وانادیم شبکه‎ای‎شده با هیدروژل نانوچندسازه برپایه (CMC-PEG-PLGA) با پوشش سدیم آلژینات به عنوان سامانه انسولین رسانی حساس به pH

محورهای موضوعی : شیمی تجزیه

سید نبی الله حسینی ¹ , آسیه عباسی‎دلویی ² , سید جواد ضیائ الحق ³ , ایوب سعیدی ⁴

1 - دانشجوی دکترا گروه فیزیولوژی ورزشی واحد آیت الله آملی، دانشگاه آزاد اسلامی، آمل، ایران
2 - استادیار گروه فیزیولوژی ورزشی واحد آیت الله آملی، دانشگاه آزاد اسلامی، آمل، ایران
3 - استادیار گروه فیزیولوژی ورزشی واحد شاهرود، دانشگاه آزاد اسلامی، شاهرود،ایران
4 - استادیار گروه علوم زیستی در ورزش و سلامت، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران

تاریخ دریافت : 1399/09/27 تاریخ پذیرش : 1399/09/27 تاریخ انتشار : 1399/07/01

کلید واژه: آلژینات, هیدروژل نانوچندسازه, نانوذرات وانادیم, انسولین‌رسانی,

چکیده مقاله :

درسال‎هایاخیر،پیشرفت‎هایقابل‎توجهیدربه‎کارگیریبسپارهایزیست‎پزشکیبه عنوانحامل‎هایهدفمندبرایرهایشدارو،پروتئینوعواملرشدانجام‎گرفتهاست. در اینپژوهش، هیدروژل های نانوچندسازه به‎دلیل تشکیل نانوذرات وانادیم (V) در داخل هیدروژل های کربوکسی‎متیل سلولز (CMC) متورم تهیه شده است. تشکیل نانوذرات وانادیمدر هیدروژل ها با طیف‎سنجی فروسرخ تبدیل فوریه (FT‎IR)، پراش پرتو ایکس (XRD) و میکروسکوپ الکترونی روبشی (SEM) بررسی شد. الگوهای XRD تشکیل نانوذرات وانادیم در بستر هیدروژل را تایید کردند. همچنین،تصاویر SEM نشان دادند که اندازه نانوذرات از 22 تا 74 نانومتر در بستر هیدروژل است. رفتار تورمی هیدروژل نانوچندسازه ها در pHهای 1/2 و 4/7 بررسی شد. هیدروژل ها در pH کمتر، جذب آب بهتری از خود نشان دادند. طیف‎های نمونه های بارگیری‎شده با دارو، بیانگر آن است که بارگذاری مناسب دارو انجام‎شده است. با بررسی رهایش دارو، مشاهده شد که مقدار رهایش در هیدروژل های نانوچندسازه کمتر و با افزایش درصد نانوذرات مقدار رهایش کاهش یافته است. در آزمون سمیت سلولی پس از 24 ساعت، زنده‎ماندن سلول ها در گستره 3/74 تا 05/96 % در مقایسه با نمونه کنترل (به عنوان 100 %) بود. در نمونه هیدروژل نانوچندسازه حاوی انسولین پس از 24 ساعت، پایین ترین زنده‎ماندن سلولی مربوط به غلظت μg/ml 25/31 انسولین و بیشترین زنده‎ماندن سلولی مربوط به غلظت μg/ml 1000 انسولین با 7/25 % سمیت سلولی نسبت به گروه کنترل بود.

