کاربرد توام پروتئازگیاهی بروملین و میدان الکترومغناطیس با فرکانس پایین((50 HZ بر آنژیوژنز در مدل حلقه آئورت موش صحرایی

محورهای موضوعی : مجله پلاسما و نشانگرهای زیستی

صفا مشتاق ¹ (گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه علوم و تحقیقات تهران، ایران.)
کاظم پریور ² (گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه علوم و تحقیقات تهران، ایران.)
جواد بهار ارا ³ (گروه زیست شناسی. مرکز بیولوژی کاربردی تکوین جانوری، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد مشهد، مشهد، ایران.)
نسیم حیاتی ⁴ (گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه علوم و تحقیقات تهران، ایران.)
محمد امین کراچیان ⁵ (گروه ژنتیک پزشکی، دانشکده علوم پزشکی، مشهد، ایران.)

تاریخ دریافت : 1397/05/23 تاریخ پذیرش : 1397/08/20 تاریخ انتشار : 1397/10/01

کلید واژه: میدان الکترومغناطیس, بروملین, رگزایی, حلقه آئورت,

چکیده مقاله :

زمینه و هدف: رگزایی در بسیاری از فرآیندهای حیاتی نقش دارد و بسیاری از فرآیندهای رشد و نمو تحت تاثیر میدان الکترومغناطیس قرار می گیرند. پروتئاز گیاهی بروملین قادر به مهار تکثیر سلولی می باشد، در این پژوهش تجربی کاربرد توام بروملین و میدان الکترومغناطیس با فرکانس پایین بر آنژیوژنز حلقه آئورت موش صحرایی نژاد ویستار بررسی گردید. روش کار: ابتدا آئورت موش صحرایی به قطعات یک میلی لیتری برش و در ماتریکس کلاژن کشت داده شد. پس از ظاهر شدن نخستین جوانه های رگی نمونه ها به 8 گروه طبقه بندی گردیدند. گروه شاهد، شاهد آزمایشگاهی ا(تیمار با PBS)، شاهد آزمایشگاهی2 (تیمار با سیستم مولد میدان به حالت خاموش)، شاهد آزمایشگاهی 3 (تیمار باPBSو میدان الکترومغناطیس در شرایط سیستم خاموش)، گروه های تجربی 1 و 2 (تیمار با غلظت های 100 و 200 میکروگرم بر میلی لیتر بروملین)، گروه تجربی 3 (تیماربا میدان الکترومغناطیس به تنهایی با شدت 100 گؤس به مدت 2 ساعت)، گروه تجربی4 (تیمار تؤام با میدان الکترومغناطیس با شدت 100 گؤس و بروملین با غلظت 100 میکروگرم بر میلی لیتر) تقسیم بندی شدند. تعداد و طول انشعابات عروقی 24 ساعت بعداز تیمار توسط نرم افزار Image J تعیین و داده های کمی توسط نرم افزار آماری SPSS و آزمون های آماری ANOVA و TUKEY در سطح P<0.05تحلیل گردید. یافته ها: میانگین تعداد و طول انشعابات عروقی در نمونه های تیمار شده با بروملین و میدان الکترومغناطیس کاهش یافت.کاربرد توام از میدان الکترومغناطیس و بروملین باعث کاهش معنی دار میانگین تعداد و طول عروق نسبت به کاربرد هریک به تنهایی گردید. نتیجه گیری: نتایج نشان داد که بروملین دارای اثر مهاری وابسته به دوز بر رگزایی است و این تاثیر توسط هم افزایی با میدان الکترومغناطیس به طور معنی داری افزایش می یابد.

منابع و مأخذ:

1.Baharara, J., Zahedifar, Z. (2012). The effect of low frequency electromagnetic fields on some biological activities of animals. Arak Medical University Journal (AMUJ), 15(66); 80 - 93.

2.Baharara, J., Ramezani, T. (2014). A review on angiogenesis in tumor. Journal of Cell & Tissue (JCT), 5 (1); 89-100.

3.Baharara, J., Ashraf, A., Balanejad, S., SamarehMosavi, S. (2010). The inhibitory effect of low frequency field(50HZ) on angiogenesis inchorioallantoic memberane of chick. J ZahedanUniv Med Sci, 12(2); 8-11. [Persian].

4.Balanejad, S., Parivar, K., Baharara, J., MohseniKochesfahani, H. (2010). Effect of combinned rapamycine and of low frequency electromagnetic field on angiogenesis. J. Shahrekord Univ. Med. Sci, 11(3); 70 - 6.

5.Baharara, J., Ashraf, A., Balanejad, S., Mosavi, S. (2010). The inhibitory effect of low frequency electromagnetic field (50Hz) on angiogenesis in chorioalantoic membrane of chick. Zahedan Journal Research in Medical Science, 12(2); 8-12.

6.Bin, Sh., Li-Fang, W., Wen, Sh., Liang, C. (2017). Carnosic acid and fisetin combination therapy enhances inhibition of lung cancer through apoptosis induction. International Journal Oncology. Pages; 2123-2135. https://doi.org/10.3892/ijo.2017.3970.

