تنوع ژنتیکی در ژن هورمون رشد و ارتباط بین الگوهای چند‌شکلی طول قطعه محدود (RFLP) و واریانس کمی صفات وزن زنده، وزن لاشه، رفتار، هتروفیل و لمفوسیت در بلدرچین ژاپنی

Subject Areas : Camel

ا. نصیری‌فر ¹ , م. طالبی ² , ع. اسمعیلی زاده ³ , ن. عسکری ⁴ , س.س. سهرابی ⁵ , ح. مرادیان ⁶

1 - Department of Animal Science, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran
2 - Department of Animal Science, Science and Research Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran
3 - استاد گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید باهنر کرمان، کرمان، ایران
4 - National Institute for Genetic Engineering and Biotechnology, Tehran, Iran
5 - Institute Science and High Technology and Environmental Science, Graduate University of Advanced Technology, Kerman, Iran
6 - Institute Science and High Technology and Environmental Science, Graduate University of Advanced Technology, Kerman, Iran

Received: 2016-09-20 Accepted : 2017-04-15 Published : 2018-03-01

Keywords: هورمون رشد, بلدرچین ژاپنی, هتروزیگوسیتی, شاخص اطلاعات شانون,

Abstract :

ژن هورمون رشد نقش اساسی در تنظیم رشد و متابولیسم دارد و منجر به همبستگی‌های بالقوه بین چند‌شکلی این ژن و صفات اقتصادی می‌شود. یک قطعه 776 جفت بازی درون ناحیه اینترون یک ژن هورمون رشد از 346 بلدرچین ژاپنی از جمعیت F2 تکثیر شد. محصول واکنش زنجیره‌ای پلیمراز با استفاده از آنزیم محدود کننده MspI مورد هضم آنزیمی قرار گرفت. آنالیز چند‌شکلی طول قطعه محدود (RFLP) سه جایگاه محدود که منجر به چهار قطعه محدود متفاوت می‌شود را نشان می‌دهد. چهار آلل مشخص (A، B، C و D) و چهار ژنوتیپ متفاوت (AA، AB، AC و AD) در این جمعیت شناسایی شدند. نتایج نشان دادند که جمعیت از تعادل هاردی واینبرگ انحراف دارد (05/0>P). هتروزیگوسیتی و شاخص اطلاعات شانون بدست آمده به ترتیب 720/0 و 560/0 بودند که نشان دهنده تنوع زیاد در این جمعیت بود. ارتباط معنی‌داری بین الگوی های (RFLP) و وزن زنده در چهار و پنج هفتگی، وزن لاشه، وزن سینه و نسبت ارگان‌های داخلی وجود داشت. وزن لاشه پرندگان AB کمتر از ژنوتیپپ‌های دیگر بود (05/0>P). این نتایج پیشنهاد می‌کند که ژن هورمون رشد می‌تواند به عنوان یک ژن کاندید برای انتخاب به کمک نشانگر برای بهبود عملکرد در بلدرچین ژاپنی استفاده شود.

References:

Abdel-Rahman S.M., Elmaghraby A.M. and Haggag A.S. (2015). Identification and differentiation among chicken's, duck's, quail's, rabbit's and turkey's meat using PCR-RFLP technique. Biotechnol. Anim. Husb. 31(1), 101-108.

Akbas Y., Takma C. and Yaylak E. (2004). Genetic parameters for quail body weights using a random regression model. South African J. Anim. Sci. 34, 104-109.

Amills M., Jiménez N., Villalba D., Tor M. and Molina E. (2003). Identification of three single nucleotide polymorphisms in the chicken insulin-like growth factor 1 and 2 genes and their associations with growth and feeding traits. Poult. Sci. 82, 1485-1493.

Ani A.O., Okeke G.C. and Emeh M.B. (2009). Response of growing Japanese quail (Cortunix cortunix japonica) chicks to diets containing different energy and protein levels. Pp. 328-331 in Proc. 34^th Ann. Conf. Nigerian Soc. Anim. Prod. Uyo, Nigeria.

Bakker R.J. (1974). Selection indices without economic weights for animal breeding. Canadian J. Anim. Sci. 54, 1-8.

