بررسی اثر آنتی‌اکسیدانی توانایی برهم کنش به پروتئین آلبومین سرم انسانی (HSA) و اثر آنتی‌باکتریایی گیاه Cressa cretica L. در منطقه سیستان
الموضوعات :
سمیه شهرکی
1
,
طاهره شهرکی
2
1 - استادیار، گروه شیمی، دانشکده علوم، دانشگاه زابل، زابل، ایران
2 - دانشجوی دکتری، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد زاهدان، زاهدان، ایران
تاريخ الإرسال : 25 الأربعاء , جمادى الأولى, 1438
تاريخ التأكيد : 19 الأحد , رجب, 1438
تاريخ الإصدار : 07 الثلاثاء , رمضان, 1439
الکلمات المفتاحية:
سیستان,
آنتی‌اکسیدان,
آنتی باکتریال,
علف مورچه (Cressa cretica L.),
عصاره و حلال‌های مختلف,
ملخص المقالة :
گیاه علف مورچه با نام علمی Cressa cretica L. با داشتن ترکیبات مختلف، منبع بالقوه ای جهت تهیه بسیاری از داروهای گیاهی محسوب میشود. در این تحقیق اثر آنتی اکسیدانی، توانایی برهم کنش به پروتئین آلبومین سرم انسانی (HSA) و اثر آنتی باکتریایی گیاه Cressa cretica L. مورد بررسی قرار گرفته است. برگ این گیاه در مرحله رویشی در شهریور 1395 در رویشگاه طبیعی دشت سیستان جمع آوری و عصاره آن با استفاده از روش خیساندن در سه حلال آب، متانول و اتانول استخراج گردید. برای بررسی فعالیت آنتی اکسیدانی از روش DPPH استفاده گردید. برهم کنش عصاره اتانولی گیاه با HSA توسط طیف سنجی UV-Vis انجام شد. خاصیت آنتی باکتریایی عصاره اتانولی گیاه بر سویه‌های استاندارد دو گونه باکتری مهم گرم مثبت استافیلوکوکوس آرئوس و گرم منفی اشرشیاکولی با استفاده از روش مایکرودایلوشن بررسی و نتایج به صورت تعیین حداقل غلظت بازدارندگی از رشد (MIC) و حداقل غلظت کشندگی (MBC) گزارش شد. نتایج نشان داد که بیشترین بازده استخراج عصاره گیاه مربوط به اتانول و کمترین آن مربوط به آب می باشد و بیشترین درصد مهارکنندگی DPPH و آنتی‌اکسیدانی برای عصاره‌های اتانول، متانول و آب به ترتیب برابر با 56، 38 و 34 درصد است. مطالعه برهم کنش با HSA تغییرات ساختار دوم پروتئین را اثبات کرده و مقدار ثابت پیوند در آن برابر با ppm-1 102× 49/0 بدست آمد. عصاره این گیاه بر روی هر دو باکتری مورد مطالعه اثرات مهارکنندگی و کشندگی از خود نشان داد اما مقادیر MIC بیشتر از MBC بود.
المصادر:
1. Ades, T.B. 2009. Quercetin american cancer society complete guide to complementary and alternative cancer therapies (2nd ed.). American Cancer Society. ISBN-13: 978-0944235713.
2. Anu, R., Amit, K., Vivek, S., Brijesh, Y., Ruchi, T., Sandip, C. and Kuldeep, D. 2014, Oxidative stress, prooxidants and antioxidants: The interplay biomed Research International, Review Article (19 pages), Article ID 761264, 2014 (2014). DOI: 10.1155/2014/761264.
3. Block, E. 1992. The organosulfur chemistry of the genus Allium implication for the organic chemistry of sulfur. Angewandte Chemie International Edition in English. 31(9): 1135-1178.
4. Bokaeian, M., Farazmand, R., Kyghobadi, S. and Saeidi, S. 2015. Study of the antimicrobial activity of Allium Sativum extract on Staphylococcus aureus strains resistant to different antibiotics. Plant Research Journal. 28(1): 34-41.
5. Burt, S., 2004. Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods. International Journal of Food Microbiology. 94(3): 223-253.
6. Canillac, N. and Mourey, A. 2001. Antibacterial activity of the essential oil of Piceaexcelsa on Listeria, Staphylococcus aureus and coliform bacteria.Food Microbiology. 18: 261-268.
7. Cowan, M.M. 1999. Plant products as antimicrobial agents. Clinical Microbiology Reviews. 12(4): 564-582.
8. Gu, L., Chen, Z., Zhao, J., Ruan, X.J., Zhao, S.Y. and Gao, H. 2015. Antioxidant, anticancer and apoptotic effects of the Bupleurum chinense root extract in HO-8910 ovarian cancer cells. J. Buon., 20(5):1341-9.
