شناسایی کپک های اپی فیت برگ توت و اثر متابولیت ثانویه آنها روی استافیلوکوک اورئوس و مقایسه آن با ونکومایسین
محورهای موضوعی : میکروبیولوژی
فاطمه زهرا اسدی
1
,
عقیل تبارملاحسن
2
,
عیسی غلامپورعزیزی
3
*
1 - کارشناسی ارشد میکروبیولوژی، گروه علوم پایه واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران
2 - استادیار ایمنی شناسی، گروه علوم آزمایشگاهی، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران
3 - استادیار قارچ شناسی دامپزشکی، گروه دانشکده دامپزشکی، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران
کلید واژه: برگ توت, آسپرژیلوس, فوزاریوم, استافیلوکوک اورئوس, اپی فیت,
چکیده مقاله :
مقدمه: اخیرا به علت شیوع مقاومت آنتی بیوتیکی در باکتری ها توجه به متابولیت های بیولوژیکی به عنوان ترکیبات ضد میکربی جهت مهار آنها رو به رشد است. لذا در مطالعه حاضر به بررسی کپک های اپی فیت برگ توت و اثر متابولیت ثانویه آنها روی استافیلوکوک اورئوس پرداخته شده است.
مواد و روش: از سطح برگ توت قارچها جداسازی شده و اثر متابولیت آنها روی استافیلوکوک اورئوس با تعیین MIC و MBC و روش انتشار دیسک و چاهک مورد بررسی قرار گرفتند.
نتایج: از برگ توت آسپرژیلوس ترئوس و فوزاریوم شناسایی شدند. میانگین میزان MIC و MBC متابولیت آسپرژیلوس ترئوس روی استافیلوکوک اورئوس برابر500 میکرولیتر بر میلی لیتر و برای فوزاریوم به ترتیب 250 و 500 میکرولیتر بر میلی لیتر بدست آمد. مقادیر 20، 40 ، 60 و 80 میکرولیتر متابولیت در انتشار دیسک و 100، 150 و 200 لاندا در انتشار چاهک برای آسپرژیلوس ترئوس قطر هاله عدم رشد به ترتیب 17، 24، 28 و 30 ،31، 35 و 40 میلی متر ایجاد کرد و برای فوزاریوم با مقادیر مذکور قطر هاله عدم رشد به ترتیب 8، 11 ، 12 و 15 ،16، 18 و 20 میلی متر بدست آمد. قطر هاله عدم رشد ونکومایسین 22 میلی متر بدست آمد.
نتیجه گیری: قطر هاله عدم رشد متابولیت آسپرژیلوس ترئوس بالاتر از فوزاریوم می باشد و در مقایسه با آنتی بیوتیک ونکومایسین اثرات بالاتری نشان داد. بنابراین می تواند به عنوان ترکیب دارویی در مطالعات آینده مد نظر قرار گیرد.
Introduction: Recently, due to the prevalence of antibiotic resistance in bacteria, attention has been growing to biological metabolites as antimicrobial compounds to inhibit them. Therefore, in the present study, epiphytic molds of mulberry leaves and the effect of their secondary metabolites on Staphylococcus aureus were investigated.
Materials and Methods: Fungi were isolated from the mulberry leaf surface, and the effect of their metabolite on Staphylococcus aureus was investigated by determining MIC and MBC and the disk diffusion method.
Results: Aspergillus tereus and Fusarium were identified from mulberry leaves. The average MIC and MBC of Aspergillus tereus metabolite on Staphylococcus aureus was 500 μL/mL, and for Fusarium, it was 250 and 500 μL/mL, respectively.
The values of 20, 40, 60 and 80 microliters metabolite in disk diffusion and 100, 150 and 200 microliters in well diffusion for Aspergillus tereus produced the diameter of the growth inhibition zone of 17, 24, 28 and 30, 31, 35 and 40 mm, respectively, and for Fusarium with the mentioned values, the diameter of the growth inhibition zone was 8, 11, 12 and 15, 16, 18 and 20 mm, respectively. The diameter of the growth inhibition zone of vancomycin was 22 mm.
