگاه تنفسی ماکیان پس از واکسیناسیون علیه برونشیت عفونی با سویه تخفیف حدت یافته ماساچوست (H120) بود. بدین‌منظور، تعداد 60 قطعه جوجه گوشتی یک‌روزه عاری از مایکوپلاسما سپتیکوم و مایکوپلاسما سینوویه به دو گروه شاهد و تیمار، هر یک با سه تحت‌گروه، تقسیم شدند. جوجه‌های گروه تیمار در روز اول آزمایش واکسینه شدند. شرایط تغذیه و نگهداری برای هر دو گروه یکسان در نظر گرفته شد. تحت گروه‌های تیمار همراه با تحت‌گروه‌های شاهد متناظر خود به‌ترتیب در روز‌های 5، 10 و 21 بعد از واکسیناسیون کالبدگشایی شدند. نای و ریه‌های جوجه‌های مورد آزمایش جدا و از آ‌نها مقاطع بافتی مطابق با روش‌های متداول جهت مطالعات ریزبینی تهیه گردید. در مقاطع بافتی تهیه‌شده، آسیب‌های بافت پوششی و مخاط نای و برونشیول‌ها و پارانشیم ریه مورد ارزیابی و بین تحت گروه‌ها مورد مقایسه قرار گرفت. برای مقایسه شدت ضایعات پاتولوژیک مشاهده شده، از آزمون آماری یومن ویتنی استفاده شد. بین تحت گروه تیمار در روز 10 و تمامی تحت‌گروه‌های شاهد اختلاف معنی‌داری وجود داشت (05/0>P). همچنین اختلاف معنی‌داری بین تحت گروه تیمار روز 21 و تحت‌گروه‌های شاهد برآورد گردید (01/0>P). بین تحت گروه‌های تیمار در روز‌های 10 و 21 دوره آزمایش نیز اختلاف معنی‌داری مشاهده گردید (05/0>P). بین تحت‌گروه تیمار در روز 5 و تحت گروه‌های شاهد اختلاف آماری معنی‌داری برآورد نگردید. نتایج نشان داد که واکسیناسیون علیه برونشیت عفونی با سویه تخفیف حدت یافته ماساچوست (H120) به‌روش اسپری، باعث آسیب‌های پاتولوژیک دستگاه تنفسی ماکیان می‌گردد.

چکیده انگلیسی:

Using the infectious bronchitis vaccine by spraying method can result to respiratory complications in chickens. The aim of the present study was to histopathological evaluate of the respiratory system of chickens following vaccination against infectious bronchitis virus with live attenuated vaccine (Massachusetts serotype) via spraying method. For this purpose, sixty one-day-old chickens – free of Mycoplasma gallicepticum and Mycoplasma synoviae – were randomly assigned into 2 equal groups and 3 subgroups determined for each. The chickens of treatment group were vaccinated at the first day of experiment. The management condition and feeding was equal for both groups. Treatment subgroups along with their counterpart control subgroups were necropsies at the 5th and 10th days of experiment, respectively. Trachea and lungs of the experimental chickens were separated for microscopic evaluations, as histological sections were prepared routinely. Microscopically, damages of the trachea and bronchial epithelium and mucosa along with parenchyma of the lungs assessed and compared between the subgroups. Significant differences between the subgroups were determined by Mann Whithney U test. There were significant differences between treated subgroup at the day 10 with all of the control subgroups (p<0/05). There were also significant differences between treated subgroup at the day 21 and the control subgroups (p<0/01). Furthermore, there was significant difference between treated subgroups at the days 10 and 21 of experiment (p<0/05). No significant differences determined between treated subgroup at the day 5 and the control subgroups. The results showed that vaccination against infectious bronchitis virus (H120) with live attenuated vaccine (Massachusetts serotype) by spray results in histopathological damages of respiratory system in chickens.

منابع و مأخذ:

1-      Bilgili, S.F. (1999): Recent advances in electrical stunning. Poult. Sci, 78, 282-286.

2-      Brown, A.J., and C.D. Brace well. (1988): Effect of repeated infections of chickens with infectious bronchitis viruses on the specifity of their antibody responses. Vet Rec, 122: 207-208.

3-       Di Matteo, A.M., M.c. Snoez, C.M. Plano, and I. Von Lawzewitsch. (2000): Morphologic observations on respiratory tract of chickens after hatchery Infectious Bronchitis vaccination and Formaldehyde fumigation. Avian Dis, 44: 507-518.

4-       Fulton, R.M., W.M. Reed, and H.L.Thacker. (1993): Cellular responses of the respiratory tract of chickens to infection with Massachusetts 41 and Australian T infectious bronchitis viruses. Avian Dis, 37: 951-960.

5-       Hopkins, S.R., and H.W. Yoder. (1984): Increased incidence of airsacculitis in broilers infected with mycoplasma synoviae and chicken passaged infectious bronchitis virus. Avian Dis, 28: 386-396.

6-       Janker, L., Wang, D, and E.W. Collisson. (1993), Evidence of natural recombination within the S1 gene of infectious bronchitis visus. Virology 192:710-716.

7-       Janker, L., Wang, D, hock, E, Ebiary and E.W. Collisson. (1999), Evolutionary Implications of genetic variation in the S1 gene of infectious bronchitis virus.Virus Res 34:327-338.

8-      Kleven S.H., C.S. Edison, and O.J. Fletchers. (1978): Airsacculitis induced in broilers with a combination of Mycoplasma galisepticum and respiratory viruses. Avian Dis, 22: 708.

9-       Kleven S.H., J.R. Glisson. (1997): Multicausal respiratory disease; Disease of poultry, 10th. Iowa state university Press, pp 1008-1010.

10-   Kling H.F. and C.L. Quarles. (1974): Effects of atmospheric ammonia and the stress of infectious bronchitis vaccination on leghorn males. Poult Sci, 53: 1161-1167.

11-  Riddell C. (1987): Avian histopathology. American Association of Avian Pathology, Kennett Square, PA.119-120.

12-   Smith H., J. Cook, and Z. Parsell. (1985): The experimental infection of chickens with mixtures of infectious bronchitis virus and Escherichia coli. J Gen Virol, 66: 777-786.

13-  Van Eck, J. H H. and E. Goren. (1991): An Ulster 2C strain derived Newcastle disease vaccine: vaccinal reaction in comparison with other lentogenic Newcastle disease vaccines. Avian Pathol 20:497–507.