پلویمتری براساس تصاویر رادیوگرافی در کبک چوکار (Alectoris Chukar)
محورهای موضوعی :
نسترن رجبی
1
,
مهدی رضائی
2
*
,
محمد رضا حسینچی
3
1 - دانش‌آموخته دکترای عمومی دامپزشكي، دانشکده دامپزشکي، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامي، ارومیه، ايران.
2 - استادیار گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکي، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامي، ارومیه، ايران.
3 - گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکي، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامي، ارومیه، ايران.
کلید واژه: رادیوآناتومی, کبک چوکار (Alectoris Chukar), لگن, مورفولوژی, مورفومتری,
چکیده مقاله :
هدف از این مطالعه بررسی آناتومی طبیعی لگن کبک چوکار (Alectoris Chukar) به روش رادیوگرافی بود. در این مطالعه توصیفی - مقطعی از لاشه 10 کبک چوکار بالغ (5 نر و 5 ماده) با میانگین سنی 5-1 سال و با متوسط وزنی560 گرم استفاده شد. برای مطالعات پرتونگاری از لاشه هر کبک چوکار رادیوگراف‌هایی با نماهای جانبی و شکمی - پشتی تهیه گردید و اندازه‌گیری‌های پلویمتریک لگن بر روی رادیوگراف‌ها انجام گرفت. متعاقب رادیوگرافی مطالعات آناتومیکی انجام یافت. براساس نتایج این مطالعه سطح داخلی خاصره با خارها و زوائد عرضی سین‌ساکروم جوش خورده بود. دهانه شکمی کانال‌های عصبی خاصره توسط ترابکول‌های استخوانی بسته شده بودند لذا در این پرنده کانال‌های عصبی خاصره‌ای وجود نداشت. مفصل استابولوم بین گردن استخوان ران و آنتی تروکانتر قرار داشت. انتهای خلفی استخوان ورکی با عانه جوش خورده بود. مقادیر پارامترهای MPW، CaPw، CaIw، RIA و MIW در کبک‌های چوکار ماده بیشتر از نرها بود و این اختلاف آماری معنی‌دار بود (05/0P≤). مقادیر پارامترهای SL، ICaW، AW، IA و LIA در کبک‌های نر بیش از ماده‌ها بود و به غیر از پارامتر SL در بقیه موارد از نظر آماری اختلاف معنی‌داری در بین آنها مشاهده نشد (05/0P≥). مطالعه همزمان بررسی‌های رادیولوژی و آناتومی از لگن کبک چوکار همبستگی بالایی از یافته‌ها را فراهم کرد. نتایج این تحقیق می‌تواند در شناسایی خصوصیات آناتومیکی و بررسی گونه‌های مختلف کبک چوکار، آموزش علوم آناتومی و تفسیر تصاویر رادیولوژی و نیز در معاینات بالينی و امور درمانی این نوع از کبک مورد استفاده قرار گیرد.
The current study aimed to investigate the normal anatomy of the pelvis of the Chukar quail (Alectoris Chukar) using radiography method. In this descriptive-cross-sectional study used carcasses of 10 adult chukar partridges (5 males and 5 females) with an average age of 1-5 years and a mean weight of 560 gr. For radiographic studies, lateral and ventro-dorsal radiographs were obtained from each chukar partridge carcass, and plyometric measurements were performed on the radiographs. Following radiography, anatomical studies were performed. According to the results of this study, the inner surface of the pelvis was fused with spines and transverse processes of the synsacrum. The ventral openings of the pelvic neural canals were closed by trabecular bone, so pelvic neural canals were absent in this bird. The acetabulum joint was located between the femoral neck and the antitrochanter. The caudal extremity of the ischium bone was fused with the pubis. The values of MPW, CaPw, CaIw, RIA, and MIW parameters were higher in female chukar quails than in males, and this difference was statistically significant (P≤0.05). The values of SL, ICaW, AW, IA, and LIA parameters were higher in male quails than in females, and apart from the SL parameter, no statistically significant differences were observed between them (P≥0.05). Simultaneous study of radiological and anatomical examinations of the pelvis of the chukar quail provided a high correlation of findings. The results of this research can be used in identifying anatomical characteristics and studying different species of chukar quail, teaching anatomy and interpreting radiological images, as well as in clinical examinations and treatment of this bird.
1- Mobini B. Microscopic study of the gall bladder of the chukar partridge (Alectoris chukar). Bulgarian Journal of Veterinary Medicine. 2012;15(2):73-8.
2- Sridevi P, Ravali K, Dharani P, Rajathi S, Kannan T. Hindlimb Skeletal Structure of the Green-winged Macaw: An Anatomical Study. Uttar Pradesh Journal of Zoology. 2024;45(10):26-33.
3- Gianechini F, Colli L, Makovicky P. Pelvic and hindlimb muscular reconstruction of the paravian theropod Buitreraptor gonzalezorum and its palaeobiological implications. Historical Biology. 2024:1-27.
4- Kilbourne BM, Andrada E, Fischer MS, Nyakatura JA. Morphology and motion: hindlimb proportions and swing phase kinematics in terrestrially locomoting charadriiform birds. J Exp Biol. 2016;219(9):1405-16.
5- Ritchison G. Skeleton and Skeletal Muscles. In a Class of Their Own: A Detailed Examination of Avian Forms and Functions: Springer; 2023. p. 155-317.
6- Galbusera F, Bassani T. The spine: a strong, stable, and flexible structure with biomimetics potential. Biomimetics. 2019;4(3):60.
