تاثیر تابش نور آبی و غلظت های مختلف نانوسیلور بر عمر گلجایی و صفات دخیل بر حفظ کیفیت پس از برداشت گل‌های شاخه بریده آلسترومریا رقم ’ناپولی‘

Subject Areas : Journal of Ornamental Plants

مهرآسا  انوری ¹ (دانشجوی دکتری، گروه باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران)
داود  هاشم آبادی ² (گروه باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران)
بهزاد  کاویانی ³ (گروه باغبانی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران)
لیلا  اسدپور ⁴ (گروه میکروبیولوژی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران)

Received: 2021-06-22 Accepted : 2021-08-17 Published : 2022-03-01

Keywords: کلروفیل, مخمر, محلول گلجایی, پلی فنل اکسیداز, آنزیم های آنتی اکسیدانی, شناسایی سویه باکتری,

Abstract :

کاربرد نور آبی در مرحله پس از برداشت گل­های شاخه بریده روشی جدید جهت بهبود عمر گلجایی است. از این­رو پژوهش حاضر با هدف بررسی اثر مدت زمان­های مختلف تابش نور آبی (6، 12، 18 و 24 ساعت) و تیمار پالس نانوسیلور (5، 10، 15 و 20 میلی­گرم در لیتر)  بر عمر گلجایی و صفات وابسته به آن در گل­های شاخه بریده آلسترومریا رقم ’ناپولی‘ اجرا شد. از  ساکارز 3 درصد به­عنوان تیمار شاهد استفاده شد. این آزمایش در قالب طرح کاملا تصادفی در سه تکرار اجرا شد. نتایج نشان داد که بیشترین عمر گلجایی متعلق به تیمارهای 10 میلی­گرم در لیتر نانوسیلور (66/22 روز) است که از نظر آماری با تیمارهای 12 ساعت نور آبی (00/22 روز) و 20 میلی­گرم در لیتر نانوسیلور (66/21 روز) تفاوت معناداری نداشت. کمترین کاهش وزن تر به­ترتیب با کاربرد 18 و 12ساعت نور آبی و 10 میلی­گرم در لیتر نانوسیلور بدست آمد. بیشترین درصد ماده خشک (34/57 درصد) با کاربرد 10 میلی­گرم در لیتر نانوسیلور بدست آمد. گل­هایی که به مدت 12 ساعت با نور آبی تیمار شدند دارای بیشترین میزان کلروفیل a و b (به­ترتیب با 52/2 و 27/1 میلی­گرم در هر گرم وزن تر)، بیشترین فعالیت آنزیم کاتالاز (26/5 نانومول در هر گرم وزن تر در دقیقه) و کمترین فعالیت آنزیم پلی­فنل اکسیداز (007/0 میکرومول در هر گرم وزن تر در دقیقه) بودند. کمترین باکتری محلول گلجایی با کاربرد 15 میلی­گرم در لیتر نانوسیلور و بیشترین پروتئین گلبرگ با کاربرد 24 ساعت نور آبی حاصل شد. نانوسیلور در کنترل و مهار باکتری­های گرم منفی و نور آبی در کنترل و مهار باکتری­های گرم مثبت در محلول گلجایی موثر بودند. با توجه به نتایج می­توان نور آبی را به­عنوان یک عامل فیزیکی موثر در حفظ عمر گلجایی و صفات وابسته به آن در گل­های شاخه بریده آلسترومریا رقم ’ناپولی‘ معرفی کرد.

References:

Alferez, F., Liao, H.L. and Burns, J.K. 2012. Blue light alters infection by Penicillium digitatum in tangerines. Postharvest Biology and Technology, 63: 11–15.

Beers, R.F. and Sizer, I. 1952. A spectrophotometric method for measuring the breakdown of hydrogen by catalase. Journal of Biological Chemistry, 195: 133 - 140

Blankenship, S. and Dole, J.M. 2003. 1–methylcyclo-propene: A review. Postharvest Biology and Technology, 28: 1-25.

