بررسی اثر ضد میکروبی و التیام بخشی عصاره های مختلف گزنه، باباآدم و بلاغ اوتی به همراه سیلور سولفادیازین بر روی عفونت سوختگی ناشی از استافیلوکوکوس اورئوس در موش
محورهای موضوعی : مجله پلاسما و نشانگرهای زیستی
علی حسین هاشمی علیا
1
(گروه میکروبیولوژی دانشکده علوم پایه واحد زنجان، دانشگاه آزاد اسلامی، زنجان، ایران.)
رضا شاپوری
2
(گروه میکروبیولوژی دانشکده علوم پایه واحد زنجان، دانشگاه آزاد اسلامی، زنجان، ایران)
محمد رضا اسرافیلی
3
(گروه میکروبیولوژی دانشکده علوم پایه واحد زنجان، دانشگاه آزاد اسلامی، زنجان، ایران)
کلید واژه: استافیلوکوکوس اورئوس, موش, گزنه, بلاغ اوتی, ریشه باباآدم,
چکیده مقاله :
زمینه و هدف: استافیلوکوکوس اورئوس موجب ایجاد طیف وسیعی از بیماری ها می باشد. عفونت استافیلوکوکی پوست شایع ترین عفونت باکتریال در انسان است. بررسی اثر ضد میکروبی و التیام بخشی عصاره های مختلف گزنه، باباآدم و بلاغ اوتی به همراه سیلور سولفادیازین بر روی عفونت سوختگی ناشی از استافیلوکوکوس اورئوس در موش است. روش کار: در این مطالعه عصاره های آبی و اتانولی گیاه گزنه، بلاغ اوتی و ریشه باباآدم در آزمایشگاه تهیه و میزان MIC و MBC عصاره ها با روش رقت در براث تعیین گردید. در مطالعه مدل حیوانی ابتدا با غلظت(106×5(CFU/ML))تعیین شده باکتری به محل زخم روی موش های ماده سوری تلقیح شد. پس از 24 ساعت پماد تهیه شده با غلظت MBC از عصاره های گیاهان گزنه، بلاغ اوتی و ریشه باباآدم به ازای 1 گرم سیلورسولفادیازین تهیه و به محل سوختگی و عفونت حاصله با باکتری استافیلوکوکوس اورئوس، برای درمان استفاده گردید. یافته ها: در مدل حیوانی مشخص شد که عصاره های آبی و اتانولی گزنه، بلاغ اوتی و ریشه باباآدم دارای فعالیت ضد میکروبی علیه رشد باکتری استافیلوکوکوس اورئوس می باشد. در مجموع نتایج این بررسی نشان داده عصاره های آبی و اتانولی استخراج شده از این گیاهان دارویی(گزنه، بلاغ اوتی و بابا آدم) در شرایط آزمایشگاهی دارای فعالیت ضد میکروبی و باکتری کشی علیه رشد باکتری استافیلوکوکوس اورئوس می باشد. نتیجه گیری: با توجه به یافته های این مطالعه می توان نتیجه گرفت که عصاره این سه گیاه(گزینه، بلاغ اوتی و بابا آدم) بر مدل حیوانی دارای اثر ضد میکروبی و التیام بخش روی باکتری استافیلوکوکوس اورئوس می باشد و می توان به عنوان یک دارو یا پماد ضد باکتریایی مطرح گردد. در این میان عصاره های گزنه و ریشه باباآدم دارای فعالیت مهار رشد و باکتری کشی قوی تری نسبت به عصاره بلاغ اوتی دارد. می توان امید داشت که در آینده از این گیاهان مذکور برای درمان عفونت های باکتریایی مورد استفاده قرار گیرد.
1.Abdel-Hady. AA., El-Nahas, HA., El Nabarawy, SK., Abdel Raouf, HA. (2014). Evaluation of the antioxidant activity and the acute oral toxicity of three plant extracts on albino mice. Middle East J Appl Sci, 4(2); 207-216.
