توسعه تشکیل اتصال پیوند و مشاهدات بافت شناسی در کاکتوس تحت تاثیر بنزیل آدنین، روش پیوند و پایه
Subject Areas : Journal of Ornamental Plants
نجمه
کمال زاده
1
(گروه باغبانی، واحد کرج، دانشگاه آزاد اسلامی، کرج، ایران)
سید مهدی
میری
2
(گروه باغبانی، واحد کرج، دانشگاه آزاد اسلامی، کرج، ایران)
نوشین
قاضی جهانی
3
(گروه میکروبیولوژی، واحد کرج، دانشگاه آزاد اسلامی، کرج، ایران)
Keywords: پیوند, سیتوکینین, بافت شناسی, تشکیل کالوس, کاکتوس,
Abstract :
ارقام جذاب و رنگارنگی از کاکتوس توسعه پیدا کرده اند که عمدتا از طریق پیوند تکثیر می­شوند. هدف از این مطالعه تعیین فرایند بافت شناسی در طی تشکیل اتصال پیوند در کاکتوس Gymnocalycium تحت تأثیر کاربرد BA (بنزیل آدنین)، روش پیوند و پایه بود. ابتدا بخش انتهایی پیوندک­ها و بالایی پایه­ها در غلظت­های 0، 100 و 500 میلی­گرم در لیتر محلول BA به مدت 10 ثانیه غوطه­ور شدند، سپس پیوندک­ها به روش افقی یا گوه­ای روی پایه­های Lemaireocereus marginatus و Myrtillocactus geometrizans پیوند زده شدند. برش­های طولی از محل پیوند بطور هفتگی برای مشاهده روند تشکیل پیوند تهیه شد. پایه­ها تاثیر معنی­داری در موفقیت پیوند و رشد پیوندک نداشتند، در حالی که میزان موفقیت پیوند درGymnocalycium هایی که بطور افقی پیوند شده بودند بهتر بود. میزان گیرایی پیوند و رشد پیوندک با استفاده از BA در مقایسه با شاهد افزایش یافت و بهترین نتیجه با تیمار سطح پیوندک و پایه با 100 میلی گرم در لیتر BA بدست آمد. مشاهدات بافت­شناسی نشان داد که فرآیند اتصال پیوند شامل توسعه یک لایه نکروز نازک، تشکیل کالوس در خط اتصال پیوند، تمایز کامبیوم و آغازش عناصر آوندی جدید، توسعه بافت آوندی جدید و اتصال دسته های آوندی پیوندک و پایه می­باشد. BA باعث تکثیر سریع بافت کالوس بین پیوندک و پایه و همچنین تمایز عناصر آوندی گردید. روش پیوند افقی و استفاده از BA (100 میلی­گرم در لیتر) بر روی سطوح برش خورده پیوندک و پایه به­عنوان یک روش آسان و قابل اعتماد برای اتصال پیوند موفق در کاکتوسGymnocalycium پیشنهاد می­گردد که ممکن است در تولید تجاری سایر گونه­های کاکتوس نیز استفاده بالقوه داشته باشد.
Arteca, R.N. 1996. Plant growth substances. Springer, Dordrecht.
Aruna, P. and Mangaiyarkarasi, R. 2020. Grafting studies in ornamental cacti. The Pharma Innovation Journal, 9 (3): 38-40.
Bach, D. 1981. The double-cut technique for grafting cacti to Trichocereus pachanoi rootstock. Desert Plants, 3 (1): 10-12.
Cabahug, R.A.M., Nam, S.Y., Lim, K.B., Jeon, J.K. and Hwang, Y.J. 2018. Propagation techniques for ornamental succulents. Flower Research Journal, 26 (3): 90-101.
Cary, D.J. 2008. The effects of benzyladenine on ornamental crops. M.Sc Thesis of Horticultural Science, North Carolina State University.
Couto, M.F., Peternelli, L.A. and Barbosa, M.H. 2013. Classification of the coefficients of variation for sugarcane crops. Ciência Rural, 43 (6): 957-961.
