تغییرات شمارش گلبول‌های قرمز خرگوش در آمبولی ریوی تجربی تایید شده توسط سینتی‌گرافی

محورهای موضوعی : آسیب شناسی درمانگاهی دامپزشکی

غلامرضا اسدنسب ¹

1 - استادیار گروه علوم درمانگاهی، واحدتبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران.

تاریخ دریافت : 1394/05/10 تاریخ پذیرش : 1394/09/30 تاریخ انتشار : 1394/09/01

کلید واژه: خرگوش, آمبولی ریه, سینتی‌گرافی, شمارش گلبول قرمز,

چکیده مقاله :

آمبولی ریه از بیماری‌های مهم دستگاه تنفسی می‌باشد. هدف از این مطالعه بررسی تغییرات شمارش گلبول‌های قرمز خرگوش در آمبولی ریوی تجربی تأیید شده با سینتی‌گرافی می‌باشد‌. شمارش گلبول‌های قرمز در بیماری‌ها، به خصوص آمبولی ریه به دلیل نقش حیاتی این سلول‌ها مهم است. یکی از روش‌های کاربردی برای تشخیص آمبولی ریه استفاده از تکنیک‌های طب هسته‌‌ای تحت عنوان سینتی‌گرافی ریه است. در این مطالعه 12 سر خرگوش نر نژاد مخلوط بومی انتخاب شد. یک گروه 6 تایی از خرگوش‌ها به عنوان شاهد در نظر گرفته شد. در گروه شش تایی دیگر آمبولی ریه به طور تجربی ایجاد شد. برای ایجاد آمبولی لخته‌های خونی همان حیوان بعد آماده سازی در ورید وداج سمت راست گردن تزریق شد. همچنین در گروه شاهد یک میلی لیتر سرم سالین نرمال از ورید وداج سمت راست گردن تزریق شد. تایید آمبولی توسط روش‌ تصویربرداری تشخیصی سینتی‌گرافی صورت گرفت. در زمان‌های صفر، 30، 60 دقیقه، 24، 48 و 72 ساعت بعد از تزریق، نمونه خونی از هر دو گروه شاهد و بیمار تهیه و به روش استاندارد، شمارش گلبول‌های قرمز انجام شد. بعد از استحصال تکنیسیوم-m99 از ژنراتور مولیبدن به تکنیسیوم، این ماده تحت شرایط خاص به کیت دارویی MAA اضافه شد. بعد از آماده‌سازی، رادیوداروی 99mTc-MAA با دوز 5/1 میلی کوری از راه ورید حاشیه‌ای گوش به تمامی خرگوش‌ها تزریق شد. در این مطالعه افزایشی معنی دار در شمارش گلبول‌های قرمز گروه بیمار در روز اول و دوم بیماری مشاهده شد. در روز سوم این شمارش به مقدار طبیعی بازگشت. به نظر می‌آید این تغییرات بیانگر عملکرد سیستم دفاعی بدن و پاسخی در جهت کاستن عوارض ناشی از آمبولی ریه باشد. بنابراین توصیه می‌گردد در بیماری آمبولی ریه در کنار مراقبت های دیگر، به شمارش گلبول‌های قرمز نیز به دلیل عملکرد ویژه آنها توجه بیشتری مبذول گردد.

چکیده انگلیسی:

   The purpose of this study was to determine the changes in red blood cell counts after experimentally induced pulmonary embolism in rabbits which was confirmed by scintigraphy. Red blood cell count is important in health and diseases because these cells transfer oxygen from lung to tissues. One of the practical methods for diagnosis of pulmonary embolism is scintigraphy. Twelve adult male rabbits were selected. A group of six rabbits was used as control. In another group of six rabbits pulmonary embolism was experimentally induced by injection of autologous blood clots through right jugular vein. Pulmonary embolisms were confirmed by scintigraphy operations. At 0, 30, 60 min, 24, 48 and 72 hours after induced pulmonary embolism, blood samples were collected from rabbits of both groups and the red blood cell counts were determined. The technetium was milked from molybdenum- technetium generator and then added to macroaggregated albumin (MAA) kit.  In all rabbits, 1.5 mCi of prepared 99mTC–MAA was injected into the marginal ear vein. In control group, 1ml of normal saline was injected via the margin ear vein. In this study, increases in red blood cell counts of the diseased rabbits were observed in the first and second days. These counts returned to normal status in the third day. These changes may reflect the performance of the body's immune system and response of physical reflexes to reduce the complications of pulmonary embolism. Therefore it is recommended that in patients with pulmonary embolism, more attention to red blood cell counts is required due to their specific performance along with other measurements.  