Bozkaya F., Gürler S. and Yertürk M. (2013). Investigation on the polymorphism of some loci by using PCR-RFLP in Japanese quails (Coturnix coturnix japonica) raised in different locations of turkey. Kafkas Univ. Vet. Fak. Derg. 19(5), 761-766.

El-Bayomi K.M., El-Tarabany M.S., Asr M.A.F., Awad A. and Roushdy S.M. (2016). Detection of SNPs in growth hormone and insulin like growth factor -1 genes in two divergently selected lines of Japanese quail. Japanese J. Vet. Res. 64(2), 53-57.

Girish P.S., Anjaneyulu A.S., Viswas K.N., Shivakumar B.M., Anand M., Patel M. and Sharma B. (2005). Meat species identification by polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism (PCR-RFLP) of mitochondrial 12S rRNA gene. Meat Sci. 70(1), 107-112.

Hedrick P.W. (2000). Genetics of Populations. Jones and Bartlett Publishers, Arizona State Univ., USA.

Ip S.C., Zhang X. and Leung F.C. (2001). Genomic growth hormone gene polymorphisms in native Chinese chickens. Exp. Biol. Med. 226, 458-462.

Miller S.A., Dykes D.D. and Polesky H.F. (1988). A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. Nucleic Acids. Res. 16(3), 1215.

Mou L., Liu N., Zadworny D., Chalifour L. and Kuhnlein U. (1995). Presence of an additional Psti fragment in intron 1 of the chicken growth hormone-encoding gene. Gene. 160, 313-314.

Narinc D., Aksoy T. and Karaman E. (2010). Genetic parameters of growth curve parameters and weekly body weights in Japanese quails (Coturnix coturnix japonica). J. Anim. Vet. Adv. 9, 501-507.

Nie Q., Ip S.C., Zhang X., Leung F.C. and Yang G. (2002). New variations in intron 4 of growth hormone gene in Chinese native chickens. J. Hered. 93, 277-279.

Ruiz-Garcia I.J., Orozco Hernandez J.R., Navarro Aguilar J.P. and Uribe Gomez J.J. (2006). Intestine morphometry of the Coturnix coturnix japonica in relation with different levels of lysine in the feed. J. Anim. Vet. Adv. 5, 1143-1145.

Setiati N., Widianti T. and Mustikaningtyas D. (2014). Effect of divergent selection body weight to egg production during the six generation and GH gene polymorphism quail (Coturnix coturnix japonica). Pp. 123-128 in Proc 4^th Int. Conf. Math. Sci. Educ. Yogyakarta, Indonesia.

Shiina T., Hanzawa K., Mizutani M. and Watanabe S. (1995). RFLP analysis of Japanese quail's genomic DNA using chicken's MHC class I probe. Japanese Poult. Sci. 32, 415-419.

Shen X.J., Kimura M., Iwasawa A. and Nakamura T. (1999). PCR-RFLP analysis of cytochrome b (cyt b) inheritance in the wild-type strain and laboratory population of Japanese quail. Res. Bull. Fac. Agric. Gifu Univ. 64, 13-20.

Shen X.J., Kobayashi Y., Mizutani M. and Ito S. (2000). RFLP analysis of mitochondrial DNA in fourteen laboratory strains of Japanese quail. Anim. Sci. J. 71(2), 123-129.

Stock A.D. and Bunch T.D. (1982). The evolutionary implications of chromosome banding pattern homologies in the bird order Galliformes. Cytogen. Cell. Genet. J. 34, 136-148.

Vali N., Edriss M.A. and Rahmani H.R. (2005). Genetic parameters of body and some carcass traits in two quail strains. Int. J. Poult. Sci. 4, 296-300.

Vasilatos-Younken R., Zhou Y., Wang X., Mcmurtry J.P. and Rosebrough R.W. (2000). Altered chicken thyroid hormone metabolism with chronic GH enhancement in vivo: consequences for skeletal muscle growth. J. Endocrinol. 166, 609-620.

Wilson W., Ursnia O., Abbott K. and Abplanalp H. (1961). Evaluation of Coturnix (Japanese quail) as pilot animal for poultry breeding. Poult. Sci. 40, 651-657.

Yeh F.C., Yang R.C., Boyle T.B.J., Ye Z.H. and Mao J.X. (1997). POPGENE, the User Friendly Shareware for Population Genetic Analysis. Molecular Biology and Biotechnology Center. University of Alberta, Edmonton, Canada.