بخش بندی پروتئین خام و تولید گاز در سیلاژهای یونجه عمل‌آوری شده با عصاره محصولات فرعی پسته در شرایط آزمایشگاه

Subject Areas : Camel

ا.  مختارپور ¹ (Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran)
ع.ع.  ناصریان ² (Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran)
ر.  ولی‌زاده ³ (Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran)
م.  دانش مسگران ⁴ (Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran)
ف.  پورملایی ⁵ (Agricultural Jihad Organization of Khorasan Razavi, Mashhad, Iran)

Received: 2014-04-07 Accepted : 2014-07-31 Published : 2015-06-01

Keywords: پروتئین خام, پلی اتیلن گلیکول, تولید گاز, محصولات فرعی پسته, ارزش زیستی تانن,

Abstract :

به منظور بررسی بخش­های مختلف پروتئین خام و تولید گاز در شرایط آزمایشگاه در سیلاژهای یونجه عمل‌آوری شده با سطوح مختلف عصاره محصولات فرعی پسته و ارزیابی ارزش زیستی تانن­های آن، دو آزمایش انجام شد. محصولات فرعی پسته با نسبت 1:5 (وزن به حجم) به مدت 12 ساعت در آب خیسانده شدند. پس از صاف کردن و تغلیظ، عصاره خام به علوفه تازه یونجه اضافه شد تا به ترتیب سطوح 1، 2 و 3 درصد ماده خشک یونجه، تانن به دست آید و سپس به مدت 60 روز سیلو شدند. چهار تیمار به این ترتیب بود؛ سیلاژ یونجه بدون عمل‌آوری با عصاره محصولات فرعی پسته، به عنوان شاهد (T0)، اضافه کردن تانن محصولات فرعی پسته در سطح 1 درصد (T1)، 2 درصد (T2) و 3 درصد ماد خشک (T3). عمل‌آوری سیلاژ یونجه، میزان ترکیبات نیتروژنه غیر پروتئینی را کاهش و بخش B2 را در طی سیلو شدن، افزایش داد. تولید گاز تجمعی پس از 96 ساعت انکوباسیون، قابلیت هضم ماده آلی (OMD) و انرژی قابل متابولیسم (ME) در تیمار T2 و T3 در مقایسه با تیمار شاهد کاهش پیدا کرد. میزان تولید گاز و اسیدهای چرب کوتاه زنجیر (SCFA) در سیلاژهای عمل‌آوری شده در حضور پلی اتیلن گلیکول (PEG) افزایش یافت که نشان می­دهد وجود ترکیبات فنولی و تانن­ها باعث کاهش تولید گاز شد. می­توان نتیجه گرفت که عمل‌آوری سیلاژ یونجه با عصاره محصولات فرعی پسته از طریق ممانعت میکروبی، می­تواند منجر به کاهش هدرروی نیتروژن در طی سیلو شدن و کاهش تجزیه پذیری ماده آلی شود.

References:

