بررسی فراوانی آلودگی به توکسوپلاسما در گوسفندان استان البرز به روش نستد پی سی آر
سید رضا حسینی
1
(
دانشیار، گروه آموزشی انگل شناسی،دانشکده دامپزشکی، واحد شهرکرد، دانشگاه آزاد اسلامی،شهرکرد، ایران
)
نادیا طایفی
2
(
گروه پاتو بیولوژی دانشکده دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج
)
میلاد حمزه علی طهرانی
3
(
گروه پاتوبیولوژی- دانشکده دامپزشکی- واحد علوم و تحقیقات تهران- دانشگاه آزاد اسلامی نهران
)
کلید واژه: گوسفند, توکسوپلاسما گوندی, پی سی آر, زئونوز. ,
چکیده مقاله :
چکیده مقدمه: امروزه با توجه به مصرف روز افزون گوشت گوسفند و محبوبیت گوشت این حیوان و همچنین زئونوز بودن بیماری توکسوپلاسموزیس میان انسان و حیوانات و همچنین خسارات مالی که این انگل به دامداران وارد می نماید باید مورد توجه قرار گیرد. هدف: هدف ما در این تحقیق بررسی ارزیابی ردیابی توکسوپلاسما به روش پی سی آر نستد در خون گوسفند در استان کرج بوده است. روش اجرای تحقیق: در این تحقیق بعد از جمع آوری نمونه های آزمایش و ثبت مشخصات و اطلاعات هر نمونه به کمک روش نستد پی سی آر به بررسی حضور انگل توکسوپلاسما گوندی در گوسفندان استان کرج پرداخته شد. سپس تمامی داده های به دست آمده به کمک نرم افزارSPSS آنالیز گردید. نتایج: نتایج به دست آمده نشان می دهد که 9 نمونه) 1/11%( از نمونه های آزمایش شده) 81 نمونه( دارای سطح آلودگی با توکسوپلاسما گوندی می باشند، همچنین رابطه معنی داری میان سن و جنسیت دام با آلودگی با توکسوپلاسما گوندی دیده شده است. نتیجه گیری: نتایج به دست آمده در این گزارش، ضرورت بررسی ایمنی انگلی در ایران را نشان می دهد، زیرا با توجه به این موضوع که بیشتر دام های ایران به شکل سنتی پرورش داده می شود و مراقبت های پیشگیرانه به منظور آلودگی انگلی کمتر انجام می شود یک خطر بالقوه برای سلامتی حیوانات و مصرف کنندگان گوشت آن ها باشد.
چکیده انگلیسی :
Abstract Introduction: Today, due to the increasing consumption of sheep meat and the popularity of this animal's meat, as well as the zoonosis of Toxoplasma gondii disease between humans and animals, as well as the financial losses caused by this parasite to livestock farmers, attention should be paid. Purpose: Our purpose in this research is to evaluate the detection of Toxoplasma by nested PCR method in sheep blood it was in Karaj province. Research implementation method: In this research, after collecting test samples and recording the characteristics and information of each sample, the presence of Toxoplasma gondii parasite in the sheep of Karaj province was investigated using the nested PCR method. Then all the obtained data were analyzed with the help of SPSS software. Results: The obtained results show that 9 samples (11.1%) of the tested samples (81 samples) have a level of contamination with Toxoplasma gondii, also a significant relationship between the age and sex of the animal with contamination with Toxoplasma gondii has been seen. Discussion and conclusion: The results obtained in this report show the necessity of examining the safety of parasites in Iran, because most of Iran's livestock are raised in a traditional way and preventive care for parasitic contamination is less. It can be a potential risk for the health of animals and their meat consumers.
Refrense:
1. Bahrami A.M, Jafarian M., Ali rahmi H., Mohammadi M, Cheragh afrooz S., Havasi Z., et al.(2013) Seroepidemiological Study of Toxoplasmosis in Sheep, Ilam, Iran (2013). J Vet Clin Res [Internet];4(4):263–8. Available from: https://jvcr.karaj.iau.ir/article_525906.html
2. Benavides, J., Maley, S., Pang, Y., Palarea, J., Eaton, S., Katzer, F., Innes, E.A., Buxton, D. Chianini F.(2011) Development of lesions and tissue distribution of parasite in lambs orally infected with sporulated oocysts of Toxoplasma gondii. Vet Parasitol;179:209–15.
3. Çakmak DÖ, Karatepe B.(2017) Seroprevalence of Toxoplasma gondii in sheep from Nevşehir province in Turkey. Türkiye Parazitolojii Derg;41(3):148.
4. Carruthers VB, Tomley FM.(2008) Microneme proteins in apicomplexans. Mol Mech parasite invasion Subcell Biochem;33–45.
