تکثیر درون شیشه ای سفالانترا روبرا ، یک ارکید در معرض خطر، با استفاده از 2، 4-دی، نفتالین استیک اسید و بنزیل آدنین

Subject Areas : Journal of Ornamental Plants

مهدی زرگر آزاد ¹ , بهزاد کاویانی ² , شهرام صداقت حور ³

1 - دانشجوی دکتری، گروه علوم باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
2 - گروه علوم باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
3 - گروه علوم باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران

Received: 2023-03-09 Accepted : 2023-05-31 Published : 2023-09-01

Keywords: کشت بافت, ریزازدیادی, تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی, ارکیداسه, گیاهان زینتی تهدیدشده,

Abstract :

ارکیدها به دلیل طیف وسیعی از رنگ‌ها، اندازه‌ها، شکل‌ها و بوها در گل‌هایشان از محبوبیت جهانی برخوردارند. درخواست برای ارکیدها به عنوان گل‌های شاخه‌بریده و گیاهان گلدانی در بازار گل رو به افزایش است. جوانه‌زنی بذر ارکیدها در حالت وحشی بسیار پایین است به طوری که آنها در طی جوانه‌زنی‌شان به همزیست‌های قارچی نیاز دارند. ریزازدیادی ارکیدها یک رویکرد عمده برای حفاظت و تکثیر تجاری است. Cephalanthera rubra (L.) Rich، یکی از گونه‌های ارکید در معرض خطر ایران، با استفاده از برگ به عنوان ریزنمونه، موراشیگ و اسکوگ (MS) به عنوان محیط کشت و ɑ-نفتالین‌استیک اسید و 4،2-دی‌کلروفنوکسی‌استیک اسید (هر دو در غلظت‌های 0، 0/1، 0/2، 0/3 و 0/4 میلی‌گرم بر لیتر) همچنین 6-بنزیل‌آدنین (در غلظت‌های 0، 1، 2، 3 و 4 میلی‌گرم بر لیتر) به عنوان تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی (PGRs) کلون شده‌اند. به دلیل آغاز یک کشت گندزدا، ضدعفونی ریزنمونه‌های برگ با هیپوکلریت سدیم و کلرید جیوه انجام شد. بیشترین تعداد شاخه (4/33) در محیط غنی‌شده با 4 میلی‌گرم بر لیتر بنزیل‌آدنین به دست آمد. بیشینه‌ی طول ساقه (4/73 سانتی‌متر)، تعداد برگ (5/33) و تعداد گره (2/86) در محیط مکمل‌شده با 3 میلی‌گرم بر لیتر بنزیل‌آدنین به دست آمد. بیشترین تعداد ریشه (5) و بالاترین طول ریشه (4/83 سانتی‌متر) روی محیط غنی‌شده با 0/3 میلی‌گرم بر لیتر نفتالین‌استیک اسید تولید شد. گیاهچه‌های ریشه‌دارشده به گلدان‌های پرشده با پیت و پرلیت به نسبت 1:1 منتقل گردیدند و به شرایط محیطی گلخانه با میانگین بقای 90 درصد سازگار شدند. این اولین گزارش روی ریزازدیادی C. rubra (L.) Rich است.

References:

Amoo, S.O., Aremu, A.O., Moyo, M., Szučova, L., Dolžal, K. and van Staden, J. 2014. Physiological effects of a novel aromatic cytokinin analogue in micropropagated Aloe arborescens and Harpagophytum procumbens. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 116: 17-26.

Baker, A., Kaviani, B., Nematzadeh, Gh. and Negahdar, N. 2014. Micropropagation of Orchis catasetum ‐ A rare and endangered orchid. Acta Scientiarum Polonorum Hortorum Cultus, 13 (2): 197-205.

Bhattacharyya, P., Kumaria, S. and Tandon, P. 2016. High frequency regeneration protocol for Dendrobium nobile: A model tissue culture approach for propagation of medicinally important orchid species. South African Journal of Botany, 104: 232-243.

Chen, Y., Goodale, U.M., Fan, X.L. and Gao, J.Y. 2015. Asymbiotic seed germination and in vitro seedling development of Paphiopedilum spicerianum: An orchid with an extremely small population in China. Global Ecology Conservation, 3: 367-378.

