بررسی آلودگی و آنالیز فیلوژنی سویه حلزون‌های آب شیرین ایرانی رادیسین در خاورمیانه و آسیای مرکزی
محورهای موضوعی :رامتین میرفندرسکی 1 , بهار شمشادی 2 * , سعید هاشمی 3 , سالومه شیرعلی 4
1 - گروه پاتوبیولوژی دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
2 - هیات علمی تمام وقت
3 - دپارتمان انگل شناسی، Bo.C دانشگاه آزاد اسلامی، بروجرد، ایران
4 - گروه بیوتکنولوژی، واحد اهواز و علوم تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، ایران
کلید واژه: حلزون آب شیرین, فیلوژنی, بارکدینگ, آلودگی,
چکیده مقاله :
خانواده حلزون‌های Lymnaeidae که در زیرراسته‌های Basommatophora و Pulmonata طبقه‌بندی میشوند، شامل برخی از مهم‌ترین گونه‌های حلزون‌های آب شیرین در جهان هستند. حلزون‌های Radicine به عنوان ناقل ترماتودها از اهمیت پزشکی و دامپزشکی قابل توجهی برخوردارند. این حلزون ها در دسته نرم‌تنان (Mollusca) و رده شکم‌پایان (Gastropoda) طبقه‌بندی و می‌توانند چندین ساعت در آب‌های کم‌عمق زندگی کنند. حلزون های رادیسین از اهمیت پزشکی و دامپزشکی قابل توجهی برخوردار هستند، زیرا ناقل ترماتودها، این گونه حلزون ها مسئول انتقال ترماتودهای مشترک بین انسان و دام از جمله Schistosoma turkestanicum و Fasciola gigantica در ایران هستند و به عنوان یک میزبان میانی ، در نظر گرفته میشوند. با این حال، بحث بر سر وضعیت طبقه بندی واقعی حلزون باقی مانده است. خصوصیات مورفولوژیکی در تعیین این گروه، نقش زیادی داشته است، اما همچنان این روش منجر به شناسایی نادرست گونه ها، و تأثیر بر درک زیست‌شناسی جمعیت و در نهایت تأثیرگذاری بر شناسایی ناقلان شده است. بنابراین در این پژوهش سعی بر آن شده است که علاوه بربررسی آلودگی سویه ها، با در نظر گرفتن گونه‌ها و محل نمونه‌برداری، به بارکد گذاری DNA با استفاده از آنالیز cox1 و فیلوژنتیک، به عنوان یک روش شناسایی، پرداخته شود.
The Lymnaedeae snail family, which is classified into the Basomatophora and the Pulmonata suborder, respectively, and is considered one of the most important species. Radicine snails are of considerable medical and veterinary importance as vectors of trematodes. These snails are classified as amphibians and can live in shallow water for several hours. These snails are responsible for the transmission of common trematodes between humans and livestock, including Schistosoma turkestanicum and Fasciola gigantica in Iran, and are considered an important intermediate host. However, the actual taxonomic status of the snail remains controversial. Morphological characteristics have played a major role in determining this group, but this method has still led to the misidentification of species, affecting the understanding of population biology and ultimately affecting the identification of vectors. Therefore, in this study, in addition to investigating the contamination of strains, considering species and sampling location, DNA barcoding using cox1 and phylogenetic analysis has been investigated as an identification method.
1. Mas-Coma S, Funatsu I, Bargues M. Fasciola hepatica and lymnaeid snails occurring at very high altitude in South America. Parasitology. 2001;123(7):115-27.
2. Imani-Baran A, Yakhchali M, Malekzadeh-Viayeh R, Farahnak A. Seasonal and geographic distribution of cercarial infection in Lymnaea gedrosiana (Pulmunata: Lymnaeidae) in north west Iran. Iranian Journal of Parasitology. 2013;8(3):423.
3. Malekzadeh-Viayeh R, Imani Baran A, Yakhchali M. Molecular detection of the infection with Fasciola hepatica in field-collected snails of Galba truncatula and Lymnaea stagnalis from West Azarbaijan, Iran. Archives of Razi Institute. 2015;70(3):195-202.
4. Kemenes G, Benjamin PR. Lymnaea. Current Biology. 2009;19(1):R9-R11.
5. Tabaripour R, Youssefi MR, Tabaripour R. Genetic identification of Orientobilharzia turkestanicum from sheep isolates in Iran. Iranian Journal of Parasitology. 2015;10(1):62.
