بررسی اثر ماده مخدر متامفتامین بر رشد سلولی سلول های بنیادی مشتق شده از بافت آندومتر رحم موش های صحرایی

الموضوعات : فصلنامه زیست شناسی جانوری

زهرا گودرزی ¹ , سید ابراهیم حسینی ² , داوود مهربانی ³ , سارا هاشمی ⁴

1 - گروه زیست شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
2 - گروه زیست شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
3 - مرکز تحقیقات سوختگی و ترمیم زخم، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران
4 - مرکز تحقیقات سوختگی و ترمیم زخم، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران

تاريخ الإرسال : 26 الخميس , جمادى الثانية, 1441 تاريخ التأكيد : 01 الأربعاء , ذو الحجة, 1441 تاريخ الإصدار : 27 الثلاثاء , محرم, 1442

الکلمات المفتاحية: موش صحرایی, متامفتامین, اندومتر, سلول بنیادی, رشد سلولی,

ملخص المقالة :

متامفتامین به‌عنوان یک ماده توهم‌زا است که مورد سو مصرف میلیون ها نفر در سراسر دنیا قرار می گیرد. ایجاد سمیت سلولی در برخی از رده های سلولی از اثرات گزارش‌شده، این ماده روان‌گردان می‌باشد. لذا این مطالعه با هدف بررسی اثر متامفتامین بر رشد سلول‌های بنیادی مزانشیمی بالغ استخراج شده از بافت آندومتر رحم موش های صحرایی انجام گردید. در این مطالعه تجربی سلول‌های بنیادی از بافت آندومتر رحم موش‌های صحرایی استخراج شد و پس از کشت آنها، با روش فلوسایتومتری و بواسطه مارکرهای CD34، CD90، CD105 و مزانشیمی بودن آنها مورد بررسی قرار گرفت. در پاساژ سوم کشت سلولی، اثر سمیت متامفتامین در غلظت 6/0 میلی‌مولار در طول مدت 1 الی 8 روز بر رشد سلول‌های بنیادی مزانشیمی مشتق شده از بافت آندومتر رحم توسط فرمول PDT= T× محاسبه گردید سلول‌های جدا شده از بافت آندومتر رحم، 24 ساعت بعد از انتقال به فلاسک کشت سلولی، کاملاً به کف فلاسک چسبیدند. این سلول ها از نظر بیان مارکرهای سطحی غیر هماتوپویتیک (CD90، CD105) مثبت و از نظر بیان مارکر هماتوپویتیک (CD34) منفی بود، بنابراینهویت مزانشیمی بودن این سلول ها تائید گردید. نتایج آزمون شمارش سلولی نیز حاکی از کاهش معنادار رشد سلول‌های تیمار شده با 6/0 میلی‌مولار متامفتامین در مقایسه با گروه شاهد بود. نتایج حاصل از این مطالعه نشان داد سلول‌های جدا شده از بافت آندومتر ، از نوع بنیادی مزانشیمی بوده که بر اساس نتایج حاصل از شمارش سلولی مشخص گردید که متامفتامین می‌تواند با القاء اثرات سمیت سلولی باعث مهار رشد در آنها گردد.

المصادر:

Alavi S.H., Taghavi M.M., Moallem S.A. 2008. Evaluation of effects of methamphetamine repeated dosing on proliferation and apoptosis of rat germ cells. Systems Biology in Reproductive Medicine, 54(2): 85-91.

2. Akhgari M., Mobaraki H., Etemadi-Aleagha A. 2017. Histopathological study of cardiac lesions in methamphetamine poisoning-related deaths. DARU Journal of Pharmaceutical Sciences, 25(1): 5.

3. Astarita G.B., Grimaldi N., Realini Z., Justinova L.V., Panlilio A. 2015. Methamphetamine accelerates cellular senescence through stimulation of de novo ceramide biosynthesis. PloS One, 10(2): e0116961.

4. Baptista S., Lasgi C., Benstaali C., Milhazes N., Borges F., Fontes-Ribeiro  C. 2014. Methamphetamine decreases dentate gyrus stem cell self-renewal and shifts the differentiation towards neuronal fate. Stem Cell Research, 13(2): 329-341.

5. Cadet J.L., Jayanthi M. T., McCoy B., Ladenheim F., Saint-Preux E., Lehrmann S. De. 2013. Genome-wide profiling identifies a subset of methamphetamine (METH)-induced genes associated with METH-induced increased H4K5Ac binding in the rat striatum. BMC Genomics, 14: 545.

6. Cadet J.L., Jayanthi S., Deng X. 2005. Methamphetamine-induced neuronal apoptosis involves the activation of multiple death pathways. Neurotoxicity Research, 8(3-4): 199-206.

7. Campisi J., d'Add  di Fagagna F. 2007. Cellular senescence: when bad things happen to good cells. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 8(9): 729-740.

8. Chamberlain G., Fox J., Ashton B., Middleton J. 2007. Concise review: mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing. Stem Cells, 25(11): 2739-2749

9. Castino R., Lazzeri G., Lenzi P., Bellio N., Follo C., Ferrucci M., Fornai F. 2008. Suppression of autophagy precipitates neuronal cell death following low doses of methamphetamine. Journal of Neurochemistry, 106(3): 1426-1439.

10. Conley B.J, CYoung J.,Trounson A.O.,  Mollard R.2004. Derivation, propagation and differentiation of human embryonic stem cells." The international journal of biochemistry & cell biology, 36(4): 555-567.

