اثر تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی بر میزان تولید و باززایی کالوس در سه رقم داوودی (Chrysanhemum grandiflorum Ramat) در محیط کشت درون شیشه‎ای

Subject Areas : Journal of Ornamental Plants

محمدرضا شفیعی ¹ , عبدالله حاتم زاده ² , پژمان آزادی ³ , حبیب الله سمیع زاده لاهیجی ⁴

1 - دانشجوی بخش علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه گیلان، گیلان رشت
2 - استاد بخش علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه گیلان، گیلان، رشت
3 - دانشیار پژوهشگاه مهندسی ژنتیک و بیوتکنولوژی کشاورزی ایران، کرج، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی
4 - استاد بخش زراعت و اصلاح نباتات دانشکده کشاورزی، دانشگاه گیلان، گیلان، رشت

Received: 2023-05-10 Accepted : 2023-07-11 Published : 2023-06-01

Keywords: اکسین, بنزیل آدنین, کشت بافت, ریزنمونه, ریزازدیای,

Abstract :

گل داوودی به‌عنوان یکی از سه گل مهم در صنعت گلکاری شناخته می‌شود. این گل به‌صورت سنتی توسط قلمه تکثیر می‌شود. استفاده از ریزازدیای درون شیشه‏ای در گیاهانی مانند داوودی که با روش‏ غیر جنسی تکثیر می‌شوند رو به گسترش است. این پژوهش جهت بررسی اثر تنظیم کننده‌های رشد گیاهی بر تولید کالوس و میزان باززایی در سه رقم داوودی Bonfire yellow، Rambla و Bella rosa انجام گرفت. ریزنمونه‌های برگی داوودی جهت تولید کالوس و بصورت آزمایش فاکتوریل در قالب طرح کامل تصادفی در محیط کشت موراشیگ و اسکوگ (MS) حاوی 3 درصد ساکارز و 7 گرم در لیتر آگار به همراه مقادیر مختلف تنظیم کننده‌های رشد بنزیل آدنین  (1، 2 و 3 میلی­ گرم در لیتر) و نفتالین استیک ­اسید (0/5 و 1 میلی­ گرم در لیتر) کشت شدند. نتایج به دست آمده در سطح 1 درصد آزمون LSD معنی‎دار بود. محیط کشت حاوی 2 میلی‎گرم در لیتر BA و 1 میلی‎گرم در لیتر NAA در رقم Bonfire yellow، محیط کشت حاوی 1 میلی‎گرم در لیتر BA و 1 میلی‎گرم در لیتر NAA در مورد رقم Rambla و محیط کشت حاوی 3 میلی‎گرم در لیتر BA و 0/5 میلی‎گرم در لیتر NAA در رقم Bella rosa بیشترین باززایی را نشان داد.

References:

Borodulina, I., Trufanova, A., Shevchenko, G., Sokolova, G. and Plaksina, T. 2019. Optimization of clonal micropropagation of chrysanthemum. Ukrainian Journal of Ecology, 9 (4): 676-678.

da Silva, J.A.T. 2003. Chrysanthemum: Advances in tissue culture, cryopreservation, postharvest technology, genetics and transgenic biotechnology. Biotechnology Advances, 21: 715-766.

Deng, Y., Yang, S., Du, X., Dong, B., Ren, L., Fang, W. and Jiang, J. 2017. Establishment of efficient transient transformation system and the regeneration of stable transformants in chrysanthemum. Journal of Nanjing Agricultural University, 40 (1): 48-53. DOI: 10.7685/jnau.201603046

Eman, A. E. , Andrea, T.  and  Honfi, P. 2022. Chrysanthemum: A comprehensive review on recent developments on in vitro regeneration. Biology , 11(12): 1774. https://doi.org/10.3390/biology11121774

 Firgiyanto, R., Rohman, H.F. and Azizah, M. 2023. Effect of modified murashige and skoog medium on chrysanthemum tissue culture. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, Volume 1168, 5th International Conference on Food and Agriculture 05/11/2022 - 07/11/2022 Banyuwangi, Indonesia.

Hahn, E.J., Bae, J.H. and Lee, Y.B. 1998. Growth and leaf surface characteristics of chrysanthemum plantlets in micropropagation and microponic system. Korean Society of Horticultural Science, 39 (6): 838–842.

Hooker, M.P. and Nabors, M.W. 1977. Callus initiation, growth, and organogenesis in sugarbeet (Beta vulgaris L.). Zeitschrift für Pflanzenphysiologie, 84 (3): 237-246.

Ilahi, I.H.S.A.N., Jabeen, M. and Sadaf, S.N. 2007. Rapid clonal propagation of chrysanthemum through embryogenic callus formation. Pakistan Journal of Botany, 39(6): 1945-1952.

Jevremović, S. and Subotić, A. 2018. Micropropagation of chrysanthemum cultivars in Serbia. In: IX International Scientific Agriculture Symposium" AGROSYM 2018", Jahorina, Bosnia and Herzegovina, 4-7 October 2018. Book of Proceedings (pp. 408-413). University of East Sarajevo, Faculty of Agriculture.

Ji, A., Geng, X., Zhang, Y., Yang, H.  and Wu. G. 2011. Advances in somatic embryogenesis research of horticultural plants. American Journal of Plant Sciences, 2: 727-732.

Khalili, S., Jafarkhani Kermani, M., Azadi, P. and Kalatejari, S. 2014. Investigating effects of different factors on regeneration efficiency of two commercial cultivars of Chrysanthemum grandiflorum. In: Proceedings of 1^st National Ornamental Plants Congress, 21-22 Oct 2014, Karaj, Iran, p. 43. (in Farsi)

Lim, K.B., Kwon, S.J., Lee, S.I., Hwang, Y.J. and Naing, A.H. 2012. Influence of genotype, explant source, and gelling agent on in vitro shoot regeneration of chrysanthemum. Horticulture, Environment, and Biotechnology, 53 (4): 329-335.

Naing, A.H., Jeon, S.M., Han J.S., Lim, S.H., Lim, K.B.L. and Kim, C.K. 2014. Factors influencing in vitro shoot regeneration from leaf segments of chrysanthemum. Comptes Rendus Biologies, 337: 383-390.

Park, S.H., Kim, G.H. and Jeong, B.R. 2007. Adventitious shoot regeneration from cultured petal explants of chrysanthemum. Horticulture, Environment, and Biotechnology, 48 (6): 387-392.

Song, J.Y., Mattson, N.S. and Jeong, B.R. 2011. Efficiency of shoot regeneration from leaf, stem, petiole and petal explants of six cultivars of Chrysanthemum morifolium. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 107: 295-304.

Thangmanee, C. 2012. Mutation induction by gamma irradiation in chrysanthemum [Chrysanthemum x grandiflorum (Ramat.) Kitam.] (Doctoral Dissertation, Prince of Songkla University).