Albrecht K.A. and Muck R.E. (1991). Proteolysis in ensiled forage legumes that vary in tannin concentration. Crop Sci. 31, 464-469.
AOAC. (2005). Official Methods of Analysis. 18^th Ed. Association of Official Analytical Chemists, Arlington, VA, USA.
Broderick G.A. (1995). Performance of lactating dairy cows fed either alfalfa silage or alfalfa hay as the sole forage. J. Dairy Sci. 78, 320-329.
Getachew G., Makkar H.P.S. and Becker K. (2002). Tropical browses: contents of phenolic compounds, in vitro gas production and stoichiometric relationship between short chain fatty acid andin vitro gas production. J. Agric. Sci. 139, 341-352.
Getachew G., Pittroff W., Putnam D.H., Dandekar A., Goyal S., and De Peters E.J. (2008). The influence of addition of gallic acid, tannic acid, or quebracho tannins to alfalfa hay onin vitro rumen fermentation and microbial protein synthesis. Anim. Feed Sci. Technol. 140, 444-461.
Givens D.I. and Rulquin H. (2004). Utilisation by ruminants of nitrogen compounds in silage-based diets. Anim. Feed Sci. Technol. 114, 1-18.
Guo X., Zhou H., Yu Z. and Zhang Y. (2007). Changes in the distribution of nitrogen and plant enzymatic activity during ensilage of lucerne treated with different additives. Grass Forage Sci. 62, 35-43.
Henderson N. (1993). Silage additives. Anim. Feed Sci. Technol. 45, 35-56.
Krishnamoorthy U., Muscato T.V., Sniffen C.J. and Van Soest P.J. (1982). Nitrogen fractions in selected feedstuffs. J. Dairy Sci. 65, 217-225.
Kumara Mahipala M.B.P., Krebs G.L., McCafferty P. and Gunaratne L.H.P. (2009). Chemical composition, biological effects of tannin and in vitro nutritive value of selected browse species grown in the west Australian Mediterranean environment. Anim. Feed Sci. Technol. 153, 203-215.
Licitra G., Hernandez T.M. and Van Soest P.J. (1996). Standardization of procedures for nitrogen fractionation of ruminant feeds. Anim. Feed Sci. Technol. 57, 347-358.
Makkar H.P.S. (2000). Quantification of Tannins in Tree Foliage. A Laboratory Manual for the FAO/IAEA Co-ordinated Research Project on Use of Nuclear and Related Techniques to Develop Simple Tannin Assays for Predicting and Improving the safety and Efficiency of Feeding Ruminants on Tanniniferous Tree Foliage. Joint FAO/IAEA, FAO/IAEA of Nuclear Techniques in Food and Agriculture. Animal Production and Health Sub-program, FAO/IAEA Working Document. IAEA, Vienna, Austria.
Makkar H.P.S., Blümmel M. and Becker K. (1995). In vitro effects and interactions of tannins and saponins and fate of tannins in rumen. J. Sci. Food Agric. 69, 481-493.
Makkar H.P. (2005). In vitro gas methods for evaluation of feeds containing phytochemicals. Anim. Feed Sci. Technol. 123, 291-302.
Mcsweeny C.S., Palmer B., McNeill D.M. and Krause D.O. (2001). Microbial interaction with tannin: nutritional consequences for ruminants. Anim. Feed Sci. Technol. 91, 83-93.
Menke K.H. and Steingass H. (1988). Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and gas production using rumen fluid.Anim. Res. Dev. 28, 7-55.
Min B.R., Barry T.N., Attwood G.T. and McNabb W.C. (2003). The effect of condensed tannins on the nutrition and health of ruminants fed fresh temperate forages: a review. Anim. Feed Sci. Technol. 106, 3-19.
Mokhtarpour A., Naserian A.A., Valizadeh R., Danesh Mesgaran M. and Pourmollae F. (2014). Extraction of phenolic compounds and tannins from pistachio by-products. Annu. Rev. Res. Biol. 4, 1330-1338.
Ørskov E.R. and McDonald I. (1979). The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. J. Agric. Sci. 92, 499-503.
Osuga I.M., Abdulrazak S.A., Ichinohe T., Ondiek J.O. and Fujihara T. (2006). Degradation characteristics and tannin bioassay of some browse forage from Kenya harvested during the dry season. Anim. Sci. J. 77, 414-421.
Provenza F.D., Burritt E.A., Perevolotsky A. and Silanikove N. (2000). Self-regulation of intake of polyethylene glycol by sheep fed diets varying in tannin concentrations. J. Anim. Sci. 78, 1206-1212.
SASInstitute. (2001). SAS^®/STAT Software, Release 9.1. SAS Institute, Inc., Cary, NC. USA.
Tabacco E., Borreani G., Crovetto G.M., Galassi G., Colombo D. and Cavallarin L. (2006). Effect of chestnut tannin on fermentation quality, proteolysis and protein rumen degradability of alfalfa silage. J. Dairy Sci. 89, 4736-4746.
Theodorou M.K.,Williams B.A., Dhanoa M.S., McAllan A. and France J. (1994). A simple gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminant feeds. Anim. Feed Sci. Technol. 48, 185-197.
Van Soest P.J., Robertson J.B. and Lewis B.A. (1991). Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber and non starch polysaccharides in relation to animal nutrition. J. Dairy Sci. 74, 3583-3597.
Yanez Ruiz D.R., Moumen A., Martın Garcıa A.I. and Molina Alcaide E. (2004). Ruminal fermentation and degradation patterns, protozoa population, and urinary purine derivatives excretion in goats and wethers fed diets based on two-stage olive cake: effect of PEG supply. J. Anim. Sci. 82, 2023-2032.
Yousef Elahi M., Rouzbehan Y. and Rezaee A. (2012). Effects of phenolic compounds in three oak species onin vitro gas production using inoculums of two breeds of indigenous Iranian goats. Anim. Feed Sci. Technol. 176, 26-31.