مطالعه اثر آنالوگ پروستاگلاندین F2α، داینوپروست، بر بافت جسم زرد خرگوش آبستن کاذب
محورهای موضوعی :
آسیب شناسی درمانگاهی دامپزشکی
سید اسماعیل صفوی
1
,
میر هادی خیاط نوری
2
1 - گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تبریز، تبریز، ایران
2 - گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تبریز، تبریز، ایران
تاریخ دریافت : 1387/02/30
تاریخ پذیرش : 1387/06/04
تاریخ انتشار : 1387/03/01
کلید واژه:
خرگوش,
داینوپروست,
پروستاگلاندین F2α,
جسم زرد,
آبستن کاذب,
چکیده مقاله :
در این بررسی تأثیر آنالوگ پروستاگلاندین F2α (PGF2α)، داینوپروست، بر روی بافت جسم زرد خرگوش آبستن کاذب مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور، 42 سر خرگوش ماده بالغ در شش گروه هفت‌تایی به‌طور تصادفی توزیع گردید. در سه گروه در روز دهم آبستنی کاذب، داینوپروست (1mg/kg) به‌صورت داخل عضلانی تزریق و به‌ترتیب 24، 48 و 72 ساعت پس از تزریق، حیوانات کالبدگشایی شدند. در سه گروه دیگر به‌عنوان گروه شاهد سرم فیزیولوژی تزریق شد. در تمام گروه‌ها پس از اخذ نمونه خونی، حیوانات کالبدگشایی و تخمدان آن‌ها خارج و توزین گردید. پس از نمونه‌برداری و پایدارسازی در فرمالین نمکی 10 %، مقاطع بافتی با رنگ‌آمیزی هماتوکسیلین- ائوزین تهیّه و جسم زرد از لحاظ مورفولوژی و مورفومتری مورد مطالعه قرار گرفت. مطالعات مورفومتری نشان داد که قطر جسم زرد در تمام گروه‌های تیمار در مقایسه با گروه‌های شاهد کاهش معنی‌داری (05/0p<) دارد. همچنین پیشرفت بافت همبند، افزایش تعداد هسته‌های پیکنوزه، گسترش فضاهای بین سلولی و ایجاد واکوئل‌های درشت در گروه‌های تیمار به‌طور معنی‌داری (05/0p<) در مقایسه با گروه‌های شاهد افزایش یافت. قطرات چربی محیطی و قطرات چربی مرکزی به‌ترتیب 24 و 48 ساعت پس از تزریق PGF2α به‌صورت معنی‌داری (05/0p<) افزایش یافتند. غلظت پروژسترون سرم در تمامی گروه‌های تیمار در مقایسه با گروه‌های شاهد کاهش معنی‌داری (05/0p<) نشان داد. نتایج بیان‌گر افزایش پیشرونده لوتئولیز ساختمانی و فونکسیونی در گروه‌های تیمار در مقایسه با گروه‌های شاهد بود.
چکیده انگلیسی:
In this study the effect of prostaglandin F2 alpha analogue, dinoprost, on corpus luteal tissue in pseudopregnant rabbit was investigated. For this purpose, 42 mature female rabbits were randomly divided into 6 groups of 7 animals each. In 3 groups, on day 10 of pseudopregnancy, dinoprost (1mg/kg) was injected intramuscularly and 24, 48 and 72 hours following injection respectively, the animals were necropsied. In the other three groups, normal saline solution was injected as control groups. In all groups, after blood sampling the animals were necropsied and their ovaries removed and weighed. Following sampling and fixation in 10% formalin solution, the tissue samples were stained by Hematoxylene & Eosine method and the corpora lutea were studied morphologically and morphometrically. Histomorphometrical study indicated that the diameter of corpus luteum decreased significantly (p<0.05) in all treatment groups compared with the control groups. Also progression of connective tissue, pyknotic nuclei, intercellular space and large vacuole formation increased significantly (p<0.05) in treatment groups in comparison with the control groups. Peripheral and central fatty droplets increased significantly (p<0.05) 24 and 48 hours post PGF2α injection respectively. Serum progesterone concentration decreased significantly (p<0.05) in all treatment groups as compared with the control groups. The results indicated that structural and functional luteolysis progressively increased in PGF2α treated groups compared with the control groups.
منابع و مأخذ:
Agudo, L.S., Zahler, W.L. and Smith, M.F. (1984): Effect of prostaglandine F2 alpha on the adenylate cyclase and phosphodiesterase activity of ovine corpora lutea. J. Animal. Sci., 54(4): 955-62.
Alan, M. and Taşal, I. (2002): Efficacy of prostaglandin F2 alpha and misoprostol in the induction of parturition in goats. Vet. Rec., 150(25): 788-9.
Bagwell, J.N., Ziegler, J. and Ruby, J.R. (1976): The effects of prostaglandin F2 alpha on the fine structure of the corpus luteum of the pregnant hamster. Cell and Tissue Research, 174(4): 465-74.
Behrman, H.R. and Hichens, M. (1976): Rapid block of gonadotropin uptake by corpora lutea in vivo induced by prostaglandin F2 alpha. Prostaglandins, 12(1): 83-95.