منابع و مأخذ:

• Acton, Q.A. (2013). Pulmonary Embolism: New Insights for the Healthcare Professional. USA: Georgia, Scholarly Editions, pp: 11-89, 118-122.


• Assadnassab, G. (2015). Effect of Garlic on Perfusion Scintigraphy of Rabbit’s Lungs Following Experimentally-Induced Pulmonary Embolism. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 14(5): 783-787.


• Balta, S., Karademir, I., Demir, M., Ozturk, C., Celik, T. and Demirkol, S. (2014). Red cell distribution width in pulmonary embolism, 126(17-18): 553-554.


• Barbui, T., Carobbio, A., Rambaldi, A. and Finazzi, G. (2009). Perspectives on thrombosis in essential thrombocythemia and polycythemia vera: is leukocytosis a causative factor? Blood, 114(4): 759-763.


• Burnett, N., Mathura, K., Metivier, K.S., Holder, R.B., Brown, G. and Campbell M. (2006). An investigation into haematological and serum chemistry parameters of rabbits in Trinidad. World Rabbit Science, 14: 175-187.


• Burrowes, K.S., Clark, A.R. and Tawhai, M.H. (2011). Blood flow redistribution and ventilation-perfusion mismatch during embolic pulmonary arterial occlusion. Pulmonary Circulation, 1(3): 365-376.


• Celik, A., Ozcan, I.T., Gündes, A., Topuz, M., Pektas, I., Yesil, E., et al. (2015).Usefulness of admission hematologic parameters as diagnostic tools in acute pulmonary embolism. Kaohsiung Journal Medical Science, 31(3): 145-149.


• Cui-ping, L.V., Yang, H. and Dong, X. (2009). Establishment of rabbit's acute pulmonary thromboembolism model and measurement of right ventricle tension and electrocardiogram. Chinese Journal Comparative Medicine, 11(83): 27-30.


• Day, H.J. (2013). Thrombosis: Animal and Clinical Models. Springer, New York, pp: 27, 43-48.


• Etim, N.N., Enyenihi, G.E., Akpabio, U. and Offiong, E.E. (2014). Effects of nutrition on haematology of rabbits. European Scientific Journal, 10(3): 413-424.


• Ettinger, A. and Feldman, E.C. (2009). Textbook of Veterinary Internal Medicine. 7th ed., UK: London, W.B. Saunders, pp: 138-177, 213-220.


• Flecknell, P.A. (2000). BSAVA manual of rabbit medicine and surgery. British Small Animal Veterinary Association, London, pp: 52-61.


• Fox, J.G., Anderson, L.C., Loew, F.M. and Quimby, F.W. (2002). Laboratory Animal Medicine, UK: London, Academic Press, pp: 333-334.


• Goggs, R., Benigni, L., Fuentes, V.L. and Chan, D.L. (2009). Pulmonary thromboembolism. Journal of Veterinary Emergency and Critical Care, 19(1): 30-52.


• Goldhaber, S.Z. (2006). Acute pulmonary embolism: risk stratification.  Journal of Pathophysiology of Hemostasis and Thrombosis, 35: 153-156.


• Goldhaber, S.Z. and Bounameaux, H. (2012). Pulmonary embolism and deep vein thrombosis. Lancet, 37(9828): 1835-1846.


• Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. (1995). Washington, DC: Government, Printing Office 1985; NIH publication, pp: 23-85.


• Henkink, R., Boles, M. and Dillehay, G. (1996). Nuclear Medicine. UK: London, Mosby–year book, St Louis, pp: 120-162.


• Hume, M., Sevitt, S. and Thomas, D.P. (1970). Venous Thrombosis and Pulmonary Embolism. UK: London, Harvard University Press, pp: 214-270.


• Jardins, T.D. and Burt, G.G. (2015). Clinical Manifestations and Assessment of Respiratory Disease. 7th ed., UK: London, Elsevier Health Sciences, pp: 108.   


• Ji, Y., Gao, H. and Zhang, Z. (2001).  Exploration of Rabbit Model of Pulmonary Embolism with Autologous Blood Clots. Laboratory Animal Science Administration, 4: 1-4.


