بررسی الگوی مقاومت آنتی‌بیوتیکی در سویه های کلبسیلاپنومونیه جدا شده از موارد کلینیکی در شهرستان اصفهان
محورهای موضوعی : میکروبیولوژی
حسین خدابنده شهرکی
1
*
,
سارا باقری
2
1 -
2 - دانشگاه آزاد شهرکرد
کلید واژه: مقاومت آنتی بیوتیکی, کلبسیلاپنومونیه, ژن های مقاومت,
چکیده مقاله :
مقاومت دارویی کلبسیلا روز به روز افزوده میشود و بنابراین انجام تستهای مقاومت دارویی، قبل از تجویز آنتیبیوتیک، ضروری به نظر میرسد. هدف از این مطالعه تعیین الگوی مقاومت آنتی‌بیوتیکی در سویه های کلبسیلا پنومونیه جدا شده از موارد کلینیکی شهرستان اصفهان میباشد. مطالعه حاضر روی 90 ایزوله کلبسیلا پنومونیه جدا شده از نمونه های کلینیکی از بیماران مراجعه کننده به آزمایشگاه های تشخیص طبی شهرستان اصفهان انجام شد. با استفاده از روشهای بیوشیمیایی و تکنیک مولکولی بر اساس ردیابی ژن 16srRNA همه ی سویه ها تایید و مقاومت آنتی بیوتیکی ایزوله‌ها با استفاده از روش دیسک دیفیوژن و روش مولکولی بر اساس ژنهای (qnr،tet A، tet B, aac (3)IIa وsul1) بررسی شدند. از 90 سویه ی مورد بررسی الگوی مقاومت ضد میکروبی بیشترین مقاومت میکروبی به پنیسیلین (75/93 درصد) و بیشترین حساسیت نسبت به وانکومایسین (100 درصد) برآورد گردید. ژنaac (3)IIa (کد کننده مقاومت به جنتامایسین) با فراوانی 33/83% و ژن qnr (کد کننده مقاومت به سیپروفلوکساسین) با فراوانی 16/16 درصد بیشترین و کمترین ژنهای کد کننده مقاومت آنتی بیوتیکی ردیابی شده در سویه های کلبسیلا پنومونیه بودند. کلبسیلا پنومونیه دارای مقاومت چندگانه یک خطر جدی برای بیماران مراجعه کننده به بیمارستان است، بنابراین نظارت بر مصرف آنتیبیوتیکها و تعیین سویه های مقاوم به داروها میتواند از توسعه مقاومت در باکتریها جلوگیری کند.
Klebsiella drug resistance is increasing day by day and therefore, performing drug resistance tests before prescribing antibiotics seems essential. The aim of this study is to determine the antibiotic resistance pattern in Klebsiella pneumoniae strains isolated from clinical cases in Isfahan city. The present study was conducted on 90 Klebsiella pneumoniae isolates isolated from clinical samples from patients referred to medical diagnostic laboratories in Isfahan city. Using biochemical methods and molecular techniques based on 16srRNA gene detection, all strains were confirmed and the antibiotic resistance of the isolates was investigated using the disk diffusion method and molecular methods based on (qnr, tet A, tet B, aac (3)IIa and sul1) genes. Of the 90 strains studied, the antimicrobial resistance pattern was estimated to be the highest microbial resistance to penicillin (93.75%) and the highest sensitivity to vancomycin (100%). The aac(3)IIa gene (encoding gentamicin resistance) with a frequency of 83.33% and the qnr gene (encoding ciprofloxacin resistance) with a frequency of 16.16% were the most and least frequently detected antibiotic resistance genes in Klebsiella pneumoniae strains. Multidrug-resistant Klebsiella pneumoniae is a serious risk for patients visiting the hospital, so monitoring antibiotic use and identifying drug-resistant strains can prevent the development of resistance in bacteria.
1. Babypadmini S, Appalaraju B. Extended spectrum-lactamases in urinary isolates of Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae prevalence and susceptibility pattern in a tertiary care hospital. Indian J Med Microbiol. 2004; 22(3):172-174.
2. Tsai YK, Fung CP, Lin JC, Chen JH, Chang FY, Chen TL, Siu LK. Klebsiella pneumoniae outer Membrane Porins OmpK35 and OmpK36 play roles in both Antimicrob Resistance and Virulence. Antimicrob Agents Chemother. 2011; 55(4):1485-1493.
3. Luo Y, Yang J, Zhang Y, Ye L, Wang L, Guo L. Prevalence of β-lactamases and 16S rRNA Methylase Genes Amongst Clinical Klebsiella pneumoniae Isolates Carrying Plasmid-mediated Quinolone Resistance Determinants. Int J Antimicrob Agents. 2011; 37(4):352-355.
4. Green VL, Verma A, Owens RJ, Phillips SE, Carr SB. Structure of New Delhi Metallo-β-Lactamase 1 (NDM-1). Acta Crystallogr Sect F Struct Biol Cryst Commun. 2011; 67(10):1160-1164.
5. Lye DC, Kwa AL, Chlebicki P. Antimicrobial Resistance and Practical Solutions. Ann Acad Med Singapore. 2011; 40(4): 156-162.
6. Mustafa OA, Yusuf D. Investigation of some antibiotic susceptibility plasmid profiles and ESBL characteristic of Klebsiella pneumoniae isolated from urinary system infection. World Applied Sci J. 2009; 6(5):630-636.