9. Harborne, J.B., 1998. Phytochemical methods. 3th ed. New York: Chapman & Hall; P.5-7.
10. Kitic, D., Jovanovic, T., Ristic, M., Palic, R. and Stojanovic, G. 2002. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oil of Calaminth anepata (L.) Savi ssp. glandulosa (Req.) P.W. Ball from Montenegro. Journal Essential Oil Research. 14: 150-152.
11. Kumaran, A. and Karunakaran, R.J. 2006. Antioxidant and free radical scavenging activity of an aqueous extract of Coleus aromaticus. Food Chemistry. 97: 109-114.
12. Lobo, V., Patil, A., Phatak, A. and Chandra, N. 2010. Free radicals, antioxidants and functional foods: Impact on human health, Pharmacognosy Review. 4(8): 118–126.
13. Mahmoudi, R., Ehsani, A. and Zare, P. 2012. Phytochemical, antibacterial and antioxidant properties of Cuminum Cyminum L. essential oil. Journal of Research in the Food Industries, 22(3): 311-321.
14. Majnooni, M.B., Abiri, R., Afnanzade, N.S. and MalekKhatabi, P. 2012. Study of antibacterial effects of hydro- alcoholic extract of 8 medicinal herbs against vancomycin resistant staphylococcus aureus. Journal of Medicinal Plants. 1 (41): 103-110.
15. Mirzaei, A., Mohammadi, J., Mirzaei, N. and Mirzaei, M. 2011.The Antioxidant capacities and total phenolic contents of some medicinal plants in Iran. Journal of Fasa University of Medical Sciences. 1(3): 160-167.
16. Muret, K., Sevgi, K., Sengul, K., Esra, U., Cemalettin, B. and Fedra, V. 2007. Biological activities and chemical composition of three honeys of different types from Anatolia. Food Chemistry, 100: 534-526.
17. Nikavar, B. and Abolhasani, F. 2009. Screening of antioxidant properties of seven umbellifreae fruits from Iran. Pakistanian Journal Pharmacology Science. 22: 30-35.
18. Prior, R.L. and Cao, G. 2000. Antioxidant phytochemicals in fruits and vegetables.Diet and health implications Horticultural Science. 35: 588-592.
19. Sahin, F., Karaman, I., Gulluce, M., Ogutcu, H., Sengul, M. and Adiguzel, A. 2002.Evaluation of antimicrobial activities of Satureja hortensis L. Journal Ethnopharmacology. 87: 61-65.
20. Sandri, I.G., Zcaria, J., Fracaro, F., Delamare, A.L. and Echeverrigaray, S. 2007. Antimicrobial activity of the essential oils of Brazilian species of the genus Culina against foodborne pathogens and spoiling bacteria. Food chemistry, 103-823-828.
21. Savithramma, N., LingaRao, M. and Suhrulatha, D. 2011. Screening of medicinal plants for secondary metabolites. Search Results Middle-East Journal of Scientific Research. 8(3): 579-584.
22. Shahnia, M. and Khaksar, R. 2013. Antimicrobial effects and determination of minimum inhibitory concentration (MIC) methods of essential oils against pathogenic bacteria. Iranian Journal of Nutrition Sciences and Food Technology. 7(5): 949-955.
23. Shahraki, S., Shiri, F., Mansouri-Torshizi, H. and Shahraki, J. 2016.Characterization of the interaction between a platinum(II) complex and human serum albumin: spectroscopic analysis and molecular docking, Journal of the Iranian Chemical Society . 13(4):723–731.
24. Shahraki, S., Shiri, F. and Mansouri-Torshizi, H. 2016. Biophysical and molecular docking studies of human serum albumin interactions with a potential anticancer Pt (II) Complex. Biomacromolecular Journal, 2(1): 65-77.
25. Soltani, M., Ghodratnema, M., Ahari, H., Ebrahimzadeh-Mousavi, H.A., Atee, M. and Dastmalchi, F. 2009. The inhibitory effect of silver nanoparticles on the bacterial fish pathogens Streptococcusiniae, Lactococcusgarvieae, Yersinia ruckeri and Aeromonashy drophila. International Journal of Veterinary Research. 3(2): 137-142.
26. Taleei, G., Mashkohossadar, M.H. and Delfan, B. 2004. Journal of Lorestan University of Medical Sciences. 18: 19-23.
27. Trynda-Lemiesz, L. 2004. Paclitaxel-HSA interaction. binding sites on HSA molecule. Bioorganic and Medicinal Chemistry. 12(12): 3269-3275.
28. Yin, M.C., HSU, P.C. and Chang, H.H. 2003. In vitro antioxidant and antibacterial activity of shallot and Scallion. Journal of Food Science.68(1) 281-284.
_||_