5. Carruthers VB, Boothroyd JC.(2007) Publisher’s note Pulling together: an integrated model of Toxoplasma cell invasion. Curr Opin Microbiol;10:82.
6. Cheraghipour k, Sheikhian A, Tarahi MJ, Nosrati Z, Moradpour K, Zibaei M. (2013) Seroprevalence of toxoplasmosis in slaughtered sheep and cattle in khorram Abad, Lorestan,
Iran. J Vet Lab Res [Internet];5(2):113–20. Available from:
https://jvlr.semnan.ac.ir/article_1246.html
7. Consalter A, Frazão-Teixeira E, Dubey JP, Zanella EL, da Silva AF, de Souza GN, et al. (2019) Epidemiological investigation of Toxoplasma gondii infections in commercial sheep flock in an endemic area for ocular toxoplasmosis in Southern Brazil. Acta Parasitol;64:514–9.
8. Dubey JP.(2016) Toxoplasmosis of animals and humans. CRC press.
9. Dubey JP, Prowell M.(2013) Ante-mortem diagnosis, diarrhea, oocyst shedding, treatment, isolation, and genetic typing of Toxoplasma gondii associated with clinical toxoplasmosis in a naturally infected cat. J Parasitol;99(1):158–60.
10. Dubey JP, Bealty CP.(2010) Toxoplasmosis of animals and humans, CRC Press. Boca Raton, FL.
11. Dubey JP, Sundar N, Hill D, Velmurugan G V, Bandini LA, Kwok OCH, et al.(2008) High prevalence and abundant atypical genotypes of Toxoplasma gondii isolated from lambs destined for human consumption in the USA. Int J Parasitol;38(8–9):999–1006.
12. Dubey JP, Graham DH, Blackston CR, Lehmann T, Gennari SM, Ragozo AMA, et al. (2002) Biological and genetic characterisation of Toxoplasma gondii isolates from chickens (Gallus domesticus) from Sao Paulo, Brazil: unexpected findings. Int J Parasitol;32(1):99–105.
13. Dubey JP, Lindsay DS, Speer C.(1998) Structures of Toxoplasma gondii tachyzoites, bradyzoites, and sporozoites and biology and development of tissue cysts. Clin Microbiol Rev;11(2):267–99.
14. Glor SB, Edelhofer R, Grimm F, Deplazes P, Basso W.(2013) Evaluation of a commercial ELISA kit for detection of antibodies against Toxoplasma gondii in serum, plasma and meat juice from experimentally and naturally infected sheep. Parasit Vectors;6:1–11.
15. Habibi GR, Imani AR, Gholami MR, Hablolvarid MH, Behroozikhah AM, Lotfi M, et al. (2012) Detection and identification of Toxoplasma gondii type one infection in sheep aborted fetuses in Qazvin Province of Iran. Iran J Parasitol;7(3):64.
16. Ibrahim HM, Mohamed AH, El-Sharaawy AA, El-Shqanqery HE.(2017) Molecular and serological prevalence of Toxoplasma gondii in pregnant women and sheep in Egypt. Asian Pac J Trop Med;10(10):996–1001.
17. Katzer F, Canton G, Burrells A, Palarea-Albaladejo J, Horton B, Bartley PM, et al. (2004) Immunization of lambs with the S48 strain of Toxoplasma gondii reduces tissue cyst burden following oral challenge with a complete strain of the parasite. Vet Parasitol [Internet].
[cited 2023 Sep 5];205(1–2):46–56. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/25062897/
18. Katzer F, Brülisauer F, Collantes-Fernández E, Bartley PM, Burrells A, Gunn G, et al.(2011) Increased Toxoplasma gondii positivity relative to age in 125 Scottish sheep flocks; evidence of frequent acquired infection. Vet Res;42(1):1–9.
19. Raieszadeh H, Jamshidi A, Noaman V, Razmi G.(2021) Detection of B1 Gene of Toxoplasma gondii infection in Slaughtered Sheep in Isfahan Using the Nested PCR. J Anim Biol [Internet];13(2):39–48. Available from: https://ascij.damghan.iau.ir/article_679296.html
20. Salehi M, Nezami H, Niazkar HR.(2020) Investigation of Toxoplasma gondii infection in aborted fetuses of sheep using PCR: A study in North Khorasan Province, Iran. Vet Med
Int.;2020.
21. Salehi M, Nezami H.(2019) A Survey of Toxoplasma gondii Infection in Aborted Fetuses of Sheep Using ELISA Method in Different Cities of North Khorasan Province. J Vet Res [Internet];74(3):304–10. Available from: https://jvr.ut.ac.ir/article_72869.html
22. Sun L-X, Liang Q-L, Nie L-B, Hu X-H, Li Z, Yang J-F, et al.(2020) Serological evidence of Toxoplasma gondii and Neospora caninum infection in black-boned sheep and goats in southwest China. Parasitol Int;75:102041.