2.Amini, K., Hemmatpoor, B., Moradi, P., Nazari, Z., Mahvar, T. (2014). Antibacterial activity of the ethanol and water extracts and investigating the chemical composition of different parts Urtica dioica L. Sci Road J, 02(02); 57-65.
3. Azadbakht, M., Hosseinimehr, SJ., Khorasani, G., Zamani, P., Ghasemi, M., Ahmadi, A. (2010). Effect of aloe cream versus silver sulfadiazine for healing burn wounds in rats. Acta Dermatonenerol Croat, 18; 2-7.
4.Bhullar, K., Waglechner, N., Pawlowski, A., Koteva, K., Banks, ED., Johnston, MD. (2012). Antibiotic resistance is prevalent in an isolated cave microbiome. PloS one, 7(4); e34953.
5.Chung, FL., Morse, MA., Eklind, KI., Lewis, J. (1992). Qcutitation of human uptake of the anti carcino gen phenethyl iso thicyanat after a watercress meal. Cancer Epidemiol Biomarkers Pre, 1(5); 383-8.
6. Chung, FL.(1999). Comparison of Lavandula angustifolia mill tincture and imipramine in the treatment of mild to melerate depression: a double-blind, randomized trial prog. Neuro Psycho Pharmacol Biol Psychiatry. Awang DVC, 450-456.
7.Cooper, ML., Laxer, JA., Hansbrough, JF. (1991). The cytotoxic effects of commonly used topical antimicrobial agents on human fibroblasts and keratinocytes. J Trauma, 31; 775-84.
8.Dinges, MM., Dinges, P., Orwin, M. (2000). Exotoxin of Staphylococcus aureus. Clin Microbiol Rev, 13(1); 16-34.
9.Finegold, M. (1990). Printed in the United States of America, The C.V. 8th Ed. Mosby Company. St Louis. Missouri, p:329.
10.Fisgin, NT., Cayci, YT., Coban, AY., Ozatli, D., Tanyel, E., Durupinar, B. (2009). Antimicrobial activity of plant extract Ankaferd blood stopper. Fitoterapia, 80; 48-50.
11.Guler, ER. (2013). Investigation of chemo preventif properties of Urtica dioica L., in MCF-7 and MDA 231 breast cancer cell lines. New J Med , 30; 50-53.
12.Gutowska, I., Jakubczyk, K., Dec, K., Baranowska Bosiacka, I., Drozd, A., Janda, K. (2014). Effect of the extract from nettle(Urtica dioica L.) fruit cluster on the synthesis of pro-inflammatory agents in hepatocytes treated with fluoride. Res Rep Fluoride, 47(2); 109-118.
13.Hettiaratchy, S., Dziewulski, P. (2004). ABC of burns. Introduction.BMJ, 328(7452); 1366-8.
14.Holden, M., Feil, E., Lindsay, J., Peacock, S., Day, N., Enright, M. (2004). Complete genomes of two clinical Staphylococcus aureus strain, Proc Natl Acad Sci USA, 101(26); 9786-9791.
15.Hosseinimehr, SJ., Khorasani, G., Azadbakht, M., Zamani, P., Ghasemi, M., Ahmadi, A. (2010). Effect of aloe cream versus silver sulfadiazine for healing burn wounds in rats. Acta Dermatonenerol Croat, 18; 2-7.
16.Janssen, AM., Scheffer, JJ. (1985). Planta. Med, 51; 507.(Abstract).
17.Kamker, A., Monfared, M., Jebelli Javan, A., Asadi, F., Aknodzadeh, A. (2010). Antioxidative effects of liquid and organic extracts form Iranin nettie (Urtica dioica L.). Asina J Food AgroInd, 3(05); 491-497.
18.Khare, V., Kushwaha, P., Verma, SH., Gupta, AB., Srivastava, SH., Rawat, AK. (2012). Pharmacognostic evaluation and antioxidant activity of Urtica dioica L. Sci Res Corporation, 3; 128-13519.
19.Kiker, RG., Carvajal, HF., Micak, RP., Larson, DL. (1977). A controlled study of the effects of silver sulfadiazine on white blood cell counts in burned children. J Trauma, 17; 835–836.
