تأثیر سانتریفیوژ و سطوح مختلف لیسیتین سویا بر کیفیت اسپرم بعد از فرایند انجماد-یخ‌گشایی در قوچ قزل
Subject Areas : Camel
م. شمس‌الهی
1
(
Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
)
ح. دقیق‌کیا
2
(
Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
)
غ. مقدم
3
(
Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
)
ا. تقی‌زاده
4
(
Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tabriz, Tabriz, Iran
)
Keywords: اسپرم, انجماد-یخ‌گشایی, سانتریفیوژ, لیسیتین سویا,
Abstract :
هدف از این مطالعه تعیین اثر سانتریفیوژ و سطوح مختلف لیسیتین سویا بر کیفیت اسپرم بعد از فرایند انجماد-یخ‌گشایی در قوچ قزل بود. نمونههای منی از پنج رأس قوچ قزل بالغ، دو بار در هفته و به مدت سه هفته اخذ گردید. پس از ارزیابی اولیه نمونه‌ها و تأیید آنها، نمونه‌ها با هم مخلوط شده و سپس به مقادر مساوی تقسیم شدند. سه نمونه منی در دمای C˚30 به بافر تریس اضافه شده و پس از سانتریفیوژ شدن پلاسما منی آنها حذف گردید. بعد از سانتریفیوژ کردن و حذف مایع رویی، نمونه‌ها با رقیق‌کننده تریس- سیترات- فروکتوز همراه با سطوح مختلف لیسیتین سویا (1، 5/1 و 2 درصد (حجم/وزن)) و 7 درصد گلیسرول رقیق شده و باقیمانده نمونههای سانتریفیوژ نشده با 5/1 درصد لیسیتین سویا رقیق‌سازی شدند. سپس نمونه‌ها تا دمای C˚ 5 سرد شده و در پایوت‌های 25/0 میلی‌لیتری فرانسوی منجمد شدند. برای ارزیابی نمونه‌ها در دمای C˚ 37 و در حمام آب گرم ذوب شدند. نتایج حاصل از افزودن سطوح مختلف لیسیتین سویا نشان داد که تحرک کل (TM) و پارامترهای حرکتی نظیر میانگین سرعت در مسیر (VAP)، سرعت در مسیر مستقیم (VSL)، سرعت در مسیر منحنی (VCL) و تحرک عرضی سر (ALH) و درصد اسپرماتوزوا با آکروزوم یکپارچه به طور معنی‌داری در گروه دارای 5/1 درصد لیسیتین سویا در مقایسه با سایر گروه‌های رقیق کننده بیشتر بود (05/0P<). تحرک کل و پارامترهای حرکتی (ALH، VCL، VSL، VAP) در گروه دریافت کننده 5/1 درصد لستین سویا بدون سانتریفیوژ نسبت به گروه‌های دریافت کننده 1، 5/1 و 2 درصد لستین سویا با سانتریفیوژ بیشتر بود (05/0P<). به طورکلی، نتایج نشان داد که افزودن 5/1 درصد لیسیتین سویا (با و بدون سانتریفیوژ ) تأثیر بهتری بر روی پارامترهای مورد ارزیابی اسپرم نسبت به سایر سطوح داشت.
Bucak M.N., Atessahin A., Varisli Ö., Yüce A., Tekin N. and Akcay A. (2007). Influence of trehalose, taurine, cysteamine and hyaluronan on ram semen microscopic and oxidative stress parameters after freeze thawing process, Theriogenology. 67, 1060-1067.
Chelucci S., Pasciu V., Succu S., Addis D., Leoni G.G. and Manca M.E. (2015). Soybean lecithin-based extender preserves spermatozoa membrane integrity and fertilizing potential during goat semen cryopreservation. Theriogenology. 83, 1064-1074.
Cross N.L. (2003). Decrease in order of human sperm lipids during capacitation. Biol. Reprod. 69, 529-534.