Conclusion: The diameter of the growth inhibition zone of the metabolite of Aspergillus tereus is higher than that of Fusarium and shows higher effects compared to the antibiotic vancomycin. Therefore, it can be considered as a pharmaceutical combination in future studies.
1. Ramessar K, Olaniran AO. Antibiogram and molecular characterization of methicillin-resistant Staphylococcus aureus recovered from treated wastewater effluent and receiving surface water in Durban, South Africa. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2019 Sep;35(9):142. Doi:10.1007/s11274-019-2715-9
2. Carey RB, Schuster MG, McGowan KL. Medical microbiology for the new curriculum: a case-based approach. John Wiley & Sons; 2011 Aug 16.
3. Wang Z, Liu J, Chen G, Feng X, Deng M, Mu D, Xu Q, Xu H. An integrated system using phenylboronic acid functionalized magnetic beads and colorimetric detection for Staphylococcus aureus. Food Control. 2022 Mar 1; 133:108633. DOI: 10.1016/j.foodcont.2021.108633
4. Ribeiro da Cunha B, Fonseca LP, Calado CR. Antibiotic discovery: where have we come from, where do we go? Antibiotics. 2019 Apr 24;8(2):45. Wang Z, Liu J, Chen G, Feng X, Deng M, Mu D, Xu Q, Xu H. An integrated system using phenylboronic acid functionalized magnetic beads and colorimetric detection for Staphylococcus aureus. Food Control. 2022 Mar 1; 133:108633. Doi:10.1016/j /10.3390/antibiotics8020045
5. Sergelidis D, Angelidis AS. Methicillin‐resistant Staphylococcus aureus: a controversial food‐borne pathogen. Letters in applied microbiology. 2017 Jun 1;64(6):409-18. Wang Z, Liu J, Chen G, Feng X, Deng M, Mu D, Xu Q, Xu H. An integrated system using phenylboronic acid functionalized magnetic beads and colorimetric detection for Staphylococcus aureus. Food Control. 2022 Mar 1; 133:108633. Doi:10.1016/j /10.1111/lam.12735
6. Cox RJ. Polyketides, proteins and genes in fungi: programmed nano-machines begin to reveal their secrets. Organic & biomolecular chemistry. 2007;5(13):2010-26. Wang Z, Liu J, Chen G, Feng X, Deng M, Mu D, Xu Q, Xu H. An integrated system using phenylboronic acid functionalized magnetic beads and colorimetric detection for Staphylococcus aureus. Food Control. 2022 Mar 1; 133:108633. Doi:10.1016/j 10.1039/b704420h
7. Strobel GA. Endophytes as sources of bioactive products. Microbes and infection. 2003 May 1;5(6):535-44. Wang Z, Liu J, Chen G, Feng X, Deng M, Mu D, Xu Q, Xu H. An integrated system using phenylboronic acid functionalized magnetic beads and colorimetric detection for Staphylococcus aureus. Food Control. 2022 Mar 1; 133:108633. Doi:10.1016/j /10.1016/s1286-4579(03)00073-x
8. Anwar J, Iqbal Z. Effect of growth conditions on antibacterial activity of Trichoderma harzianum against selected pathogenic bacteria. Sarhad Journal of Agriculture. 2017 Dec 31;33(4):501-10. Doi: 10.17582/journal.sja/2017/33.4.501.510
9. Khan AA, Bacha N, Ahmad B, Lutfullah G, Farooq U, Cox RJ. Fungi as chemical industries and genetic engineering for the production of biologically active secondary metabolites. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine. 2014 Nov 1;4(11):859-70. Doi: 10.12980/apjtb.4.2014apjtb-2014-0230
10. Oide S, Turgeon BG. Natural roles of nonribosomal peptide metabolites in fungi. Mycoscience. 2020;61(3):101-10. Doi: 10.1016/j.myc.2020.03.001
11. Bills GF, Stadler M. Editorial comment–discovery, distribution and biosynthesis of fungal secondary metabolites. Mycology. 2014 Jul 3;5(3):99-101. Doi:10.1080/21501203.2014.943929
12. Alavi M. Bacteria and fungi as major bio-sources to fabricate silver nanoparticles with antibacterial activities. Expert Review of Anti-infective Therapy. 2022 Jun 3;20(6):897-906. Doi:10.1080/14787210.2022.2045194
13. Tasdemir D, Scarpato S, Utermann-Thüsing C, Jensen T, Blümel M, Wenzel-Storjohann A, Welsch C, Echelmeyer VA. Epiphytic and endophytic microbiome of the seagrass Zostera marina: Do they contribute to pathogen reduction in seawater? Science of the Total Environment. 2024 Jan 15; 908:168422. Doi: 10.1016/j.scitotenv.2023.168422