Brady, C.J. 1988. Nucleic acid and protein synthesis. In: Senescence and aging in plants. Academic Press, San Diego, pp. 281-328.

Chanasut, U., Rogers, H.J., Leverenttz, M.K., Griffiths, G., Thomas, B., Wagstaff, C. and Stead, A.D. 2003. Increasing flower longevity in Alstroemeria. Postharvest Biology and Technology, 29: 324-332.

Choi, H.G., Moon, B.Y. and Kang, N.J. 2015. Effects of LED light on the production of strawberry during cultivation in a plastic greenhouse and in a growth chamber. Scientia Horticulturae, 189: 22–31.

Dashtbany, Sh., Hashemabadi, D. and Sedaghat hoor, Sh. 2015. Study on interaction effects of mechanical and geranium essential oil treatments on vase life of cut chrysanthemum (Dendranthema grandiflorum L.). Journal of Ornamental Plants, 5 (2): 97-103.

Dubravina, G.A., Zaytseva, S.M. and Zagoskina, N.V. 2005. Changes in formation and localization of phenolic compounds in the tissues of European and Canadian yew during differentiation in vitro. Russian Journal of Plant Physiology, 52: 672-678.

Edrisi, B. 2009. Postharvest physiology of cut flowers. Payam-e Digar Publication. Arak, Iran. 150 pages. (in Persian).

Elgimabi, M.N. and Ahmed, O.K. 2009. Effects of bactericide and sucrose pulsing on vase life of rose cut flowers (Rosa hybrida L.). Botany Research International, 2 (3): 164-168.

Ershad Langroudi, M., Hashemabadi, D., Kalate Jari, S. and Asadpour, L. 2019.  Effects of silver nanoparticles, chemical treatments and herbal essential oils on the vase life of cut alstroemeria (Alstroemeria ‘Summer Sky’) flowers. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, DOI: 10.1080/14620316.2019.1657786.

Fazlalizadeh, B., Naghshiband Hassani., R., Zaare-Nahandi, F. and Alizadeh-Salteh, S. 2013. Effect of essential oils of cinnamon, clove and silver nanoparticls on vase-life of cut alstroemeria cv. ‘Jamaica’ flowers. Iranian Journal of Horticultural Sience and Technology, 14 (2): 179-192.

Ferrante, A., Hunter, D.A., Hackett, W.P. and Reid, M.S. 2002. Thidiazuron a potent inhibitor of leaf senescence in alstroemeria. Postharvest Biology and technology, 25: 333-338.

Gong, D., Cao, S., Sheng, T., Shao, J., Song, C., Wo, F., Chen, W. and Yang, Z. 2015. Effect of blue light on ethylene biosynthesis, signaling and fruit ripening in postharvest peaches. Scientia Horticulturae, 1-8.

Halvey, A.H. and Mayak, S. 2003. Senescence and postharvest physiology of cut flower. Part 2. Horticultural Reviews, 3: 59-146.

Hashemabadi, D. 2014. The role of silver nano-particles and silver thiosulfate on the longevity of cut carnation (Dianthus caryophyllus) flowers. Journal of Environmental Biology, 35: 661–666.

Hassanpour Asil, M. and Karimi, M. 2010. Efficiency of benzyladenine reduced ethylene production and extended vase life of cut Eustoma flowers. Plant Omics Journal, 3(6): 199-203.

Jerzy, M., Zakrzewski, P. and Schroeter-Zakrzewska, A. 2011. Effect of color of light on the opening of inflorescence buds and post-harvest longevity of pot chrysanthemums (Chrysanthemum X grandiflorum (Ramat.) Kitam). Acta Agrobotanica, 64 (3): 13–18.

Kumar, N., Pal, M., Singh, A., Kumar Sairam, R. and Srivastava, G.C. 2010. Exogenous proline alleviates oxidative stress and increase vase life in rose (Rosa hybrida L. ‘Grand Gala’). Scientia Horticulturae, 127: 79-85.

