مطالعه تاثیر پیوگلیتازون بر عملکرد بافت بیضه متعاقب القاء شوک حرارتی اسکروتال در موش صحرایی
محورهای موضوعی :
آسیب شناسی درمانگاهی دامپزشکی
سعید محمدحسینی
1
,
مهرداد نشاط‌قراملکی
2
,
سیداسماعیل صفوی
3
1 - دانش‌آموخته دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تبریز، تبریز، ایران
2 - استادیار گروه علوم درمانگاهی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تبریز، تبریز، ایران.
3 - استادیار گروه علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تبریز، تبریز، ایران.
تاریخ دریافت : 1392/09/09
تاریخ پذیرش : 1394/05/26
تاریخ انتشار : 1394/03/01
کلید واژه:
شوک حرارتی اسکروتال,
پیوگلیتازون,
بیضه موش,
صحرایی,
چکیده مقاله :
شوک حرارتی در بیضه حتی برای یک بار و به مدت کوتاه، می تواند باعث تخریب بافت بیضه و اختلال در روند اسپرماتوژنز شود. پیوگلیتازون داروی ضد التهاب و آنتی اکسیدان بوده که به طور گسترده در بیماران دیابتی استفاده می‌شود. هدف اصلی این مطالعه، ارزیابی تاثیر پیوگلیتازون بر بافت بیضه متعاقب شوک حرارتی اسکروتال می باشد. بدین منظور، تعداد 54 سر موش صحرایی نر ویستار به صورت تصادفیبه 9 گروه 6تایی تقسیم شدند. در 3 گروه اول، به عنوان شاهد ، اسکروتوم حیوانات در آب 23 درجه سلسیوس قرار داده شد. در 3 گروه دیگر (تیمار های 1) اسکروتوم به مدت 15 دقیقه در آب 43 درجه سلسیوس قرار داده شد، سپس حیوانات به مدت 15، 30 و 60 روز سرم فیزیولوژی دریافت کردند. در 3 گروه بعدی (تیمارهای 2) نیز پس از القاء شوک حرارتی اسکروتال، پیوگلیتازون به میزان mg/kg20 به مدت 15، 30 و 60 روز تزریق گردید. پس از اتمام دوره آزمایش ، نمونه های بافت بیضه جهت مطالعات پاتولوژی و هیستومورفومتری اخذ گردید. نتایج با استفاده از آزمون تحلیل واریانس یکطرفه (ANOVA) و آزمون توکی (Tukey) مورد تحلیل آماری قرار گرفت و 05/0>p معنی دار در نظر گرفته شد. در تیمارهای 1، قطر لوله های منی ساز و ضخامت اپی تلیوم آن در مقایسه با شاهد کاهش معنی دار ولی ضخامت بافت بینابینی و کپسول بیضه افزایش معنی داری داشت (05/0>p). در تیمارهای 2، قطر لوله های منی ساز در روزهای 15، 30 و 60 و ضخامت اپی تلیوم ، در روزهای 30 و 60 افزایش معنی دار داشته و ضخامت بافت بینابینی در روزهای 15، 30 و 60 در مقایسه با تیمارهای 1، کاهش معنی داری داشت ( 05/0>p). ضخامت کپسول بیضه فقط در روز 60 کاهش معنی داری داشت (001/0>p). نتایج این مطالعه نشان داد که پیوگلیتازون از اثرات مخرب شوک حرارتی بر بافت بیضه کاسته و باعث بهبود شاخص های هیستومورفومتری بیضه می گردد.
چکیده انگلیسی:
Testicular heat shock even for a single short period can induce destruction in testicular tissue and disturbances spermatogenesis. Pioglitazone is an anti-inflammatory and anti-oxidative drug which is used widely in diabetic patients. The main aim of this study is evaluation of effect of pioglitazone on testicular tissue after scrotal heat shock. For this purpose, 54 male Wistar rats were randomly divided in to 9 of 6 rats. In the first three groups which were used as control, the scrotum of animals were submerged in 230c water. In the other three groups (treatment 1), the scrotum was submerged in 430c water for 15 minutes and then the animals received normal saline for 15, 30 and 60 days. In the final three groups (treatment 2) after scrotal heat shock induction, pioglitazone was injected at a dose of 20 mg/kg for 15, 30 and 60 days. At the end of the experimental periods, testicular tissue samples were obtained for pathological and histomorphometerical studies. The results were analyzed with one-way ANOVA and Tukey test and p
منابع و مأخذ:
صفوی، ا.، شهروز، ر.، صدرخانلو، ر. و صراف زاده، ف. ( 1387). مطالعه هیستومورفومتری بیضه در کرپیتورکیدیسم تجربی یکطرفه در موش صحرایی بالغ. مجله دامپزشکی ایران، دوره 4، شماره 1، بهار 87، صفحات: 65-57.