چکیده انگلیسی:

: In recent years, significant advances have been made in the use of biomedical polymers as targeted carriers for the release of drugs, proteins, and growth factors. Vanadium (V) nanocomposite hydrogels were prepared in this study due to the formation of vanadium nanoparticles inside the swollen CMC hydrogels. The formation of vanadium (V) nanoparticles in hydrogels has been studied using Fourier transform infrared spectroscopy (FTIR), X-ray diffraction patterns (XRD), scanning electron microscopy (SEM) experimental techniques. The XRD patterns analysis confirmed the formation of vanadium nanoparticles in a hydrogel matrix, and scanning electron microscopy micrographs also showed that the size of the nanoparticles was from 22 to 74 nm in the hydrogel matrix. The swelling behavior of nanocomposite hydrogels was studied at pH of 2.1 and 7.4. Hydrogels have shown better water absorption in less pH. Fourier transform infrared spectroscopy indicates the interaction between polysaccharides and the samples taken from the drug indicate that the drug-loaded peaks were loaded appropriately. With the release of drug from nanocomposite and pure hydrogel hydrogels, it was observed that its release rate in nanocomposite hydrogels was lower and the amount of its release decreased with increasing percentage of nanoparticles. In the cytotoxicity test after 24 h, the cell viability was in the range of 74.35% -96.05% (compared with the control sample, which was 100%). In the hydrogel nanocomposite sample containing insulin had the lowest cell viability of insulin 31.25 μg/ml after 24 h and it had the highest cell viability at 1000 (μg/ml) concentration with 25.7% cell cytotoxicity compared to the control group.

منابع و مأخذ:

[1] Jafari, B.; Rafie, F.; Davaran, S.; BioImpacts 1(2), 135-143, 2011.

[2] Capanema, N.S.V.; Mansur, A.A.P.; De Jesus, A.C.; Carvalho, S.M.; De Oliveira, L.C.; Mansur, H.S.; Int J Biol Macromol. 106, 1218-1234, 2018.

[3] Fathi, M.; Barar, J.; Aghanejad, A.; Omidi, Y.; BioImpacts 5(4), 159-164, 2015.

[4] Nokhodchi, A.; Raja, S.; Patel, P.; Asare-Addo, K.; BioImpacts 2(4), 175-187, 2012.

[5] Javanbakht, S.; Pooresmaeil, M.; Namazi, H.; Carbohyd Polym. 208, 294-301, 2019.

[6] Aloisi, GG.; Costantino, U.; Latterini, L.; Nocchetti, M.; Camino, G.; Frache, A.; J Phys Chem Solids. 67, 909-914, 2006.

[7] Zare-Akbari, Z.; Farhadnejad, H.; Furughi-Nia, B.; Abedin, S.; Yadollahi, M.; Khorsand-Ghayeni, M.; Int J Biol Macromol. 93, 1317-1327, 2016.

[8] Yadollahi, M.; Gholamali, I.; Namazi, H.; Aghazadeh, M.; Int J Biol Macromol. 73, 109-114, 2015.

[9] Gholamali, I.; Hosseini, S.N.; Alipour, E.; Yadollahi, M.; Starch/Stärke. 71, 1800118-1800120, 2019.

[10] Yadollahi, M.; Farhoudian, S.; Barkhordari, S.; Gholamali, I.; Farhadnejad, H.; Motasadizadeh, H.; Int J Biol Macromol. 82, 273-278, 2016.

[11] Namazi, H.; Hasani, M.; Yadollahi, M.; Int J Biol Macromol. 126, 578-584, 2019.

[12] Hebeish, A.; Hashem, M.; Abd El-Hady, M.M.; Sharaf, S.; Carbohyd Polym. 92, 407-413 2013.

[13] Cam, M.C.; Rodrigues, B.; McNeill, J.H.; Eur J Endocrinol. 141, 546-554, 1999.

[14] Thompson, K.H.; Orvig, C.; J Inorg Biochem. 100, 1925-1935, 2006.

[15] Yadollahi, M.; Gholamali, I.; Namazi, H.; Aghazadeh, M.; Int J Biol Macromol. 74, 136-141, 2015.

[16] Mitikka-Eklund, M.; Halttunen, M.; Melander, M.; Ruuttunen, K.; Vuorinen, T.; Int J Biol Macromol. 1, 423-439, 1999.

[17] Namazi, H.; Toomari, Y.; Abbaspour, H.; BioImpacts 4(4), 175-182, 2014.