Lentini, Z., Mussell, H., Mutschler, M.A. and Earle, E.D. 1988. Ethylene generation and reversal of ethylene effects during development in vitro rapid-cycling Brassica campestris L. Plant Science, 54: 75-81.

Lerslerwong, L., Ketsa, S. and van Doorn, W.G. 2009. Protein degradation and peptidase activity during petal senescence in Dendrobium cv. Khao Sanan. Postharvest Biology and Technology, 52: 84–90.

Li, H., Li, H., Liu, J., Luo, Z., Joyce, D. and He, S. 2017. Nano-silver treatments reduced bacterial colonization and biofilm formation at the stem-ends of cut gladiolus ‘Eerde’ spikes. Postharvest Biology and Technology, 123: 102–111.

Liao, H.L., Alferez, F. and Burns, J.K. 2013. Assessment of blue light treatments on citrus postharvest diseases. Postharvest Biology and Technology, 81: 81–88.

Lin, C.T. 2000. Plant blue-light receptors. Trends in Plant Science, 5: 337–342.

Lin, S., Li, H., Xian, X., Lin, X., Pang, Z., Liu, J. and He, S. 2019a. Nano-silver pretreatment delays wilting of cut gardenia foliage by inhibiting bacterial xylem blockage. Scientia Horticulturae, 246: 791–796.

Lin, X., Li, H., Lin, S., Xu, M., Liu, J., Li, Y. and He, S. 2019b. Improving the postharvest performance of cut spray ‘Prince’ carnations by vase treatments with nano-silver and sucrose. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 1-10. DOI: 10.1080/14620316.2019.1572461.

Liu, J., Zhang, Z., Joyce, D.C., He, S., Cao, J. and Lv, P. 2009. Effect of postharvest nanosilver treatments on cut flowers. Acta Horticulturae, 847: 245-250.

Liu, J.P., Zhang, Z.Q., Li, H.M., Xian, X.J., Huang, X.M. and He, S.G. 2014. Nano-silver treatments alleviated bacterial blockage in cut carnation stems. Acta Horticulturae Sinica, 41: 131–138.

Maneerung, T., Tokura, S. and Rujiravanit, R. 2008. Impregnation of silver nanoparticles into bacterial cellulose for antimicrobial wound dressing. Carbohydrate Polymer, 72: 43-51.

Mazumdar, B.C. and Majumder, K. 2003. Methods on physcochemical analysis of fruits. University College of Agriculture, Calcutta University, 136-150.

Mortazavi, S.N., Naderi, R., Khalighi, A., Babalar, M. and Allizadeh, H. 2007. The effect of cytokinin and calcium on cut flower quality in rose (Rosa hybrida cv. Illona). Journal of Food, Agriculture and Environment, 5: (3–4): 1459-0263.

Mutui, T.M., Emongor, V.E. and Hutchinson, M.J. 2006. The effects of gibberellin⁴⁺⁷ on the vase life and flower quality of Alstroemeria cut flowers. Plant Growth Regulation, 48: 207-214.

Naing, A.H., Win, N.M., Han, J.S., Lim, K.B. and Kim, C.K. 2017. Role of nano-silver and the bacterial strain enterobacter cloacae in increasing vase life of cut carnation ‘Omea’. Frontiers in Plant Science, 8: 1-12.

Navarro, E., Baun, A., Behra, R., Hartman, N.B., Filser, J., Miao, A.J., Quigg, A., Santschi, P.H. and Sigg, L. 2008. Environmental behavior and Eco toxicity of engineered nanoparticles to algae, plants, and fungi. Ecotoxicology, 17: 372– 386.

Nicoli, M.C., Elizable, B.E., Piotti, A. and Lerici, C.R. 1991. Effect of sugar and maillard reaction products on polyphenol oxidase and peroxidase activity in food. Journal of Food Biochemistry, 15: 169-184.