7- Mayr G. Psittacopasseres: Psittaciformes (Parrots) and Passeriformes (Passerines). Paleogene Fossil Birds: Springer; 2022. p. 177-95.
8- Montgomerie R, Hemmings N, Thompson JE, Birkhead TR. The shapes of birds’ eggs: evolutionary constraints and adaptations. The American Naturalist. 2021;198(6):E215-E31.
9-
9- Zoller G, Chassang L, van Steyvoort O, Huynh M. Comparison of dorsoventral erect and ventrodorsal supine radiographic views for the evaluation of intracoelomic organs in clinically normal African grey parrots (Psittacus erithacus). Journal of avian medicine and surgery. 2019;33(3):218-28.
10- Anten‐Houston MV, Ruta M, Deeming DC. Effects of phylogeny and locomotor style on the allometry of body mass and pelvic dimensions in birds. Journal of Anatomy. 2017;231(3):342-58.
11- De Vries MC, van der Graaf R. The ethics of ethics conferences: Enhancing further transparency. The American Journal of Bioethics. 2024;24(4):41-4.
12- Webb TJ, Gaston KJ. Geographic range size and evolutionary age in birds. Proc R SocLond B Biol Sci. 2000; 267(1455):1843-50.
13- Griffiths R, editor Sex identification in birds. Seminars in avian and exotic pet medicine; 2000: Elsevier.
14- Ojaghloo MR, Rezaei M, Alizadeh S. Radiological and histological assessment of the ossification centers of hind limb after hatching in pigeon. Iranian Journal of Veterinary Surgery. 2018;13(1):54-66.
15- Ritchison G. Nervous System. In a Class of Their Own: A Detailed Examination of Avian Forms and Functions: Springer; 2023. p. 479-686.
16- Frank TM, Dodson P, Hedrick BP. Form and function in the avian pelvis. Journal of Morphology. 2022;283(6):875-93.
17- Vistro WA, Kalhoro IB, uddin Shah MG, Rajput N, Khan SA, Memon KH, Fareed SK. Comparative anatomical studies on humerus of commercial broiler and desi chicken. Academic Research International. 2015;6(6):153-8.
18- Elzanowski A, Louchart A. Metric variation in the postcranial skeleton of ostriches, Struthio (Aves: Palaeognathae), with new data on extinct subspecies. Zoological Journal of the Linnean Society. 2022;195(1):88-105.
19- Silva IA, Vieira LC, Mancini VRM, Faillace ACL, Santana MIS. Radiographic anatomy of the cockatiel (Nymphicus hollandicus) axial and appendicular skeleton. Anatomia, histologia, embryologia. 2020;49(2):184-95.
20- Robison CI, Rice M, Makagon MM, Karcher DM. Duck gait: relationship to hip angle, bone ash, bone density, and morphology. Poultry Science. 2015;94(5):1060-7.
21- Riber AB, Casey-Trott TM, Herskin MS. The influence of keel bone damage on welfare of laying hens. Frontiers in veterinary science. 2018;5:6.
22- Ozawa S, Mans C. Stifle disarticulation as a pelvic Limb amputation technique in a Cockatiel (Nymphicus hollandicus) and a Northern Cardinal (Cardinalis cardinalis). Journal of Avian Medicine and Surgery. 2017:33-8.
23- Hutchinson JR, Rankin JW, Rubenson J, Rosenbluth KH, Siston RA, Delp SL. Musculoskeletal modelling of an ostrich (Struthio camelus) pelvic limb: influence of limb orientation on muscular capacity during locomotion. PeerJ. 2015;3:e1001.
24- Doube M, Yen SC, Kłosowski MM, Farke AA, Hutchinson JR, Shefelbine SJ. Whole‐bone scaling of the avian pelvic limb. Journal of Anatomy. 2012;221(1):21-9.
25- Sathyamoorthy O, Chruchil RR, Dhamotharan S. Morphological and morphometric studies on the pelvic girdle of Chinese Goose (Anser cygnoides). Indian Journal of Veterinary and Animal Sciences Research. 2020;49(4):1-9.
26- Lavanya C, Jayachitra S, Iniya K, Balasundaram K. Comparative anatomy of os coxae in guinea fowl and Pigeon. 2017.
27- Alam J, Hasan M. Neuroanatomy of lumbosacral and pudendal plexus in pigeon of Bangladesh. Bangladesh Journal of Animal Science. 2023;52(4):98-104.
28- Altshuler DL, Bahlman JW, Dakin R, Gaede AH, Goller B, Lentink D, et al. The biophysics of bird flight: functional relationships integrate aerodynamics, morphology, kinematics, muscles, and sensors. Canadian Journal of Zoology. 2015;93(12):961-75.
29- Barvalia I, Panchal K. Gross and biometric studies on pelvic bone of the emu (Dromaius novaehollandiae. Indian journal of veterinary sciences and biotechnology. 2019;14(4):21-4.
30- Machado JP, Johnson WE, Gilbert MTP, Zhang G, Jarvis ED, O’Brien SJ, et al. Bone-associated gene evolution and the origin of flight in birds. BMC genomics. 2016;17(1):1-15.
31- Dumont ER. Bone density and the lightweight skeletons of birds. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 2010;277(1691):2193-8.
32- Koca D, Yilmaz O, Şahin ME, Avcilar T. Radiographic Pelvimetry in Budgerigars with and without Egg Retention. Kafkas Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi. 2023;29(5):497-504.