[18] Erkan, N.; Dogruyol, H.; Gunlu, A.; Genc, I.Y.; J Food Health Sci. 1(1), 33-49, 2015.

[19] Lee, J.I.; Kim, H.S.; Yoo, H.S.; Int J Pharm. 373, 93-99, 2009.

[20] Tan, L.; Liu, Y.; Ha, W.; Ding, L.S.; Peng, S.L.; Zhang, S.; Li, B.J.; Soft Matter. 8, 5746-5749, 2012.

[21] Ebrahimnezhad, Z.; Zarghami, N.; Keyhani, M.; Amirsaadat, S.; Akbarzadeh, A.; Rahmati, M.; Mohammad Taheri, Z.; Nejati-Koshki, K.; BioImpacts 8(4), 321, 2018.

[22] Fu, B.X.; Hsiao, B.S.; Chen, G.; Zhou, J.; Koyfman, I.; Jamiolkowski, D.D.; Dormier, E.; Polym. 43(20), 5527-5534, 2002.

[23] Hurrell, S.; Cameron, R.E.; Biomaterials 23(11), 2401-2409, 2002.

[24] Florence, A.T.; Pharm Res. 14(3), 259-266, 1997.

[25] Tobio, M.; Sanchez, A.; Vila, A.; Soriano, I.; Evora, C.; Vila-Jato, J.L.; Alonso, M.J.; Colloids Surf B Biointerfaces. 18(3-4), 315-323, 2000.

[26] Soveid, M.; Dehghani, G.A.; Omrani, G.R.; Archives of Iranian Medicine 16(7), 408- 411, 2013.

[27] Bolkent, S.; Yanardag, R.; Tunali, S.; Diabetes Research and Clinical Practice 70, 103-109, 2005.

[28] Mortazavi, P.; Aghaei Meybodi, M.; Poosty, I.; Hoseiny, S.; J comp Pathobiology. 11(3), 1389-1396, 2014.

[29] Lee, K.Y.; Mooney, D.J.; Prog Polym Sci. 37(1), 106-126, 2012.

[30] Li, X.; Feng, J.; Zhang, R.; Wang, J.; Su, T.; Tian, Z.; J Biomed Nanotechnol. 12(5), 948-961, 2016.

[31] Shapiro, L.; Cohen, S.; Biomaterials 18(8), 583-590, 1997.

[32] Capannesi, C.; Palchetti, I.; Mascini, M.; Parenti, A.; Food Chem. 71(4), 553-562, 2000.

[33] Gonzalez-Pujana, A.; Orive, G.; Pedraz, J.L.; Santos-Vizcaino, E.; Hernandez, R.M.; Alginates and Their Biomedical Applications 13, 67-100, 2017.

[34] Silva, C.M.; Ribeiro, A.J.; Figueiredo, I.V.; Gonçalves, A.R.; Veiga, F.; Int J Pharmaceut. 311(1-2), 1-10, 2006.

[35] Hua, Q.; Protein Cell. 1, 537-551, 2010.

[36] Gurramkonda, C.; Polez, S.; Skoko, N.; Adnan, A.; Gäbel, T.; Chugh, D.; Swaminathan, S.; Khanna, N.; Tisminetzky, S.; Rinas, U.; Microb Cell Fact. 9, 31, 2010.

[37] Kamari, Y.; Ghiaci, P.; Ghiaci, M.; Mat Sci Eng C. 75, 822-828, 2017.

[38] Barkhordari, S.; Yadollahi, M.; Namazi, H.; J Polym Res. 21(6), 1-9, 2014.

[39] Farhoudian. S.; Yadollahi, M.; Namazi, H.; Int Biol Macromol. 82, 837-843, 2016.

[40] Yadollahi, M.; Namazi, H.; Aghazadeh, M.; Int J Biol Macromol. 79, 269-277, 2015.

[41] Zakhireh, S.; Mahkam, M.; Yadollahi, M.; Jafarirad, S.; J Polym Res. 21, 398-404, 2014.