ازدیاد درون شیشه ای گل شاخه بریده Muscari armeniacum Leichtl. ex Bak. از مسیر تکثیر مستقیم سوخک
Subject Areas : Journal of Ornamental Plantsعمر فاروق 1 , Md Shahinozzaman 2 , مصطفی آزاد 3 , محمد امین 4
1 - Plant Tissue Culture Laboratory, Department of Botany, University of Rajshahi, Rajshahi-6205, Bangladesh
2 - Plant Tissue Culture Laboratory, Department of Botany, University of Rajshahi, Rajshahi-6205, Bangladesh| The United Graduate School of Agricultural Sciences, Kagoshima University, Japan
3 - Plant Tissue Culture Laboratory, Department of Botany, University of Rajshahi, Rajshahi-6205, Bangladesh
4 - Plant Tissue Culture Laboratory, Department of Botany, University of Rajshahi, Rajshahi-6205, Bangladesh
Keywords: گیاه زینتی, ریزازدیادی, تکثیر مستقیم سوخک, Muscari armeniacum,
Abstract :
Muscari armeniacum یکی از مهمترین گلهای شاخه بریده در صنعت گلکاری است که بومی جنوب اروپا، شمال افریقا و غرب آسیا است. در این مطالعه ریز نمونههایی از پیاز (طبق حاوی مریستم) و فلسهای پیاز و قطعات برگی تهیه و در محیط کشت MS با تنظیم کنندههای مختلف رشد کشت شدند و مسیرهای مختلف اندامزایی درون شیشهای مطالعه شد. نتایج نشان داد که سیتوکنین در ترکیب با اکسین برای باززایی پیازچههای جانبی و نابجا مورد نیاز است. ترکیب بنزیل آدنین (BA)، آلفا نفتالین استیک اسید (NAA)، اثرات چشمگیری در مقابسه با سایر تیمارها داشت. 4 میکرومول BA + 2 میکرومول NAA برای تشکیل پیازچه جانبی از قطعات پیاز، بهترین تیمار بود. همچنین قطعات پیاز و برگ بهترین پاسخ را در باززایی پیازچه نابجا در کاربرد همزمان BA + NAA نشان دادند. در بین غلظتهای مختلف BA و NAA، 4 میکرومول BA + یک میکرومول NAA برای باززایی پیازچه نابجا بهترین تیمار بود. پیازچههایی که به خوبی از سیستمهای پرآوری جانبی و نابجا جداسازی شده بودند، حداکثر درصد ریشهزایی روی محیط کشت 2/1 MS با 2 میکرومول IBA (ایندول بوتیریک اسید) را داشتند. البته غلظت بالاتر همه اکسینها یا در انتهای شاخساره (پایین شاخساره) کالوس تشکیل داد یا ریشههای ناهنجار و بدشکل بدنیا آورد. گیاهچههای باززایی شده بهصورت دورن شیشهای، بهصورت موفقیتآمیز در شرایط محیطی معمولی در خاک باغچه بومی شده و نرخ زندهمانی آنها 60 درصد بود.
Apurva, P. and Thakur, P.C. 2009. Somatic embryogenesis and root proliferation from internode of Anthocephalus cadamba in vitro. Asian Journal of Experimental Sciences, 23: 99–102.
Basalma, D., Uranbey, S., Mirici, S. and Kolsarici, O. 2008. TDZ × IBA induced shoot regeneration from cotyledonary leaves and in vitro multiplication in safflower (Carthamus tinctorius L.). African Journal of Biotechnology, 7 (8): 960–966.
Bisswas, M.K., Dutt, M., Roy, U.K., Islam, R. and Hossain, M. 2009. Development and evaluation of in vitro somaclonal variation in strawberry for improved horticulture traits. Amsterdam, International Society for Horticultural Science, 122: 409–416.
Jevremovic, S., Subotic, A., Trifunovic, M. and Nikolic, M. 2009. Plant regeneration of Southern Iris adriatic by somatic embryogenesis. Archives of Biological Sciences Belgrade, 61: 413–418.
Koroch, A., Juliani, H.R., Kapteyn, J. and Simon, J.E. 2002. In vitro regeneration of Echinacea purpurea from leaf explants. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 69: 79–83.
Nasircilar, A., Mirici, S., Karagu, Z.O., Eren, O. and Baktir, I. 2011. In vitro propagation of endemic and endangered Muscari mirum from different explant types. Turkish Journal of Botany, 35: 37–43.
Ozel, C.A., Khawar, K.M. and Unal, F. 2007. In vitro axillary bulblet regeneration of Turkish yellow grape hyacinth (Muscari macrocarpum Sweet) from twin scale explants. Research Journal of Agriculture and Biological Sciences, 3: 924–929.
Ozel, C.A., Khawar, K.M. and Unal, F. 2015. Factors affecting efficient in vitro micropropagation of Muscari muscarimi Medikus using twin bulb scale. Saudi Journal of Biological Sciences, 22: 132–138.
Robinson, J.P., Britto, S.J. and Balakrishnan, V. 2009. Regeneration of plants through somatic embryogenesis in Emilia zeylanica C.B. Clarke a potential medicinal herb. Botany Research International, 2: 36–41.
Sudersan, C. and Aboel-Nil, M. 2002. Somatic embryogenesis of Strut’s pea (Swainsona formosa). Current Science, 83 (9): 1074-1076.
Suzuki, S. and Nanako, M. 2001. Organogenesis and somatic embryogenesis from callus cultures in Muscari armeniacum. Leichtl. Ex Bak. In vitro Cellular and Developmental Biology,37: 382–387.
Uranbey, S. 2010. In vitro bulblet regeneration from immature embryos of Muscari azureum. African Journal of Biotechnology, 9: 5121–5125.
Uranbey, S. 2011. In vitro bulblet regeneration from immature embryos of endangered andendemic Muscari azureum.African Journal of Biotechnology, 63 (1): 209–215.
Uranbey, S., Cocu, S., Sancak, C., Parmaksiz, I., Khawar, K.M., Mirici, S. and Ozcan, S. 2003. Efficient adventitious shoot regeneration system in Cicer milkvetch. Biotechnology and Biotechnological Equipment, 17: 33–37.
Uzun, S., Parmaksız, I., Uranbey, S., Miric, S., Sarıhan, E.U., Ipek, A., Kaya, M.D., Gurbuz, B., Arslan, N. and Sancak, C. 2014. In vitro micropropagation from immature embryos of the endemic and endangered Muscari muscarimi Medik. Turkish Journal of Biology, 38: 83–88.
Wang, S., Yang, F., Jiu, L., Zhang, W., Zhang, W., Tian, Z. and Wang, F. 2013. Plant regeneration via somatic embryogenesis from leaf explants of Muscari armeniacum. Biotechnology and Biotechnological Equipment, 27: 4243–4247.
Yucesan, B.B., Feride, C. and Ekrem, G. 2014. Somatic embryogenesis and encapsulation of immature bulblets of an ornamental species, grape hyacinths (Muscari armeniacum Leichtlin ex Baker). Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 38: 716–722.