عمواوغلی تبریزی ، ب. و خاکپور، م. (1393). مطالعه اثرات محافظتی عصاره ریزوم زنجبیل بر آسیب ناشی از استرس گرما در بیضه موش. مجله آسیب شناسی درمانگاهی دامپزشکی، دوره 7، شماره 3 ، صفحات: 192-183.
Abshenas, J., Babaei, H., Zare, M.H., Allahbakhshi, A. and Sharififar F. (2011). The effects of green tea (Camellia sinensis) extract on mouse semen quality after scrotal heat stress. Veterinary Research Forum, 2(4): 242-247.
Ajit, V.Gopabandhu, J. and Poduri, R. (2010). Pioglitazone attenuates prostatic enlargement in diet-induced insulin-resistant rats by altering lipid distribution and hyperinsulinaemia. British Journal of Pharmacology, 161(8): 1708-1721.
Billig, H. and Beumer, T. (1995). Apoptosis in testis germ cells: developmental changes in gonadotropin dependence and localization to selective tubule stage. Endocrinology, 136: 5- 12
Buttke, T. and Sandstrom, P. (1994). Oxidativ stress as mediator of apoptosis. Immunology Today, 15: 7- 70
Danno, S., Itoh, K. and Matsuda, T. (2000). Decreased expression of mouse Rbm 3, a cold–shock Protein, in sertoli cells of cryptorchid testis. American Journal of Pathology, 156(5): 1685-1692
Ferwana, M., Firwana, B., Hasan, R., Al-Mallah, M., Kim, S., Montori V., et al. (2013). Pioglitazone and risk of bladder cancer: a meta-analysis of controlled studies. Journal of the British Diabetic Association, 30(9): 1026-1032.
Gumieniczek, A., Hopkała, H. and Zabek, A. (2008). Protective effects of a PPAR gamma agonist pioglitazone on anti-oxidative system in testis of diabetic rabbits, Die Pharmazie, 63(5): 377-378.
Guo, C., Zhou, x. and Liu, Y. (2001). Expression of HSP 70-2 gene during Germ cell. Molecular and Cellular Biology, 8: 3260- 3266.
Ikeda, M., Kodama, H. and Fududa, J. (1999). Role of radical oxygen species in the rat testicular germ cell apoptosis induced by heat stress. Biology of Reproduction, 61: 393-399.
Jagdish, K. and Nehal, S. (2011). Comparison effect of Pioglitazone and Glimepiride alone on renal function marker in experimentally induced renal damage in diabetic rats. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 1(3): 72-76.
Kim, Y., Kim, G., Shin, J., Kim, K. and Lim, J. (2010). Effect of Korea red ginseng on testicular tissue injury after testicular torsion and detorsion. Korean Journal of Urology, 51(11):794-799.
Kumagai, A., Fukuda, J., and Kodama, H. (2000). Germ cell- specific heat shock protein105 binds to P53 in a temperature – sensitive manner in rat testis. European Journal of Biochemistry, 267: 3073-3078.
Lue, Y., Hikim, A., Swerdloff, R. and Taing, K. (1999). Single exposure to heat induces stage – specific germ cell apoptosis in rat. Endocrinology, 140: 1709-1717.
Mazzone, T. (2007). Effect of pioglitazone compared with glimepride on carotid intima-media thickness in type 2. US Cardiology, 4(1): 25-30.
Meistrich, M., Wilson, G. and Porter, K. (2003). Restoration of spermatogenesis in DBCP – treated rats by hormone suppression. Toxicological Sciences, 76(2): 418-426.
Packiavathy, A. and Rmalingam, M. (2010). Effect of pioglitazone on inflammatory mediators in type 2 diabet. International Journal of Applied Biology and Pharmaceutical Technology, 1(3): 869-872.
Royere, D., Guerif, F. and Laurent, V. (2004). Apoptosis in testicular germ cell. International Congress Series, 1266: 170-176.
Sarge, K. and Cullen, K. (1997). Regulation of hsp expression during rodent spermatogenesis. Cellular and Molecular Life Sciences, 53: 191-197.
Setchell, B., Ploen, L. and Ritzen, E. (2001). Reduction of long term effects of local heating of the testis by treatment of rats with a GnRH agonist and an antiandrogen. Reproduction, 122: 255-263.
Shikone, T. and Billing, H. (1994). Experimentally induced cryptorchidism increases apoptosis in rat testis. Biology of Reproduction, 51: 866-872.
Smith, U. (2001). Pioglitazone: mechanism of action. International journal of clinical practice. Supplement Sep., 121: 8-13.
Toshinari, T., Hitoshi, A., Yukihiro, N., Haruhisa, Y., Erika, N. and Kenichi, K. (1999). Pioglitazone prevents mice from multiple low-dose streptozotocin induced insulitis and diabetes. Diabetes Research and Clinical Practice, 44(2): 107-114.