Behrman, H.R., Hal, A.K., Perston, H.L. and Gore, S.D. (1982): Antagonistic interactions of adenosine and prostaglandin F2 alpha modulate acute responses of luteal cells to luteinizing hormone. Endocrinology, 110(1): 38-46.
Bennegard-Eden, B., Hahlin, M. and Kindahl, H. (1995): Interaction between oxytocin and prostaglandin F2 alpha in human corpus luteum. Human Reproduction, 10(9): 2320-4.
Boiti, C., Canali, C., Zerani, M. and Gobbetti, A. (1998): Changes in refractoriness of rabbit corpora lutea to a prostaglandin F2 alpha analogue, alfaprostol, during pseudopregnancy. Prostaglandins & other Lipid Mediators, 56(4): 255-64.
Bruce, N.W. and Hillier, K. (1974): The effect of prostaglandin F2 alpha on ovarian blood flow and corpora lutea regression in the rabbit. Nature, 249(453): 176-7.
Dharmarajan, A.M., Sueoka, K., Miyazaki, T., Atlas, S.J., Ghodgaonkar, R.B., Dubin, N.H., Zirkin, B.R. and Wallach, E.E. (1989): Prostaglandins and progesterone secretion in the in vitro perfused pseudopregnant rabbit ovary. Endocrinology, 124(3): 1198-203.
Dorflinger, L.J., Luborsky, J.L., Gore, S.D. and Behrman, H.R. (1983): Inhibitory characteristics of prostaglandin F2 alpha in the rat luteal cell. Prostaglandins, 33(2): 1891-9.
Gelety, T.J. and Chaudhuri, G. (1992): Prostaglandins in the ovary and fallopian tube. Baillieres Clin Obstet Gynaecol., 6(4): 707-29.
Henderson, K.M. and Mcnatty, K.P. (1975): A biochemical hypothesis to explain the mechanism of luteal regression. Prostaglandis, 9(5): 779-97.
13. Hoyer, P.B. (1998): Regulation of luteal regression: the ewe as a model. J. Soc. Gynecol Investi, 5(2): 49-57.
Kawai, A. (1982): In vitro production of prostaglandins by the uterine and ovarian tissues of pseudopregnant rabbits in luteolysis and mechanism of luteolysis induced by PGF2 alpha. Nippon Sanka Fujinka Gakkai Zasshi, 34(6): 667-76.
Luzzani, F., Colombo, G. and Galliani, G. (1982): Evidence for a role of progesterone in the control of uterine ornithine decarboxylase in the pregnant hamster. Life Science, 31(15): 1553-8.
Okamura, H., Yang, S.L. and Wright, K.H. (1972): The effect of prostaglandin F2 alpha on cropus luteum of the pregnant rat and ultrastructural study. Fertility and Sterility, 23(7): 476.
Répási, A., Beckers, J.F., Sulon, J., Karen, A., Reiczigel, J. and Szenci, O. (2005): Effect of the type and number of prostaglandin treatments on corpus luteum, the largest follicle and progesterone concentration in dairy cows. Reprod Domest Anim., 40(5): 436-42.
18. Rotchild, I., Ueda K. and Ochiai K. (1985): A luteotrophic action of prolactin: suppression of intraluteal prostaglandin production or effect? Endocrinology, 116(2): 772-8.
Schlegel, W., Krüger, S., Daniels, D., Fischer, B., Schneider, H.P. and Beier, H.M. (1988): Studies on prostaglandin metabolism in corpora lutea of rabbits during pregnancy and pseudopregnancy. Journal of Reproduction and Fertility, 83(1): 365-70.
Sugimoto, S., Segi, E., Tsuboi, K., Ichikawa, H. and Narumiva, S. (1998): Female reproduction in mice lacking the prostaglandin F receptor. Roles of prostaglandin and oxytocin receptors in parturition. Advances in Experimental Medicine and Biology, 449: 317-21.
Tajima, K., Fukuda, S. and Kotsuji, F. (2006): Regulation of progesterone production in the corpus luteum. Nippon Rinsho, 64(9): 426-9.
22. Telleria, C.M., Stocco, C.O., Stati, A.O. and Deis, R.P. (1999): Progesterone receptor is not required for progesterone action in the rat corpus luteum of pregnancy. Steroids, 64(11): 760-6.
Thomas, C.M., Vandenberg, R.J., Deconing, H.J. and Leguin, R.M. (1978): Radioimmunoassays for prostaglandins. I. Technical validation of prostaglandin F2 alpha measurements in human plasma using sephadex G-25 gelfiltration. Prostaglandins, 15(5): 839-47.
Troedssson, M.H., Ababneh, M. and Ohlqren, A.F. (2003): Effect of periovulatory prostaglandin F2 alpha on pregnancy rates and luteal function in the mare. Teriogenology, 55(9): 1891-9.
Umo, I. (1975): Effect of prostaglandin f2 alpha on the ultrastructural and functional of sheep corpora lutea. Journal of Reproduction and Fertility, 43(2): 287-92.