Driver, J. and Kuniyuki, A. 1984. In vitro propagation of Paradox walnut rootstock. HortScience, 19 (4): 507-509.
Erwin, J. 2009. Cacti: Studies on introducing a new group of ornamental plants. Acta Horticulturae, 813: 359-364.
Estarda-Luna, A.A., López-Peralta, C. and Cárdenas-Soriano, E. 2002. In vitro micrografting and the histology of graft union formation of selected species of prickly pear cactus (Opuntia spp.). Scientia Horticulturae, 92: 317-27.
Ezan, J., Hadavi, E. and Miri, S.M. 2016. Improving the bud take rate in conventional patch budding of Persian walnut by applying a paste of the DKW semi-solid medium enriched with plant growth regulators. Acta Horticulturae, 1109: 133-136.
Farsi, M., Fatahi Moghadam, M.R., Zamanim Z. and Hassani, D. 2018. Effects of scion cultivar, rootstock age and hormonal treatment on minigrafting of Persian walnut. International Journal of Horticultural Science and Technology, 5 (2): 185-197.
Jeong, M.I., Chao, C.H. and Lee, J.M. 2004. Production and breeding of cacti for grafting in Korea. Chronica Horticultural, 44 (3): 7-10.
Hartmann, H.T., Kester, D.E., Davies, F.T., Geneve, R.L. and Wilson, S.B. 2020. Plant propagation: Principles and practices. Pearson, USA.
Hunt, D. 2016. CITES cactaceae checklist. Royal Botanic Gardens, UK.
Hurst, J. 2016. Development of grafting protocols for salt-tolerant cactus pear (Opuntia ficus-indica). M.Sc Thesis of Plant Science, California State University.
Köse, C. and Güleryüz, M. 2006. Effects of auxins and cytokinins on graft union of grapevine (Vitisvinifera). New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science, 34 (2): 145-150.
Lee, J.M. and Oda, M. 2003. Grafting of herbaceous vegetable and ornamental crops. p. 61-124. In: J. Janick (ed.), Horticultural Reviews, vol. 28. John Wiley & Sons, New York.
Miri, S.M. and Roughani, A. 2018. Factors affecting tissue culture success in ornamental crops, I. Medium composition. 2nd International and 3rd National Congress on Flower and Ornamental Plants, Mahallat, Iran, 23-25 October.
Melnyk, C.W. 2017. Plant grafting: Insights into tissue regeneration. Regeneration (Oxford, England), 4(1): 3-14.
Melnyk, C.W. and Meyerowitz, E.M. 2015. Plant grafting. Current Biology, 25 (5): R183-R188.
Panea, T., Ungur, I., Panea, I., Varga, N.V. and Mihaiescu, T.C. 1998. The stimulation of callus formation of graft vines cuttings with Romanian bioregulator Calovit. Acta Horticulturae, 463: 185-190.
Pérez-Molphe-Balch, E., Santos-Díaz, M.D.S., Ramírez-Malagón, R. and Ochoa-Alejo, N. 2015. Tissue culture of ornamental cacti. Scientia Agricola, 72 (6): 540-561.
Pilbeam, J. 1995. Gymnocalycium: A collector’s guide. A.A. Balkema, Rotterdam, Netherlands.
Rahimi, M., Vedadi, C., Naserian, B., Majd, F., Miri, S.M., Rahmani, E. and Neahan, N. 2012. Studies of different sucrose, BAP and 2,4-D concentration on shoot tip grafting responses in tangerine. 3rd Iranian Agricultural Biotechnology Conference, Mashhad, Iran, 3-5 September.
Sharma, A. and Zheng, B. 2019. Molecular responses during plant grafting and its regulation by auxins, cytokinins, and gibberellins. Biomolecules, 9 (9): 397. doi: 10.3390/biom9090397.
Shimomura, T. and Fujihara, N. 1976. Histological observations on graft union formation in cactus. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science, 44 (4): 402-408.
Wang, Y.Q. 2011. Plant grafting and its application in biological research. Chinese Science Bulletin, 56: 3511-3517.