• Kucuk, M.P., Oztuna, F., Yasin Abul, Y., Ozsu, S. and Ozlu, T. (2015). Prognostic Role of Red Cell Distribution Width (RDW) At Pulmonary Embolism (PTE). Acute Pulmonary Embolism, A4880.


• Marshall, A., Lichtman, M.A. and Spivak, J.L. (2000). Hematology: Landmark Papers of the Twentieth Century. UK: London, Academic Press, pp: 351-355.


• Mettler, F.A. and Guiberteau, M.J. (2010). Essentials of Nuclear Medicine Imaging. 6th ed., Philadelphia, Elsevier/Saunders, pp: 195-250. 


• Ozsu, S., Abul, Y., Gunaydin, S., Orem, A. and Ozlu, T. (2014). Prognostic value of red cell distribution width in patients with pulmonary embolism. Clinical and Applied Thrombosis/ Hemostasis, 20(4): 365-70.


• Pazarlı, A.C. and Bekar, L. (2014). Clinical utility of red blood cell distribution width parameter in patients with hemodynamically stable acute pulmonary embolism. Eurasian Journal of Pulmonology, 16: 27-30.


• Plumb, D.C. (2005). Plumb's Veterinary Drug Handbook. 4th ed. USA: Iowa, Iowa State Press, pp: 451-477.


• Rezende, S.M., Lijfering, W.M., Rosendaal, F.R. and Cannegieter, C.S. (2014). Hematologic variables and venous thrombosis: red cell distribution width and blood monocyte count are associated with an increased risk. Haematologica, 14(99): 194-200.


• Samama, S. (2006). Pulmonary Embolism: Controversies in Laboratory Studies. Journal of Pathophysiology of Hemostasis and Thrombosis, 35: 157-161.


• Sen, H.S., Abakay, O., Tanrikulu, A.C., Sezgi, C., Taylan, M., Abakay, A., et al. (2014). Is a complete blood cell count useful in determining the prognosis of pulmonary embolism? Wien Klin Wochenschr, 126(11–12): 347-354.


• Sobieszczyk, P., Fishbein, M.C. and Goldhaber, S.Z. (2002). Acute Pulmonary Embolism, Don’t Ignore the Platelet. Circulation, 106: 1748-1749.


• Suckow, M.A., Stevens, K.A. and Wilson, R.P. (2012). The Laboratory Rabbit, Guinea Pig, Hamster, and Other Rodents. USA: London, Academic Press, pp: 104-106.


• Thrall, M.A., Weiser, G., Allison, R. and Campbell, T.W. (2012). Veterinary Hematology and Clinical Chemistry. 2nd ed., Toronto, John Wiley & Sons, pp: 44-56.


• Varga, M. (2013). Textbook of Rabbit Medicine. 2th ed., UK: London, Butterworth-Heinemann, pp: 111-113.


• Vaya, A. and Suescun, M. (2013).  Hemorheological parameters as independent predictors of venous thromboembolism. Clinical Hemorheology and Microcirculation, 53(1-2): 131-41.


• Weiss, D.J. and Wardrop, K.J. (2010). Schalm's Veterinary Hematology. UK: Oxford, Willy Blackwell publishing Ltd, pp: 890.


• Whelihan, M.F., Zachary, V., Orfeo, T. and Mann, K.G. (2012). Prothrombin activation in blood coagulation: the erythrocyte contribution to thrombin generation. Blood, 120(18): 3837-3845.

 

• Yang, G., Yang, X., Zhang, L., Zhu, H., Chai, X., Hu, X., et al. (2011). Pulmonary enhancement imaging with dual energy CT for the detection of pulmonary embolism in a rabbit model: comparison to perfusion planar scintigraphy, SPECT and SPECT-CT modalities. Academic Radiology, 18(5): 605-614.


• Zhang, L., Chai, X., Wu, S., Zhao, Y., Hu, X., Hu, Y., et al. (2009). Detection of pulmonary embolism by dual energy CT: correlation with perfusion scintigraphy and histopathological findings in rabbits. European Radiology, 19(12): 2844-2854.


• Zorlu, A., Bektasoglu, G., Guven, F.M., Dogan, O.T., Gucuk, E., Ege, M.R., et al. (2012). Usefulness of admission red cell distribution width as a predictor of early mortality in patients with acute pulmonary embolism. American Journal Cardiology, 109(1): 128-134.