Abstract :
آلودگیهای میکروبی درون شیشهای، یکی از مهمترین مشکلات در فرایندکشت بافت گیاهان میباشند. تلاشهای اولیه جهت ریزازدیادی Dionysia tapetodes که یک گیاه زیبای بالشتکی صخرهای در شمال شرق ایران میباشد، منجر به صد درصد آلودگی ریزنمونهها گردید. از این رو مطالعه حاضر به منظور ارائه پروتکل مؤثر ضدعفونی سطحی ریزنمونههای گیاه دیونیزیا با استفاده از مواد ضدعفونی کننده مختلف مانند هیپوکلریت سدیم، اتانول و کلرید جیوه در غلظتها و زمانهای مختلف صورت گرفت. مؤثرترین روش ضدعفونی که منجر به دستیابی به 6/91 درصد ریزنمونههای سالم گردید با استفاده از کلرید جیوه با غلظت 1/0 درصد به مدت 4 دقیقه بدست آمد، البته این ماده در غلظتهای بالاتر ( 2/0 درصد) برای بافتهای گیاه حالت سمیت نشان داد و منجر به نکروزه شدن بافت ریزنمونهها به میزان 66/41 درصد گردید. همچنین علیرغم اینکه هیپوکلریت سدیم به عنوان یک ماده ضدعفونی کننده عمومی در کشت بافت شناخته شده است، این ماده به اندازه کلرید جیوه در حذف آلودگیهای میکروبی در ریزنمونههای گیاه دیونیزیا مؤثر نبود و استفاده از آن در غلظت 3 درصد و به مدت 15 دقیقه در فرایند ضدعفونی باعث بروز 75 درصد آلودگی میکروبی در ریزنمونهها شد. در مجموع در مطالعه حاضر یک روش بهینه جهت ضدعفونی ریزنمونه های D. tapetodes و دسترسی به گیاهان عاری از بیماری این گیاه ارائه گردید که این امر میتواند فرایند ریزازدیادی گیاه دیونیزیا را در آینده تسهیل نماید.
References:
Barampuram, S., Allen, G. and Krasnyanski, S. 2014. Effect of various sterilization procedures on
the in vitro germination of cotton seeds. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 118: 179-185.
Daniels, S.J. 1994. The physiology of Dionysa aretiodes during micropropagation. Durham University.
Dychdala, G.R. 1991. Chlorine and chlorine compounds. p. 133-135. In: S.S. Block (ed.), Disinfection,
sterilization, and preservation. 4
th
edn. Lea & Febiger, Philadelphia.
Goyal, D. and Bhadauria, S. 2006. In vitro propagation of Ceropegia bulbosa using nodal segments.
Indian Journal of Biotechnology, 5(4): 565-567.
Islam, S., Dewan, M., Mukul, M., Hossain, M. and Khatun, F. 2010. In vitro regeneration of Anthurium
andreanum cv. ʻNittaʼ. Bangladesh Journal of Agricultural Research, 35(2): 217-226.
Jalali, N., Naderi, R., Teixeira da Silva, J.A., Babalar, M. and Mirmasoumi, M. 2010. Influence of
salt concentration of media and plant growth regulator combination on callus formation and
somatic embryogenesis of Cyclamen persicum Mill. Floriculture and Ornamental Biotechnology,
4(1): 84-87.
Jamzad, Z. 1999. Flora of Iran no. 25: Primulaceae. Research Institute of Forests and Rangelands. Tehran.
Joseph, D., Martin, K., Madassery, J. and Philip, V. 2003. In vitro propagation of three commercial
cut flower cultivars of Anthurium andraeanum Hort. Indian Journal of Experimental Biology,
41(2): 154-159.
Khan, M.R., Rashid, H. and Quraishi, A. 2002. Development of aseptic protocols in olive (Olea
europaea L.) cv. Pendollino. Asian Journal of Plant Sciences, 1(3): 220-221.
Kocak, M., Izgu, T., Sevindik, B., Tutuncu, M., Curuk, P., Simsek, O., Kacar, Y.A., Teixeira da Silva,
J.A. and Mendi, Y.Y. 2014. Somatic embryogenesis of Turkish Cyclamen persicum Mill. Scientia
Horticulturae, 172: 26-33.
Kumari, S., Desai, J. and Shah, R. 2011. Callus mediated plant regeneration of two cut flower cultivars
of Anthurium andraeanum. Journal of Applied Horticulture, 13(1): 37-41.
Lidén, M. 2007. The genus "Dionysia (Primulaceae)", a synopsis and five new species. Willdenowia,
37(1): 37-61.
Morozowska, M. and Wesołowska, M. 2004. In vitro clonal propagation of Primula veris L. and
preliminary phytochemical analysis. Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica, 46, 169-175.
Naderi, R., Jalali, N., Babalar, M. and Mirmasoumi, M. 2011. Estimate of callus induction and somatic
embryogenesis in Cyclamen. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 4(11):
699-702.
Niedz, R. and Bausher, M. 2002. Control of in vitro contamination of explants from greenhouse
and field-grown trees. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant, 38(5): 468-471.
Patel, A., Phulwaria, M., Rai, M., Gupta, A., Shekhawat, S. and Shekhawat, N. 2014. In vitro propagation
and ex vitro rooting of Caralluma edulis (Edgew.) Benth. and Hook. f.: An endemic and endangered
edible plant species of theThar Desert. Scientia Horticulturae, 165: 175-180.
Saxena, S. 1990. In vitro propagation of the bamboo (Bambusa tulda Roxb.) through shoot proliferation.
Plant Cell Reports, 9 (8): 431-434.
Schween, G. and Schwenkel, H.G. 2002. In vitro regeneration in Primula spp. via organogenesis.
Plant Cell Reports, 20 (11): 1006-1010.
Tiwari, S., Arya, A. and Kumar, S. 2012. Standardizing sterilization protocol and establishment of
callus culture of sugarcane for enhanced plant regeneration in vitro. Research Journal of Botany,
7(1): 1-7.
Valant-Vetschera, K. M., Bhutia, T. D. and Wollenweber, E. 2010. Chemodiversity of exudate
flavonoids in Dionysia (Primulaceae): A comparative study. Phytochemistry, 71(8): 937-947.
Yadav, K., Aggarwal, A. and Singh, N. 2012. Actions for ex situ conservation of Gloriosa superba
L.-an endangered ornamental cum medicinal plant. Journal of Crop Science and Biotechnology,
15(4): 297-303.
