بررسي توانايي تولید بيوفيلم در سالمونلا تیفی موریوم جداشده از نمونه های گوشت انواع طیور
محورهای موضوعی : باکتری شناسی
مرضیه نظری مقدم
1
,
ابراهیم رحیمی
2
,
امیر شاکریان
3
,
حسن ممتاز
4
1 - گروه بهداشت مواد غذایی دانشکده دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی،واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، ایران
2 - گروه بهداشت مواد غذایی دانشکده دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی،واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، ایران
3 - گروه میکروبیولوژی دانشکده علوم پایه، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، ایران
4 - گروه میکروبیولوژی دانشکده علوم پایه، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی، ایران
کلید واژه: سالمونلا, بيوفيلم, بيماري هاي منتقله از غذا, گوشت طیور,
چکیده مقاله :
سالمونلا یکی از شایعترین عوامل بیماریهای منتقله از راه غذا می باشد. فرآورده های حاصل از طیور رایجترین محصولات غذایی از جمله گوشت و تخم مرغ هستند که در شیوع سالمونلوز انسان نقش دارند. تشكيل بيوفيلم يكي از عوامل بيماري زايي باكتري سالمونلا به ويژه در صنايع غذايي محسوب مي شود كه به باكتري امكان اتصال به سطوح مختلف را مي دهد. اين مطالعه با هدف بررسي توانايي ايجاد بيوفيلم از سالمونلاهاي جداشده از گوشت انواع طیور(مرغ، بوقلمون، بلدرچین، کبک، اردک و غاز) انجام گرفته است. 440 نمونه گوشت طیور مختلف از نواحی مختلف کشور جمع آوری و توسط تست های میکروبی و بیوشیمیایی اختصاصی و با استفاده از آزمونPCR باکتری سالمونلا شناسایی گردید. به منظور بررسی توانایی تولید بیوفیلم از روش تیتراسیون در میکروپلیت استفاده شد. در مطالعه حاضر، در مجموع 36 ایزوله سالمونلا از انواع گوشت طیور جداسازی شد که همه موارد سالمونلا تیفی موریوم شناسایی شدند. داده های بهدست آمده از دستگاه الایزا ریدر نشان داد که همه جدایه ها (36 ایزوله سالمونلا) قادر به تولید بیوفیلم به درجات مختلف بودند. که در این میان 02/52 درصد توانایی اتصال قوی، 15/34 درصد توانایی اتصال متوسط و 83/13 درصد توانایی اتصال ضعیف را در تولید بیوفیلم نشان دادند. نمونه های کبک، در بین سایر نمونه ها دارای بیشترین توانایی اتصال(6/92)بودند. با توجه به توانايي ايجاد بيوفيلم سالمونلاهای جدا شده از مواد غذایی، گسترش مقاومت آنتی بیوتیکی آنها و از طرفی افزايش روزافزون گاستروانتريتهاي غذايي ناشي از سالمونلا لزوم مراقبت بيشتر و رعايت سطح بالاتر بهداشت در تهيه، توليد ، بسته بندي و عرضه مواد غذايي در سطح جامعه به نظر مي رسد.
Salmonella is one of the most common causes of foodborne diseases. Poultry products are the most common food products, including meat and eggs, which contribute to the spread of human salmonellosis. Biofilm formation is one of the pathogenic factors of Salmonella bacteria, especially in the food industry, which allows the bacteria to attach to different surfaces. This study was conducted with the aim of investigating the biofilm formation ability of Salmonella isolated from poultry meat (chicken, turkey, quail, partridge, duck and goose). 440 different poultry meat samples were collected from different regions of the country and identified by special microbial and biochemical tests and by using PCR test of Salmonella bacteria. In order to check the ability of biofilm production, titration method was used in microplate. In the present study, a total of 36 Salmonella isolates were isolated from poultry meat, and all Salmonella Typhimurium cases were identified. The data obtained from ELISA reader device showed that all isolates (36 Salmonella isolates) were able to produce biofilm to different degrees. Among them, 52.02% showed strong binding ability, 34.15% moderate binding ability and 13.83% weak binding ability in biofilm production. Quebec samples had the highest binding ability (92.6) among other samples. Due to the ability to create biofilms of Salmonella isolated from food, the spread of their antibiotic resistance, and on the other hand, the increasing increase in gastroenteritis. Foods caused by Salmonella seem to require more care and compliance with a higher level of hygiene in the preparation, production, packaging and supply of food at the community level.