7.Walker, Stuart T. Cocos stain-causing Gram-positive. In: Bahador A, Alikhani MY, Mansouri SH, Piri Dogahe H, Taheri Kalani M. Walkers Microbiology. Tehran: khosravi publications & Dibaj publications; 2007. p 151-93.
8. Lavilla S, Gonzalez-Lopez JJ, Sabate M, Garcia-Fernandez A, Larrosa MN, Bartolome RM, et al. Prevalence of qnr genes among extended-spectrum beta-lactamase-producing enterobacterial isolates in Barcelona, Spain. J Antimicrob Chemother. 2008;61(2):291-295.
9. Wang M, Guo Q, Xu X, Wang X, Ye X, Wu S, et al. New plasmid-mediated quinolone resistance gene, qnrC, found in a clinical isolate of Proteus mirabilis. Antimicrob Agents Chemother. 2009; 53(5):1892-1897.
10. Garnier F, Raked N, Gassama A, Denis F, Ploy MC. Genetic environment of quinolone resistance gene qnrB2 in a complex sul1-type integron in the newly described Salmonella enterica serovar Keurmassar. Antimicrob Agents Chemother. 2006; 50(9):3200-2.
11. Bouchakour M, Zerouali K, Gros Claude JD, Amarouch H, El Mdaghri N, Courvalin P, et al. Plasmid-mediated quinolone resistance in expanded spectrum beta lactamase producing enterobacteriaceae in Morocco. J Infect Dev Ctries. 2010; 4(12):779-803.
12.Nordmann P. Emergence of plasmid-mediated resistance to quinolones in Enterobacteriaceae. Pathol Biol (Paris). 2006; 54(1):7-9.
13. Maynard C, Bekal S, Sanschagrin F, Levesque RC, Brousseau R, Masson L, Larivière S, Harel J. Heterogeneity among virulence and antimicrobial resistance gene profiles of extraintestinal Escherichia coli isolates of animal and human origin. J Clin Microbiol. 2004; 42 (12): 5444-52.
14. Soleimani-Asl Y, Zibaei M, Firoozeh. Detection of qnrA gene among quinolone-resistant Escherichia coli isolated from urinary tract infections in Khorram Abad during 2011-2012. J Kashan Univ Med Sci. 2013; 7(5): 488-494.
15.Kerrn MB, Klemmensen T, Frimodt-Møller N, Espersen F. Susceptibility of Danish Escherichia coli strains isolated from urinary tract infections and bacteraemia, and distribution of sul genes conferring sulphonamide resistance. J Antimicrob Chemother. 2002; 50(3): 513–516.
16.Chen LF, Chopra T, Kaye KS. Pathogens resistant to antibacterial agents. Infect Dis Clin North Am. 2009; 23(4): 817-845.
17. سلطان دلال، م. میرعماد، ا. شریفی یزدی، م ک. و یانس، س. تعيين الگوي مقاومت آنتي بيوتيكي گونه‌هاي كلبسيلا جدا شده از نمونه هاي بيماران بستري در بيمارستان امام خمينی (ره). مجله دانشکده‌ی پیراپزشکی دانشگاه علوم پزشکی تهران. دوره‌ی 6. شماره4. 1391. ص 281-275.
18.Al Shara MA. Emerging Antimicrobial Resistance of Klebsiella pneumonia strains Isolated from pediatric patients in Jordan. The New Iraqi Journal of Medicine 2011; 7(2): 29-32.
19. جلال پور، ش. الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی در سویه‌های کلبسیلا پنومونیه‌ی β لاکتامازهای وسیع‌الطیف جدا شده از بیماران مبتلا به عفونت‌های ادراری. مجله دانشکده‌ی پزشکی اصفهان. سال بیست و نهم. شماره‌ی 142. 1390، ص 706-695.
20. Kizirgil A. Demirdag K. Ozden M. Bulut Y. Yakupogullari Y. Toraman ZA. In vitro activity of three different antimicrobial agents against ESBL producing Escherichia coli Klebsiella pneumoniae blood isolates. Microb Res. 2005; 160 (2): 135-140.
21. Khalaf, NG. Eletreby, MM. Hanson. ND. Characterization of CTX-M ESBLs in Enterobacter cloacae, Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae clinical isolates from Cairo. Egypt. BMC Infect Dis. 2009; 9(84):1-5.
22.Chong, Y. Yakushiji. H. Ito, Y. Kamimura. T.Clinical molecular epidemiology of extended-spectrum b-lactamase-producing Escherichia coli Klebsiella pneumoniae in a long-term study from Japan. EurJ Clin Microbiol Infect Dis. 2001; 30 (1): 83–87.
23.Carattioli A. Resistance plasmide families in Enterobacteriaceae. J Antimicrob Chemother. 2009; 53: 2227-2238.
24. Grape M, Farra A, Kronall G, Sundstrom L. Integrons and gene cassettes in clinical isolates of co trimoxazole resistant gram negative bacteria. Clin Microbiol Infect. 2005; 11(3): 185- 192.
25.Trobos M, Jakobsen L, Olsen KE, et al. Prevalence of sulfonamide resistance and class 1integron genes in Escherichia coli isolates obtained from broilers, broiler meat healthy humans and urinary infections in Denmark. J Antimicrob Agents. 2008; 32(3): 367-369.
26. Bean DC, Live more D, Hall LM. E. coli: implications for Plasmids imparting sulfonamide resistance in persistence. Antimicrob Agents Chemother. 2009; 53(2): 1088-1093.