تغییرات هیستوپاتولوژیک کلیه ماهی هامور معمولی (Epinephelus coioides) تحت تاثیر بنزوآلفاپایرن و باکتری (alginolyticus Vibrio)
محورهای موضوعی : بیماریهای دامهای بزرگ
کلید واژه: هیستوپاتولوژی, کلیه, Vibrio alginolyticus, : بنزوآلفاپایرن, ماهی هامور معمولی,
چکیده مقاله :
بنزوآلفاپایرن(BaP) از سمی ترین ترکیبات موجود در نفت خام است که با آلودگی اکوسیستم های آبی، موجب تضعیف سیستم ایمنی آبزیان و کاهش مقاومت آنها در برابر پاتوژن های فرصت طلب می شود. باکتری V. alginolyticus گونه ای از این پاتوژن های فرصت طلب است که در شرایط استرس زا، موجب بیماری ویبریوزیس در موجودات مختلف می گردد. به منظور بررسی تغییرات هیستوپاتولوژیک ناشی از تاثیر دو استرسور BaP و باکتری V. alginolyticus بر کلیه ماهی هامورمعمولی، تعداد 140 قطعه از این ماهیان به طور تصادفی در 7 تیمار قرار گرفتند و به مدت 16 روز بررسی شدند. در تیمار شاهد هیچ تزریقی انجام نشد، در تیمار کنترل حلال، فقط روغن نارگیل و در تیمار باکتری غلظت cfu/ml V. alginolyticus 107 تزریق شد. به تیمارهای 4 و 5 به ترتیب غلظت های mg/kg BaP20 و 200 و به تیمارهای 6 و 7 به ترتیب ( mg/kg BaP20+ cfu/ml V. alginolyticus107) و (mg/kg BaP200+ cfu/ml V. alginolyticus107) تزریق شد. نمونه برداری از بافت کلیه در روزهای 1،7،4 و 14 صورت گرفت و پس از انجام مراحل بافت شناسی، بافت های مذکور در زیر میکروسکوپ نوری بررسی شدند. در تیمارهای مختلف ضایعاتی نظیر تشکیل مراکز ملانوماکروفاژی، نفوذ لوکوسیتی، افزایش فضای ادراری، جداشدن غشای پایه از اپی تلیوم لوله های کلیوی، اتساع مویرگ های گلومرولی و خونریزی مشاهده گردید. نتایج نشان داد که با افزایش غلظت بنزوآلفاپایرن وسعت و شدت ضایعات افزایش می یابد. از طرفی بیشترین ضایعات مربوط به تیمارهای ترکیبی و به ویژهmg/kg + BaP200باکتری در روز هفتم آزمایش بود. به طوری که نداشتن سازمان یافتگی بافتی، تجمع مراکز ملانوماکروفاژی و خونریزی شدید در این تیمارها مشاهده گردید.
منابع:
1- سلطانی، م. 1376. بیماری های باکتریایی ماهی. انتشارات سازمان دامپزشکی کشور با همکاری موسسه نشر جهاد وابسته به جهاد کشاورزی. صفحه21تا23، 175 تا 188.
2- موحدی نیا، ع. 1388. مکانیسم های تنظیم اسمزی در ماهی شانک (Acanthopagrus latus). (مطالعه اکوفیزیولوژیکی، بافت شناختی و فراساختاری آبشش). پایان نامه دکتری رشته بیولوژی دریا گرایش جانوران دریا. دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر.112 صفحه.
3- Aas, E., Beyer, J and Goksoyr, A., 2000. Fixed wavelength fluorescence (FF) of bile as a monitoring tool for polyaromatic hydrocarbon exposure in fish: an evaluation of compound specificity, inner filter effect and signal interpretation. Biomarkers, 5(1), 9-23.
4- Arkoosh, M. R., Casillas, E., Clemons, E., Kagley, A. N., Olson, R., Reno, P and Stein, J. E., 1998. Effect of pollution on fish diseases: potential impacts on salmonid populations. Journal of Aquatic Animal Health, 10(2), 182-190.