6. Wang C, Chen J, Zhao J, Chen A, Zhai Y, Li L, et al. Orientobilharzia species: neglected parasitic zoonotic agents. Acta tropica. 2009;109(3):171-5.
7. Dodangeh S, Daryani A, Sharif M, Gholami S, Kialashaki E, Moosazadeh M, et al. Freshwater snails as the intermediate host of trematodes in Iran: a systematic review. Epidemiology and Health. 2019;41:e2019001.
8. Akhlaghi E, Mohammadi MA, Ziaali N, Baneshi MR, Nasibi S, Kamyabi H, et al. Morphometric and molecular study of Fasciola isolates from ruminants in Iran. Türkiye Parazitolojii Dergisi. 2017;41(4):192.
9. Ashrafi K, Mas-Coma S. Fasciola gigantica transmission in the zoonotic fascioliasis endemic lowlands of Guilan, Iran: experimental assessment. Veterinary parasitology. 2014;205(1-2):96-106.
10. Dodangeh S, Daryani A, Sharif M, Gholami S, Kialashaki E, Moosazadeh M, et al. Freshwater snails as the intermediate host of trematodes in Iran: a systematic review. Epidemiology and Health. 2019;41.
11. Aksenova OV, Bolotov IN, Gofarov MY, Kondakov AV, Vinarski MV, Bespalaya YV, et al. Species richness, molecular taxonomy and biogeography of the radicine pond snails (Gastropoda: Lymnaeidae) in the Old World. Scientific reports. 2018;8(1):11199.
12. Lawton SP, Lim RM, Dukes JP, Kett SM, Cook RT, Walker AJ, et al. Unravelling the riddle of Radix: DNA barcoding for species identification of freshwater snail intermediate hosts of zoonotic digeneans and estimating their inter-population evolutionary relationships. Infection, genetics and evolution. 2015;35:63-74.
13. Kumar S, Stecher G, Li M, Knyaz C, Tamura K. MEGA X: molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Molecular biology and evolution. 2018;35(6):1547-9.
14. Kalyaanamoorthy S, Minh BQ, Wong TK, Von Haeseler A, Jermiin LS. ModelFinder: fast model selection for accurate phylogenetic estimates. Nature methods. 2017;14(6):587-9.
15. Zhang D, Gao F, Jakovlić I, Zou H, Zhang J, Li WX, et al. PhyloSuite: An integrated and scalable desktop platform for streamlined molecular sequence data management and evolutionary phylogenetics studies. Molecular ecology resources. 2020;20(1):348-55.
16. Ronquist F, Teslenko M, Van Der Mark P, Ayres DL, Darling A, Höhna S, et al. MrBayes 3.2: efficient Bayesian phylogenetic inference and model choice across a large model space. Systematic biology. 2012;61(3):539-42.
17. Jackiewicz M. European species of the family Lymnaeidae (Gastropoda: Pulmonata: Basommatophora). Genus. 1998;9(1):1-93.
18. Karimi GR, Derakhshanfar M, Peykari H. Population density, trematodal infection and ecology of Lymnaea snails in Shadegan, Iran. 2004.
19. Karimi G, Abdigoudarzi M, Parvaneh J, Rivaz S. Population density of Lymnaeidae snails in Lorestan province (Iran). Veterinary Research & Biological Products. 2016;29(1):60-5.
20. Glöer P, Pešić V. The freshwater snails (Gastropoda) of Iran, with descriptions of two new genera and eight new species. ZooKeys. 2012(219):11.
21. Mirfendereski R, Hashemi S, Shirali S, Shemshadi B, Lawton SP. DNA barcoding of Iranian radicine freshwater snails begins to untangle the taxonomy and phylogeography of intermediate hosts of schistosomiasis and fasciolosis from the Middle East and across Central Asia. Infection, Genetics and Evolution. 2021;89:104728.
22. Coutellec M-A, Besnard A-L, Caquet T. Population genetics of Lymnaea stagnalis experimentally exposed to cocktails of pesticides. Ecotoxicology. 2013;22(5):879-88.
23. Green AJ, Figuerola J. Recent advances in the study of long‐distance dispersal of aquatic invertebrates via birds. Diversity and Distributions. 2005;11(2):149-56.
24. Wethington AR, Jackson CR, Albritton C. Assessing predator risk: how leeches affect life history and behaviour of the freshwater snail Physa acuta. Journal of Molluscan Studies. 2018;84(4):379-85.