1. Abebe G.M. 2020. The Role of Bacterial Biofilm in Antibiotic Resistance and Food Contamination. Int J Microbiol. 20:1-10. https://doi.org/10.1155/2020/1705814.
2. Ahmadpour M, Movassagh M.H, Hosseinzadeh S. 2022. Extract and Evaluation of the effect of Satureja sahendica hydroalcoholic Trisodium Phosphate on biofilm formation of Salmonella Typhimurium isolated from poultry.JFM. 9(4):74-88. (In Persian).
3. Aleksandrowicz A, Carolak E, Dutkiewicz A, Błachut A, Waszczuk W, and Grzymajlo K. 2023. Better together–Salmonella biofilm-associated antibiotic resistance. Gut Microbes. 15 (1): 2229937. Doi: 10.1080/19490976.2023.2229937. PMID: 37401756.
4. Avila-Novoa MG, Guerrero-Medina PJ, Navarrete-Sahagún V, Gómez-Olmos I, Velázquez-Suárez NY, Cruz-Color L, Gutiérrez-Lomelí M. 2021. Biofilm Formation by Multidrug-Resistant Serotypes of Salmonella Isolated from Fresh Products: Effects of Nutritional and Environmental Conditions. Appl. Sci. 11(8), 3581. https://doi.org/10.3390/app11083581
5. Besharati S, Owlia1 P. 2020. Evaluation of biofilm production capacity in salmonella isolated from chicken meat in Tehran municipally daily fruit and vegetable markets. Daneshvar Medicine .28(1):146. 62-67. (In Persian).
6. Bashir A, Azeem A, Stedman Y, Hilton A. 2019. Pet Food Factory Isolates of Salmonella Serotypes Do Not Demonstrate Enhanced Biofilm Formation Compared to Serotype-Matched Clinical and Veterinary Isolates. Hindawi.BioMed Research International.Volume 2019, Article ID 8569459, 7 pages. https://Doi.org/10.1155/2019/8569459.
7. Ćwiek K, Korzekwa K, Tabiś A, Bania J, Bugla-Płoskońska G, & Wieliczko A, 2020. Antimicrobial Resistance and Biofilm Formation Capacity of Salmonella enterica Serovar Enteritidis Strains Isolated from Poultry and Humans in Poland. Pathogens. 9(8): 643. Doi: 10.3390/pathogens9080643. PMID: 32784631.
8. Ćwiek K, Bugla-Płoskońska G, Wieliczko A. 2019. Salmonella biofilm development: Structure and significance. Postepy Hig Med Dosw. 73: 937-943. DOI: 10.5604/01.3001.0013.7866.
9. Dhakal J, Sharma C, Nannapaneni R, McDANIEL C, Kim T, Kiess A. 2019. Effect of Chlorine-Induced Sublethal Oxidative Stress on the Biofilm-Forming Ability of Salmonella at Different Temperatures, Nutrient Conditions, and Substrates. J Food Prot. 82(1):78-92. Doi: 10.4315/0362-028X.JFP-18-119. PMID: 30586327.
10. Giaouris E, Heir E, Hébraud M, Chorianopoulos N, Langsrud & S, Moretro T.2014. Attachment and biofilm formation by foodborne bacteria in meat processing environments: causes, implications, role of bacterial interactions and control by alternative novel methods. Meat Sci. 97(3):298-309. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2013.05.023. PMID:23747091
11. Ghasemmahdi H, Tajik H, Moradi M, Mardani K, Modaresi R, Badali A, Dilmaghani M.2015. Antibiotic resistance pattern and biofilm formation ability of clinically isolates of Salmonella enterica serotype Typhimurium. International Journal of Enteric Pathogens.3 (2):4-27372.