Futino D., Mendes M., Matos W., Mondadori R. and Lucci C. (2010). Glycerol, methyl-formamide and dimethyl-formamide in canine semen cryopreservation. Reprod. Domest. Anim. 45, 214-220.
Gadella B.M. and Harrison R.A. (2002). Capacitation induces cyclic adenosine 3', 5'-monophosphate dependent but apoptosis unrelated exposure of amino phospholipids at the apical head plasma membrane of boar sperm cells. Biol. Reprod. 67, 340-350.
Gil J., Söderquist L. and Rodríguez-Martínez H. (1999). Influence of centrifugation and different extenders on post-thaw sperm quality of ram sperm. Theriogenology. 54, 93-108.
Holt W.V. and North R.D. (1994). Effects of temperature and restoration of osmotic equilibrium during thawing on the induction of plasma membrane damage in cryopreserved ram spermatozoa. Biol. Reprod. 51, 414-424.
Purdy P.H. and Graham J.K. (2004). Effect of cholesterol-loaded cyclodextrin on the cryosurvival of bull sperm. Cryobiology. 48, 36-45.
Ritar A.J. (1993). Control of ovulation, storage of semen and artificial insemination of fibre-producing goats in Australia a review. Australian J. Exp. Agric. 33, 807-820.
Roostaei A.M.M., Mousavi M. and Ghadamyari M. (2015). Effect of seminal plasma proteins on membrane cholesterol efflux of ram epididymal spermatozoa. Small Rumin. Res. 129, 88-91.
Ruigh L., Bosch J.C., Brus M.C., Landman B. and Merton J.S. (2006). Ways to improve the biosecurity of bovine semen. Reprod. Domest. Anim. 41, 268-274.
Salmani H., Nabi M.M., Vaseghi-Dodaran H., Rahman M.B., Mohammadi-Sangcheshmeh A., Shakeri M., Towhidi A., ZareShahneh A. and Zhandi M. (2013). Effect of glutathione in soybean lecithin-based semen extender on goat semen quality after freeze-thawing. Small Rumin. Res. 112, 123-127.
SAS Institute. (2002). SAS®/STAT Software, Release 9.1. SAS Institute, Inc., Cary, NC. USA.
Thys M., Nauwynck H., Maes D., Hoogewijs M., Vercauteren D., Rijsselaere T., Favoreel H. and Van Soom A. (2009). Expression and putative function of fibronectin and its receptor (integrin a5b1) in male and female gametes during bovine Ram Semen Cryopreservation by Chemically Defined Extender 5 © 2013 Blackwell Verlag GmbH fertilization in vitro. Reproduction. 138, 471-482.
Upreti G.C., Hall E.L., Koppens D., Oliver J.E. and Vishwanath R. (1999). Studies on the measurement of phospholipase A2 (PLA2) and PLA2 inhibitor activities in ram semen. Anim. Reprod. Sci. 56, 107-121.
Ustuner B., Alçay S., Nur Z., Sag Rkaya H. and Soylu M.K. (2014). Effect of egg yolk and soybean lecithin on tris-based extender in post-thaw ram semen quality and in vitro fertility. Kafkas Univ. Vet. Fak. Derg. 20(3), 393-398.
Vidal A.H., Batista A.M., da Silva E.C.B., Gomes W.A., Pelinca M.A. and Silva S.V. (2013). Soybean lecithin-based extender as an alternative for goat sperm cryopreservation. Small Rumin. Res. 109, 47-51.
Waterhouse K.E., Hofmo P.O., Tverdal A. and Miller J.R. (2006). Within and between breed differences in freezing tolerance and plasma membrane fatty acid composition of boar sperm. Reproduction. 131, 887-894.
Zhang S.S., Hu J.H., Li Q.W., Jiang Z.L. and Zhang X.Y. (2009). The cryoprotective effects of soybean lecithin on boar spermatozoa quality. African J. Biotechnol. 8, 6476-80.
