بررسی میکوفلور بذر کلزا در استان فارس

محورهای موضوعی : دو فصلنامه تحقیقات بیماریهای گیاهی

طاهره بصیرنیا ¹

1 - دانشگاه آزاد اسلامی واحد مرودشت، گروه بیماری شناسی گیاهی، مرودشت، ایران.

تاریخ دریافت : 1392/08/13 تاریخ پذیرش : 1392/08/13 تاریخ انتشار : 1392/07/01

کلید واژه: فارس, کلزا, بذر, قارچ, قوه نامیه,

چکیده مقاله :

به منظور بررسی وضعیت آلودگی محموله های بذری کلزای برداشتی نسبت به قارچ های همراه با بذر ، از بذ رهای کلزا مناطق مختلف استان فارس شامل سعادت شهر، زرقان، ارسنجان، قیروکارزین، بیضا و ظفرآباد نمونه برداری انجام گرفت و به آزمایشگاه منتقل شد. به منظور تعیین قوه نامیه بذرهای مورد آزمایش، بر اساس روشهای موسسه بین المللی مطالعات بذ ر        (I.S.T.A.) عمل شد.  برای جداسازی قارچ های همراه بذر از محیط های کشت WA و PDA استفاده شد . بذرها پس از ضدعفونی سطحی با هیپوکلریت سدیم 1% به مدت5/2 و 5 دقیقه در محیط های کشت قرارد اده شده و در دمای2 ±25 درجه سانتی گراد نگهداری شدند. شمارش و جداسازی قارچ ها پس از 4 روز شروع و تا 15 روز ادامه داشت. قارچ های جداشده با توجه به مشخصات مورفولوژیکی و کلیدهای شناسایی، تشخیص داده شدند. این قارچ ها متعلق به جنس هایAspergillus sp., Penicillium sp., Cladosporium sp. Phoma sp. ،Rhizoctonia sp. ،،Fusarium sp. ،Alternaria sp. ،Botrytis sp. ، وRhizopus sp. بودند.گونه های قارچAspergillus sp. نسبت به سایر قارچ ها از فراوانی بیشتری (40-20 درصد) برخوردار  بودند. آگاهی از آلودگی بذرها و شدت این آلودگی در مناطق مختلف می تواند جهت تولید بذرهای سالم و عاری از آلودگی مفید باشد.

چکیده انگلیسی:

To determine fungal contamination of rape seeds, samples were taken of harvested seed consignments from different regions viz, Saadatshahr, Zarghan, Arsanjan. Ghir-Karzin, Biza and Zafar abad of Fars province during 2008. Seeds were surface sterilized for 2.5 and 5 min. in 1% sodium hypochlorite, and plated on PDA or WA supplemented with 50% Lactic acid, incubated at 25±2 ºC. Growing colonies that developed during 4 to 15 days of incubation were isolated, purified and indentified morphologically using available keys. Aspergillus species were the dominant mycoflora recovered ranging from 20 to 40% in different seed samples. In addition to Aspergillus species, other fungi were also isolated and identified as follows: Penicillium sp., Alternaria sp., Fusarium sp., Cladosporium sp., Rhizoctonia sp., Phoma sp., Botrytis sp., and Rhizopus sp. Knowledge of seed contamination and its severity in different areas will help in decision making on planning for healthy seed production.

منابع و مأخذ:

1. Ashraf S S and Basu KC. 1986. Effect of seed-Borne Fusarium species on the physicochemical properties of rapeseed oil. Journal of Phytopathology 117: 107-112.


2. Bansal V K, Seguin S G, Rakow G F W and Petric G A. 1990. Reaction of Brassica species to infection by Alternaria brassicae. Canadian Journal of Plant Science 70: 1159-1162.


3. Brazauskiene I, Petraitiene E and Mankeviciene A. 2006. Effect of genotype and environmental factors on rape seed contamination with mycotoxins and mycotoxin producing fungi. Ekologija 3: 14-20.


4. Basirnia T and Banihashemi Z. 2004. Study of sesame seed mycoflora with particular emphasis on Aspergillus species in Fars province. Paper presented at: 16th Iranian Plant Protection Congress; August 28- September 1; Tabriz University, Iran.


5. Fasihiani A and Shirvani A. 2000. Seedborne fungi of sesame in Fars provience. Paper presented at: 14th Iranian Plant Protection Congress; 5-8 September; Isfahan, Iran.


6. Frencel IM, Lewartowska E and Jedryczka M. 1991. The spectrum of severity of fungal diseases in field infection of winter oilseed rape in Poland. Bulletin OILB-SROP 14: 137-140


7. Hampton R, waterworth H, Goodman R M and Lee R. 1982. Importance of seedborne viruses in crop germplasm. Plant Disease 66: 977-978.


8. Kacergius A, Lugauskas A, Varnaite R, Baliukoniene V and Brukstiene D. 2005. Screening of micromycetes producing toxic substances under various conditions. Botanica Lithuanica Supplement 7: 65-75.


9. Maude R B. 1996. Seedborne Diseases and Their Control: Principles and Practice. Wallingford: CAB international. 280 p.


10. Mc Cartney H A, Doughthy K J, Booth E J and Thomas J E. 1999. A study of the effect of disease on seed quality parameters of oilseed Rap. Paper presented at: 10th International Rapeseed Congress; 27-30 September; Canberra, Australia.


11. Mills J T and Abramson D. 1982. Ochratoxigenic potential of Penicillium spp isolated from stored rape seed and cereals in Western Canada. Canadian Journal Plant Pathology 4: 37-41.


12. Montemuro N and Visconti A. 1992. Alternaria Metabolites Chemical and Biological Data. PP. 449-557, In Y Chelkowski and A Visconti (eds). Alternaria: Biology, Plant Disease and Metabolites. Amsterdam: Elsevier.


13. Neergaard P. 1981. Risks for EPPO region from seed-borne pathogens. EPPO Bulletin 11: 207-212.


14. Neergaard P. 1977. Seed-borne diseases. Annals of Applied Biology 33: 228-231.


15. Noble M. 1971. Seed Pathology. pp. 21-36. In JH Western (ed). Diseases of Crop Plants. London, UK: Macmillan.


16. Silvana D M and Skares L M V. 2000. A method for the determination of two Alternaria toxin, Alternariol and Alternariol monomethyl ether, in tomato products. Brazilian Journal of Microbiology 31: 315-320.


17. Sivappalan A and Brawning J W. 1992. Incidence of Alternaria brassicola (Schw.) Wilsh. on Brassica oleracea seeds. Animal Production Science 32: 535-537.


18. Shirani Raad A H and Dehshiri A. 2002. Rapeseed from sowing to Harvesting. Agricultural Training Publishing. 116 pp.


19. Szopinska D, Tylkowska K and Stach A. 2007. Relationship between Seed Development Stage, germination, occurrence and location of fungi Oilseed Rap (Brassica napus spp. Oleiferal.) seeds and the presence of Alternaria and Cladosporium spp. Spores in the air. Elecectronic Journal of Polish Agriculture University 10: 4-19.


20. Vinas I, Palma J, Garza S and Visconti A. 1994. Natural occurrence of aflatoxin and Alternaria mycotoxin in oilseed rape from Catalonia (Spain)- incidence of toxigenic strain. Mycopathologia 128: 175-179.