مطالعه اثرات دوره سرمایی بر کیفیت اسپرم بزهای سانن و جاموناپاری
Subject Areas : Camel
تی. اسواراموهان
1
(
Department of Zoology, Faculty of Science, University of Jaffna, Jaffna, Sri Lanka
)
کا. نیلانی
2
(
Department of Zoology, Faculty of Science, University of Jaffna, Jaffna, Sri Lanka
)
پی. سورکا
3
(
Department of Zoology, Faculty of Science, University of Jaffna, Jaffna, Sri Lanka
)
پی. ماهادوان
4
(
Artificial Insemination Centre, Thirunelvely, Jaffna, Sri Lanka
)
ک. بالاسوبرامانیام
5
(
Bio Tec, Thirunelvely, Jaffna, Sri Lanka
)
Keywords: سرعت, زنده‌مانی, دوره سرمایی, منی بز, حرکت,
Abstract :
هدف از مطالعه حاضر آزمودن اثرات دوره سرمایی بر کیفیت منی بزهای سانن و جاموناپاری بود. منی نژادهای بز با استفاده از واژن مصنوعی جمع‌آوری و در دمای 5 تا 9 درجه سانتی‌گراد سرد شد. حجم، رنگ و pH منی تازه تعیین شد. پس از رقیق‌سازی، آزمایش میکروسکپی از نظر تحرک پیشرونده و زنده‌مانی اسپرم صورت گرفت. منی رقیق شده دو نژاد به وسیله آزمایش میکروسکپی از روز 0 تا 3 سرمادهی مورد مقایسه قرار گرفت. هموسایتومتر جهت ارزیابی شمار اسپرم‌ها با استفاده از 10 میکرولیتر منی بارگذاری شد. از رنگ‌آمیزی ائوزین (1 درصد) برای تخمین اسپرم‌های زنده استفاده شد. گرچه زنده‌مانی و سرعت حرکت اسپرم‌های دو نژاد بز به طور وابسته به زمان در طی سرمادهی کاهش یافت (05/0>P)، زنده‌مانی بین بزهای سانن و جاموناپاری به طور معنی‌دار تفاوت نداشت. در هر‌حال، تفاوت معنی‌داری برای میانگین‌های سرعت حرکت اسپرم مشاهده شد (05/0>P). تحرک پیشرونده و زنده‌مانی به طور تدریجی در طی سرمادهی در 5 تا 9 درجه سانتی‌گراد کاهش داشت. به منظور کسب نرخ موفق بالاتر تلقیح، باید منی سرمادهی شده بز برای دامداران در طی یک روز فراهم شود.
Abeygunawardena H., Alexander P.A.B.D. and Abeygunawardena I.S. (2001). Artificial insemination of cattle in Sri Lanka: status, performance and problems. Animal Production and Health Section International Atomic Energy Agency, Vienna, Austria.
Aitken R.J. (1990). Motility Parameters and Fertility. Pp. 285-302 in Controls Sperm Motility: Biological and Clinical Aspects. C. Gagnon, Ed. Boca Raton: CRC Press.
Budsworth P.R., Amann R.P. and Chapman P.L. (1988). Relationship between computerized measurements of motion of frozen-thawed bull spermatozoa and fertility. J. Androl. 9, 41-53.
Hidalgo M., Rodriguez I. and Dorado J.M. (2007). The effect of cryopreservation on sperm head morphometry in Florida male goat related to sperm freezability. Anim. Reprod. Sci. 100, 61-72.
Holt W.V. and North R.D. (1984). Partially irreversible cold-induced lipid phase transitions in mammalian sperm plasma membrane domains: freeze-fracture study. J. Exp. Zootech. 230, 473-483.
Iguer Ouada M. (2001). Medically assisted procreation in Canine species: analyses and 4 ˚C preservation of semen. Ph D Thesis. Univ. de Liège, Liège.
Kirk E.S., Squires E.L. and Graham J.K. (2005). Comparison of in vitro laboratory analyses with the fertility of cryopreserved stallion spermatozoa. Theriogenology. 64, 1422-1439.
Leboeuf B., Restall B. and Salamon S. (2000). Production and storage of goat semen for artificial insemination. Anim. Reprod. Sci. 62, 113-141.
Lopez A., Söderquist L. and Rodriquez-Martinez H. (1999). Sperm viability in ram semen diluted and stored in three different extenders. Acta. Vet. Scand. 40, 1-9.
Salamon S. and Robinson T.J. (1962). Studies on the artificial insemination of Merino sheep. II. The effects of semen diluents and storage on lambing performance. Australian J. Agric. Res. 13, 271-281.
Sarma P.V., Reddy I.J. and Sarma P.A. (1996). Bovine spermatozoan motility behaviour in cervical mucus and its relationship to fertility. Indian J. Anim. Reprod. 17, 137-137.
Schindler H. and Amir D. (1961). Longevity of ram sperm in various diluents and different dilution rates. J. Agric. Sci. 56, 183-189.
Tardiff A.L., Farrell P.B., Trouern Trend V. and Foote R.H. (1997). Computer assisted sperm analysis for assessing initial semen quality and changes during storage at 5 ˚C. J. Dairy Sci. 80, 1606-1612.
Udeh I. and Oghenesode B. (2011). Effects of type of extender and storage conditions on the motility of goat spermatozoa. Int. J. Anim. Vet. Adv. 3(5), 282-286.