11.  Fleckenstein A.E., Volz T.J., Riddle E.L., Gibb J.W Hanson G.R. 2007. Mechanism of action of amphetamines. New Insights into the Annual Review of Pharmacology and Toxicology, 47: 681-698.

12. Freund A., Orjalo A.V., Desprez P.Y., Campisi J. 2010. Inflammatory networks during cellular senescence: causes and consequences. Trends Mol Med,  16(5):238-246.

13. Ghobadi F., Rahmanifar F., Mehrabani D., Tamadon, A., Dianatpour M., Zare S., Razeghian Jahromi I. 2018. Endometrial mesenchymal stem stromal cells in mature and immature sheep: An in vitro study.International Journal of Reproductive BioMedicine, 16(2): 83-92.

14. Krasnova I.N., Cadet J.L. 2009. Methamphetamine toxicity and messengers of death. Brain Research Review,  60(2): 379-407.

15.  Mandyam C.D.,  Wee  S., Elena  F., Amelia J.C., Heather N.E.,George  F.R.  2008.Varied access to intravenous methamphetamine self-administration differentially alters adult hippocampal neurogenesis." Biological Psychiatry, 64(11): 958-965.

16. Martin T.A., Jayanthi S., McCoM M.T., Brannock C., Ladenheim B., Garrett T. 2012. Methamphetamine   causes differential alterations in gene expression and patterns of histone acetylation/ hypoacetylation in the rat nucleus accumbens. PLoS One, 7(3): e34236.

17. Meamar R., Dehghani L., Karamali F.2012.Toxicity effects of methamphetamine on embryonic stem cell-derived neuron.. Journal of Research in Medical Sciences. 17(5): 470-474.

18. Mehrabani D., Hassanshahi M., Tamadon A., Zare S., Keshavarz S., Rahmanifar F.2015. Adipose tissue-derived mesenchymal stem cells repair germinal cells of seminiferous tubules of busulfan-induced azoospermic rats.Journalof Human Reproductive Sciences, 8(2): 103-110.

19. Mehrabani D., Rahmanifar F., Mellinejad M., Tamadon A., Dianatpour M., Zare S. F.2015.Isolation culture characterization and adipogenic differentiation of heifer endometrial mesenchymal stem cells. Comparative Clinical Pathology, 24:1159-1164.

20. Mirjalili T., Kalantar S.M., Shams Lahijani M., Sheikhha M.H., Talebi A. 2013. Congenital abnormality effect of methamphetamine on histological, cellular and chromosomal defects in fetal mice..  Iranian Journal of Reproductive Medicine,11(1):39-46.

21. Miyazaki I., Asanuma M., Diaz-Corrales F.J., Fukuda M., Kitaichi K., Miyoshi K. 2006. Methamphetamine-induced dopamin ergic neurotoxicity is regulated by quinone-formation-elatedmolecules. FABES Journal,  20(3): 571-573.

22. Moore T.J., Abrahamse H. 2014. Neuronal Differentiation of Adipose Derived Stem Cells: Progress So Far.International Journal of Photoenergy, 201(6): 1-8.

23. Mullen T.D., Obeid L.M. 2012. Ceramide and apoptosis: exploring the enigmatic connections between sphingolipid metabolism and programmed cell death. Anti-Cancer Agents in Medicinal Chemistry, 12(4):340-363.

24.Papageorgiou M., Raza A., Fraser S., Nurgali K., Apostolopoulos V. 2019. Methamphetamine and its immune-modulating effects. Maturitas,  121:13-21.

25. Schwarzbach V., Lenk K., Laufs U.2020. Methamphetamine‐related cardiovascular diseases. ESC Heart Failure, 7(2): 407-414.

26. Shen K., Zhang Y., Lv X., Chen X., Zhou R., Nguyen L.2016.Molecular Mechanisms Involving Sigma-1 Receptor in Cell Apoptosis of BV-2 Microglial Cells Induced by Methamphetamine. CNS Neurological Disorders Drug Targets, 15(7): 857-865.

27. Smith A. A.2006. glossary for stem-cell biology. Nature, 441(7097): 1060.

28. Tamadon A.,   Mehrabani D.,   Zarezadeh  Y.,   Rahmanifar F.,   Dianatpour M., Zare S.2017.Caprine endometrial mesenchymal stromal stem cell: multilineage potential, characterization, and growth kinetics in breeding and anestrous Stages, Veterinary and Medicine International, 2017: 5052801.

29. Thimios A.M.,  Javier C., Pierfrancesco P., Giovanna O.,  Lucia J.R. 2017. Monitoring notch signaling-associated activation of stem cell niches within injured dental pulp. Frontiers  Physiology, 8: 372.

30. Thanos P.K.,  Kim R.,  Delis F.,  Ananth M.,  Chachati G.,  Rocco, M.J. 2016. Chronic methamphetamine effects on brain structure and function in rats. PLoS One, 11(6): e0155457.

31. Yuan C.J., Quiocho J.M., Kim A., Wee S., Mandyam C.D. 2011. Extended access methamphetamine decreases immature neurons in the hippocampus which results from loss and altered development of neural progenitors without altered dynamics of the S-phase of the cell cycle. Pharmacology Biochemistry and Behavior, 100(1): 98-108.

32. Wang Q., Wei L.W., Xiao H.Q., Xue Y., Du S.H., Liu Y.G. 2017. Methamphetamine induces hepatotoxicity via inhibiting cell division, arresting cell cycle and activating apoptosis: in vivo and in vitro studies. Food and Chemical Toxicology, 105: 61-72.