14. Zeini F, Mahbod A, Emami M. Medical Mycology. 2th ed, 2004. Tehran University press.
15. Stracquadanio C, Quiles JM, Meca G, Cacciola SO. Antifungal activity of bioactive metabolites produced by Trichoderma asperellum and Trichoderma atroviride in liquid medium. Journal of Fungi. 2020 Nov 1;6(4):263. Doi:10.3390/jof6040263
16. Espinel-Ingroff A, Kerkering TM. Spectrophotometric method of inoculum preparation for the in vitro susceptibility testing of filamentous fungi. Journal of clinical microbiology. 1991 Feb;29(2):393-4. Doi: 10.1128/jcm.29.2.393-394.1991
17. Khoshal Z, Vaziri A, Rahbarian R. Green production of silver nanoparticles from Eryngium planum and its an-tibacterial effect on Escherichia coli and Staphylococcus aureus. Iranian Journal of Biological Sciences. Iranian Journal of Biological Sciences. 2023;17(4):77-92.
18. Humphries RM, Kircher S, Ferrell A, Krause KM, Malherbe R, Hsiung A, Burnham CA. The continued value of disk diffusion for assessing antimicrobial susceptibility in clinical laboratories: report from the clinical and laboratory standards institute methods development and standardization working group. Journal of clinical microbiology. 2018 Aug;56(8):10-128. Doi:10.1128/jcm.00437-18
19. Ghorbannia Delavar A., Qhasemi N., Onsinezhad M., Hashemi Karoii SM., Gholampour Azizi I. Anti-yeast comparative activities of aqueous and alcoholic extracts of black tea (Camellia sinensis) and grape seed (Vitis vinifera L.) on Malassezia pachydermatis (ATCC 10231) with that of the Clotrimazole. Iranian Journal of Biological Sciences. 2022; 17(1): 49-58. Doi:10.53555/sfs.v10i1.3184
20. Hussein ME, Mohamed OG, El-Fishawy AM, El-Askary HI, El-Senousy AS, El-Beih AA, Nossier ES, Naglah AM, Almehizia AA, Tripathi A, Hamed AA. Identification of antibacterial metabolites from endophytic fungus Aspergillus fumigatus, isolated from Albizia lucidior leaves (Fabaceae), utilizing metabolomic and molecular docking techniques. Molecules. 2022 Feb 8;27(3):1117. Doi:10.3390/molecules27031117
21. Deshmukh R, Mathew A, Purohit HJ. Characterization of antibacterial activity of bikaverin from Fusarium sp. HKF15. Journal of bioscience and bioengineering. 2014 1;117(4):443-8. Doi: 10.1016/j.jbiosc.2013.09.017
22. Bagheri Amrei, S. M., Tajik Ghanbari, M. A. and Ebrahim Ade, M. A. (1400). Isolation and identification of secondary metabolites (Fusarium equiseti) isolated from forest plants of the Alborz Mountains, 7th International Conference on Agriculture, Environment, Urban and Rural Development. [in persion].
23. Rani R, Sharma D, Chaturvedi M, Yadav JP. Antibacterial activity of twenty different endophytic fungi isolated from Calotropis procera and time kill assay. Clin Microbiol. 2017;6(3):280. Doi:10.4172/2327-5073.1000280
24. Xie F, Li XB, Zhou JC, Xu QQ, Wang XN, Yuan HQ, Lou HX. Secondary metabolites from Aspergillus fumigatus, an endophytic fungus from the liverwort Heteroscyphus tener (Steph.) Schiffn. Chem Biodivers. 2015 Sep;12(9):1313-21. Doi: 10.1002/cbdv.201400317