Ohe, M., Rapolu, M., Mieda, T., Miyagawa, Y., Yabuta, Y., Yoshimura, K. and Shigeoka, S. 2005. Decline in leaf photo oxidative stress tolerance with age in tobacco. Plant Science, 168: 1487-1493.

Palma, J.M., Sandalio, L.M., Corpas, F.J., Romero, M.C., McCarthy, I., Río, Xiao Zheng, L. and Huang, B., 2002. Cytokinin Effects on creeping bentgrass response to heat stress: Leaf senescence and antioxidant metabolism. Dep. Of Botany and Microbiology, University of Oklahoma, Crop Science, 42: 466-472.

Poudel, P.R., Kataoka, I. and Mochioka, R. 2008. Effect of red and blue light emitting diodes on growth and morphogenesis of grapes. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 92: 147–153.

Sedaghathoor, S. 2015. Effect of wall colors and nanosilver treatment on the vase life of cut carnation "Express". Journal of Ornamental Plants, 5 (1): 1-6.

Shi, L.Y., Cao, S.F., Chen, W. and Yang, Z.F. 2014. Blue light induced anthocyanin accumulation and expression of associated genes in Chinese bayberry fruit. Scientia Horticulturae, 179: 98–102.

Solgi, M., Kafi, M., Taghavi, T. and Naderi, R. 2009. Essential oils and silver nano particles (SNP) as novel agents to extend vase life of gerbera (Gerbera jamesonii cv. ‘Dune’) flowers. Postharvest Biology and Technology, 53: 155-158.

Solgi, M., Kafi, M., Taghavi, T., Naderi, R., Eyre, J.X. and Joyce, D.C. 2011. Effects of silver nanoparticles (SNP) on Gerbera jamesonii cut flowers. International Journal of Postharvest Technology and Innovation, 2 (3): 274-285.

Sood, S. and Nagar, P.K. 2003. The effect of polyamines on leaf senescence in two diverse rose species. Plant Growth Regulation, 39: 155–160.

Tanazad, M., Sharifi-Sirchi, G.R., Mirzaalian-Dastjerdi, A.M. and Yousefzadi, M. 2016. Improvment of stability traits and enzyme activities in Diana carnation (Dianthus caryophyllus L.) cut flower in preservative solutions. Journal of Plant Research (Iranian journal of biology), 29 (1): 43-53.

van Doorn, W.G. 2012. Water relations of cut flowers: An update. Horticultural Reviews, 40: 55–106.

van Doorn, W.G. and Stead, A.D. 1997. Abscission of flowers and floral parts. Journal of Experimental Botany, 48 (4): 821-837.

Xia, Q.H., Zheng, L.P., Zhao, P.F. and Wang, J.W. 2017. Biosynthesis of silver nanoparticles using Artemisia annua callus for inhibiting stem-end bacteria in cut carnation flowers. Nanobiotechnology, 11: 185–192.

Xu, F., Shi, L., Chen, W., Cao, S., Su, X. and Yang, Z. 2014. Effect of blue light treatment on fruit quality, antioxidant enzymes and radical-scavenging activity in strawberry fruit. Scientia Horticulturae, 175: 181-186.

Yuan, Z., Deng, L., Yin, B., Yao, S. and Zeng, K. 2017. Effects of blue LED light irradiation on pigment metabolism of ethephon degreened mandarin fruit. Postharvest Biology and Technology, 134: 45–54.

Zagory, D. and Reid, M. S. 1986. Role of vase solution microorganisms in the life of cut flowers. American Society for Horticultural Science, 111: 154-158.

Zhao, D., Cheng, M., Tang, W., Liu, D., Zhou, S., Meng, J. and Tao, J. 2018. Nano-silver modifies the vase life of cut herbaceous peony (Paeonia lactiflora Pall.) flowers. Protoplasma, 1-13. https://doi.org/10.1007/s00709-018-1209-1.