7.Calvente, I., Fernandez, M., Villalba, J., Olea, N., Nuñez, M. (2010). Exposure to electromagnetic fields (nonionizing radiation) and its relationship with childhood leukemia: a systematic review. Science of the Total Environment, 408(38); 3062 - 9.

8.Chobotova, K., Vernallis, A.B., Majid, F.A. (2010). Bromelain's activity and potential as an anti-cancer agent: current evidence and perspectives.Cancer Letters, 290(2); 148–156.

9.Dharma, P.T.R., Malueghaa, M., Widodob, A., Pardjianto, B. (2015). The effects of bromelain on angiogenesis, nitricoxide, andmatrix metalloproteinase-3and-9 in rats exposed to electrical burninjury. Wound Medici, 9; 5-9.

10.Ernesta, F., Ruben, B., Laura, P., Ivanek, R., Curzio, R., Gerhard, C. (2013). An immature B cell population from peripheral blood serves as surrogate marker for monitoring tumor angiogenesis and anti-angiogenic therapy in mouse models., Medici, 18(3); 327-345.

11.Kouhestanian, K., Baharara, J., Ramezani, T., Mousavi, M. (2015). Antiangiogenic effects of eugenol in chorioallantoic membrane of chick embryo. Shahid Sadoughi University of Medical Sciences, 23(4); 2109-2117.

12.Kouhestanian, K1., Baharara, J., Zafarbalanezhad, S. (2015). Feyz. Journal of Kashan University of Medical Sciences, 19(3); 197-203.

13.Mansouri, K., Mostafaie, A., MohammadiMotlagh, H. (2010). Angiogenesis and tumor biology. J Improve, KermanshahUniv Med Sci, 14(4); 315-05.

14.Motie, M., Baharara, J., Iranbakhsh, A., Ramezani, T. (2016). Synergic application effects of silver nanoparticles and low-frequency electromagnetic field on the chick embryo chorioallantoic membrane on angiogenesis. Journal of Shahid Sadoughi University of Medical Sciences, 24(4); 317-328

15.Mohammadi Motlagh, HR., Mansouri, K., Shakiba, Y., Keshevarz, M., Khodarahmi, R., Siami, A., Mostafaie, A. (2009).The effects of aqueous extract on Antiangiogenic. J Bio electromagnetics, 35(5); 390-9.

16.Mansouri, K., Mostafaie, A., MohammadiMotlagh, H. (2010). Angiogenesis and Tumor Biology. J Improve Kermanshah Univ Med, 14(4); 315-05.[in Persian]

17.Mortazaei, S., Rafieian, M., AnsarySamani, R., Shahinfard, N. (2013). Comparison of phenolic compounds concentrations and antioxidant activity of eight medicinal plants. J Rafsanjan Univ Med Sci, 12(7); 519-30 [Persian].

18.Mohr, T., Desser, L.(2011). Plant proteolytic enzyme papain abrogates angiogenic activation of human umbilical vein endothelialcells (HUVEC) in vitro. Journal of Cell & Tissue (JCT), 18(5);396-400.

19.Moshtagh, S., Baharara, J., Zafar-Balanejad, S., Ramezani, T. (2014). .Effects of saffron aqueous extract and low frequency electromagnetic field on angiogenesis on in a Wistar rat aortic ring model. Koomesh Journal, 15(4); 522–529.

20.Nicosia, R. (2009). The aortic ring model of angiogenesis: a quarter century of search and discovery. Angiogenesis Review Series. Cell Mol Med, 13(10); 4113-36.

21.Paulo, M., Karime, K. (2012). Role of angiogenesis in the pathogenesis of cancer. Cancer Treatment, 8(7); 825 - 33.

22.Ruggiero, M., Bottaro, Dp., Liguri, G., Gulisano, M., Peruzzi, B., Pacini, S. (2004). Magnetic field inhibits angiogenesis in chick embryo chorioallanto icmembrane. J Bio electromagnetics, 25(5); 390-9

23.Ramezani, R., Baharara, J. (2014). A review on angiogenesis in tumor. Journal of Cell & Tissue (JCT), 5 (1);89-100.

24.ShahrokhAbady, Kh. (2003). Evalution of cytotoxicity effect oftotal Saffrons extract on HepG2 cell line.Genet 3rd millennium, Kermanshah Univ Med, 14(1); 65-33. (Persian).

25.Xinsheng, Xu., Huixia, Lu., Huili, Lin., Xiaolu, Li., Meh, utNi., Chingjiang, Li. (2009). Aortic adventitial angiogenesisand lymphogiogenesis promote intimalinflammation and hyperplasia. Cardio vascular Patholyrgf, 18(5); 267-78.

26.Zafar Balanejad, S., Pariva, K., Baharara, J., Koochesfahani, H. (2009). The effect of kljmk; rapamycinon angiogenesis in chick chorioalantoic membrane. J Arak Univ Med Sci, 12(1); 73-80. [Persian].