12. Harrell JE, Hahn MM, D’Souza SJ, Vasicek EM, Sandala JL, Gunn JS,& McLachlan JB. 2021. Salmonella biofilm formation, chronic infection, and immunity within the intestine and hepatobiliary tract. Front Cell Infect Microbiol. 10. Doi: 10.3389/fcimb.2020.624622.
13. Hassanzadeh, M, Emaddi Chashni, S.H, Bozorgmehri Fard, M.H, Mirzaie, S. 2009. Characterization of the Salmonella Isolates from Backyard Chickens in North of Iran, by Serotyping, Multiplex PCR and Antibiotic Resistance Analysis. Archives of Razi Institute. 64: 77-83.
14. Bozorgmehri Fard M.H, Hassanzadeh M, Emaddi Chashni S.H, Mirzaie S. 2009. Characterization of the Salmonella Isolates from Backyard Chickens in North of Iran, by Serotyping, Multiplex PCR and Antibiotic Resistance Analysis. Archives of Razi Institute, 64(2):77-83. Doi. 10.22092/ARI.2009.103836.
15. Manafi L, Aliakbarlu J, Dastmalchi Saei H. 2020. Antibiotic resistance and biofilm formation ability of Salmonella serotypes isolated from beef, mutton, and meat contact surfaces at retail. J Food Sci. 85(8):2516-2522. Doi: 10.1111/1750-3841.15335. PMID: 32671849.
16. Monadi M, Kargar M, Naghiha A, Najafi A, Mohammadi R. 2015. Molecular Detection of Salmonella serovar isolated from eggs. Mljgoms. 9(1):17-24. (In Persian).
17. Osland A, Oastler C, Konrat K, Nesse L, Brook E, Richter A, Gosling R, Arvand M, & Vestby L.2023. Evaluation of Disinfectant Efficacy against Biofilm-Residing Wild-Type Salmonella from the Porcine Industry. Antibiotics. 12(7), 1189. https://Doi.org/10.3390/antibiotics12071189
18. Pérez-Lavalle L, Valero A, Cejudo-Gómez M, Carrasco E. 2023. Fate and biofilm formation of Salmonella enterica subsp. enterica serovar Thompson on fresh strawberries stored under refrigeration and room temperatures. Food Control. 153, 109906. https://Doi.org/10.1016/j.foodcont.2023.109906.
19. Richter A, Konrat K, Osland A, Brook E, Oastler C, Vestby L, Gosling R, Nesse L, Arvad M. 2023. Evaluation of Biofilm Cultivation Models for Efficacy Testing of Disinfectants against Salmonella Typhimurium Biofilms. Microorganisms. 11(3):761. Doi: 10.3390/microorganisms11030761. PMID: 36985334.
20. Silva P, Goulart L R, Reis T, Mendonça E, Melo R, Penha V, Peres P, Hoepers P, Beletti M, Fonseca B. 2019. Biofilm Formation in Different Salmonella Serotypes Isolated from Poultry. Curr Microbiol. 76(1):124-129. Doi: 10.1007/s00284-018-1599-5. PMID: 30560366.
21. Sirdani A, Soltan Dallal M. 2018. Investigating the Ability of Producing Biofilm by Isolated Salmonella from Food. AUMJ. 7(4), 306-314. (In Persian).
22. Shatila F, Yaşa I, Tansel Yalçın H. 2021. Biofilm Formation by Salmonella enterica Strains. Curr Microbiol. 78(4):1150-1158. Doi: 10.1007/s00284-021-02373-4. PMID: 33609163.
23. Tajik H, Moradi M, Alipour M, Ghasemmahdi H.2019. Biofilm Formation of Salmonella Typhimurium on Stainless Steel in Red Meat Model and the Effect of Bacteriophage on Bacterial Biofilm. IJMM 12(3): 179-188. (In Persian).
24. Zhang Y, Ge H, Lin W, Song Y, Ge F, Huang X, Meng X. 2021. Effect of different disinfection treatments on the adhesion and separation of biofilm on stainless steel surface. Water Sci Technol. 83 (4):877-885. DOI: 10.2166/wst.2021.028. PMID: 33617494.