20.Kobayashi, SD., Malachowa, N., DeLeo, FR. (2015). Pathogenesis of Staphylococcus aureus abscesses. The American journal of pathology, 185(6); 1518-27.
21.Kuo, DH., Hung, MC., Hung, CM., Liu, LM., Chen, FA. (2012). Body weight management effect of burdock(Arctium lappa L.) root is associated with the activation of AMP-activated protein kinase in human HepG2 cells. Food Chem, 134(3); 1320-6.
22.Lacey, KA., Geoghegan, JA., McLoughlin, RM. (2016). The role of Staphylococcus aureus virulence factors in skin infection and their potential as vaccine antigens. Pathogens, 5(1); 22.
23.Molan, PC. (2001). Potential of honey in the treatment of wounds and burn. Am ClinDermatol, 2(1); 9-13.
24.Moran, GJ., Abrahamian, FM., LoVecchio, F., Talan, DA. (2013). Acute bacterial skin infections: developments since the 2005 infectious diseases society of america (IDSA) guidelines. Journal of Emergency Medicine, 44(6); e397-412.
25.Mohamed, H. (2016). One year prevalence of critically ill burn wound bacterial infections in surgical ICU in Egypt: Retrospective study. Egyptian Journal of Anaesthesia, 32(3); 431-4.
26.Moran, GJ., Abrahamian, FM., LoVecchio F., Talan, DA. (2013). Acute bacterial Staphylococcus aureus strain skin infections: developments since the 2005 Infectious Diseases Society of America (IDSA) guidelines. Journal of Emergency Medicine, 44(6); e412-416.
27.Nostro, A., Gernano, MP., Angelo, VA., Marino, A., Cannatelli, MA. (2000). Extraction methods and bioautography for evaluation of medicinal plant antimicrobial activity.LettApplMicrobiol, 30; 379-384.
28.Oliveira, AA., Segovia, JF., Sousa, V., Mata, E., Gonçalves, M., Bezerra, RM. (2013). Antimicrobial activity of Amazonian medicinal plants. Springer Plus, 2; 371–6.
29.Palaniswamy, UR., McAvoy, RJ., Bible, BB., Sturat, JD. (2003). Ontogenic variations of ascorbic acid and phenathylisothioncyanatc concentration in watercress(Nasturtium officinale R.Br.) leaves. J Agric J Food Chem, 51 (18); 5504-9.
30.O'Riordan, K., Lee, IC. (2004). Staphylococcus aureus capsular polysaccharides, CliiiMicrobiol Rev, 17; 218-234.
31.Parivar, K., Yaghmaie, P., Hayati Roodbari, N., Mohammadi Mohaghegh, P. (2012). Effect of synchronized oral administrationand topical application kombucha on third-degree burn wounds regeneration in mature rats. Medical Sciences 22;1-11. [In Persian]
32.Predes, FS., Ruiz, AL., Carvalho, JE., Foglio, MA., Dolder, H. (2011). Antioxidative and in vitro antiproliferative activity of Arctium lappa root extracts. BMC Complement Altern Med, 11; 25.
33.Pruitt, BA., Mc Manus, AT., Kim, SH., Goodwin, CW. (1998). Burn wound infections: current status. World J Surg, 22(2); 135-45.
34.Ramtin, M., Massiha, A., Khoshkholgh, MR., Issazadeh, Kh., Asmar, M., Zarrabi, S. (2014). In vitro antimicrobial activity of Iris pseudacorus and Urtica dioica. Zahedan J Ras Med Sci, 16(3); 35-9. (Full Text in Persian)
35.Savoia, D. (2012). Plant-derived antimicrobial compounds: alternatives to antibiotics. Future Microbiol, 7 (8); 979–990.
36.Sotillo, R.D., Hadley, M., Holm, E.T. (1994). Potato peel waste: stability and antioxidant activity of a freez-dried Extract. J Food Sci, 59(5); 1031-1033.
37.Zargari, A. (1993). Medicinal Plants. 5th ed Tehran: Tehran University Publications,p. 8-14. [Persian]