Dohling, S., Kumaria, S. and Tandon, P. 2012. Multiple shoot induction from axillary bud cultures of the medicinal orchid, Dendrobium longicornu. AoB Plants, 1–7. http://dx.doi.org/10.1093/aobpla/pls032

Engelmann, F. 2011. Use of biotechnologies for the conservation of plant biodiversity. In vitro Cellular Developmental Biology - Plant, 47: 5-16.

Huang, L.C., Lin, C.J., Kuo, C.I., Huang, B.L. and Murashige, T. 2001 Paphiopedilum cloning in vitro. Scientia Horticulturae, 91: 111-121.

Kalimuthu, K., Senthikumar, R. and Vijayakumar, S. 2007. In vitro micropropagation of orchid, Oncidium sp. (Dancing Dolls). African Journal of Biotechnology, 6 (10): 1171-1174.

Kaviani, B., Negahdar, N., Baker, A. and Mosafer, N. 2017. In vitro micropropagation of an endangered orchid species (Orchis catasetum) through protocorms: The effect of plant growth regulators and iron nanochelate. Plant Research Journal, 30 (1): 215-225. (In Persian with English abstract)

Luo, J.P., Wawrosch, C. and Kopp, B. 2009. Enhanced micropropagation of Dendrobium huoshanense C.Z. Tang et S.J. Cheng through protocorm-like bodies: The effect of cytokinins, carbohydrate sources and cold pretreatment. Scientia Horticulturae, 123: 258-262.

Mahendran, G. and Narmatha Bai, V. 2009. Mass propagation of Satyrium nepalense D.Don.‐A medicinal orchid via seed culture. Scientia Horticulturae, 119: 203-207.

Mohammadi, M., Kaviani, B. and Sedaghathoor, Sh. 2019. Micropropagation of two near threatened orchid. Part 2: Phalaenopsis amabilis Blume var. Grandiflora. Advances in Horticultural Sciences, 33 (4): 485-493.

Murashige, T. and Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiology Plant, 15: 473–479.

Murthy, H.N., Paek, K.Y. and Park, S.Y. 2018. Micropropagation of orchids by using bioreactor technology. In: Lee, Y.I.  and Yeung, E.C-T (eds.), Orchid propagation: From Laboratories to Greenhouses—Methods and Protocols, Springer Protocols Handbooks, https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7771-09

Panwar, D., Ram, K. and Shekhawat, H.N. 2012. In vitro propagation of Eulophia nuda Lindl., an endangered orchid. Scientia Horticulturae, 139: 46-52.

Park, S.Y., Huh, Y.S. and Paek, K.Y. 2018. Common protocols in orchid micropropagation. pp. 179-194. In: Lee, Y.I.  and Yeung, E.C-T (eds.), Orchid propagation: From laboratories to greenhouses—methods and protocols. Springer Protocols Handbooks, https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7771-0_8

Roy, A.R., Patel, R.S., Patel, V.V., Sajeev, S. and Deka, B.C. 2011. Asymbiotic seed germination, mass propagation and seedling development of Vanda coerulea Griff ex. Lindl. (Blue Vanda): An in vitro protocol for an endangered orchid. Scientia Horticulturae, 128: 325-331.

Seeni, S. and Latha, P.G. 2000. In vitro multiplication and ecorehabilitation of the endangered Blue Vanda. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 61: 1-8.

Yam, T.W. and Arditti, J. 2018. Orchid micropropagation: An overview of approaches and methodologies. In: Lee, Y.I. and Yeung, E.C.T (eds.), Orchid propagation: From laboratories to greenhouses—methods and protocols. Springer Protocols Handbooks, https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7771-0_9

Yeung, E.C., Li, Y.Y. and Lee, Y.I. 2018. Understanding seed and protocorm development in orchids. In: Lee, Y.I. and Yeung, E.C.T (eds.), Orchid propagation: From laboratories to greenhouses—methods and protocols. Springer Protocols Handbooks, https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7771-0_9

Zakizadeh, Z., Kaviani, B. and Hashemabadi, D. 2019. Micropropagation of two near threatened orchid. Part 1. Catasetum pileatum cv. Alba. Advances in Horticultural Sciences, 33 (4): 475-483.

Zeng, S., Wua K., Teixeira da Silva, J.A., Zhanga, J., Chena, Z., Xiaa, N. and Duan, J. 2012. Asymbiotic seed germination, seedling development and reintroduction of Paphiopedilum wardii Sumerh., an endangered terrestrial orchid. Scientia Horticulturae, 138: 198-209.