5- Assadi, H., and Dehghani, R., 1997. Atlas of the Persian Gulf and the Sea of Oman fishes. Iranian Fisheries Research Organization Publication, Tehran, 226p.
6- Buttgereit, F., Burmester, G. R and Brand, M. D., 2000. Bioenergetics of immune functions: fundamental and therapeutic aspects. Immunology today, 21(4), 194-199.
7- Carlson, E. A., Li, Y and Zelikoff, J. T., 2002. Exposure of Japanese medaka (Oryzias latipes) to benzo [a] pyrene suppresses immune function and host resistance against bacterial challenge. Aquatic Toxicology, 56(4), 289-301.
8- Deane, E. E., Li, J and Woo, N. Y., 2004. Modulated heat shock protein expression during pathogenic Vibrio alginolyticus stress of sea bream. Diseases of aquatic organisms, 62(3), 205-215.
9- Giari, L., Simoni, E., Manera, M and Dezfuli, B. S., 2008. Histo-cytological responses of Dicentrarchus labrax (L.) following mercury exposure. Ecotoxicology and environmental safety, 70(3), 400-410.
10- Grundy, M. M., Ratcliffe, N. A and Moore, M. N., 1996. Immune inhibition in marine mussels by polycyclic aromatic hydrocarbons. Marine Environmental Research, 42(1-4), 187-190.
11- Haaparanta, A., Valtonen, E. T., Hoffmann, R and Holmes, J., 1996. Do macrophage centres in freshwater fishes reflect the differences in water quality?. Aquatic Toxicology, 34(3), 253-272.
12- Hannam, M. L., Bamber, S. D., Galloway, T. S., Moody, A. J and Jones, M. B., 2010. Effects of the model PAH phenanthrene on immune function and oxidative stress in the haemolymph of the temperate scallop Pecten maximus. Chemosphere, 78(7), 779-784.
13- Holt, J., Hothem, S., Howerton, H., Larson, R and Sanford, R., 2005. 9, 10-Phenanthrenequinone photoautocatalyzes its formation from phenanthrene, and inhibits biodegradation of naphthalene. Journal of environmental quality, 34(2), 462-468.
14- Kakkar, P. H., Saxena, R. M., Rathee, N. S and Joshi, M., 2011. Water soluble fraction of diesel fuel induced histopathological alterations in the liver of Channa punctatus. Toxicology international, 18(1), 14.
15- Livingstone, D.R., Donkin, P and Walker, C.H., 1992. Pollutants in marine ecosystems: an overview. In: Walker, C.H., Livingstone, D.R. (Eds.), Persistent Pollutants in Marine Ecosystems. Pergamon, Setac special publication, Oxford, pp: 235–263.
16- Mohamed, F. A., 2009. Histopathological studies on Tilapia zillii and Solea vulgaris from Lake Qarun, Egypt. World Journal of Fish and Marine Sciences, 1(1), 29-39.
17- Nahrgang, J., Camus, L., Gonzalez, P., Goksøyr, A., Christiansen, J. S and Hop, H., 2009. PAH biomarker responses in polar cod (Boreogadus saida) exposed to benzo (a) pyrene. Aquatic Toxicology, 94(4), 309-319.
18- Oliveira, R. C., Fanta, E., Turcatti, N. M., Cardoso, R. J and Carvalho, C. S., 1996. Lethal effects of inorganic mercury on cells and tissues of Trichomycterus brasiliensis (Pisces; Siluroidei). Biocell: official journal of the Sociedades Latinoamericanas de Microscopia Electronica... et. al, 20(3), 171-178.
19- Prosser, C. M., Unger, M. A and Vogelbein, W. K., 2011. Multistressor interactions in the zebrafish (Danio rerio): Concurrent phenanthrene exposure and Mycobacterium marinum infection. Aquatic toxicology, 102(3), 177-185.
20- Suresh, N., 2009. Effect of cadmium chloride on liver, spleen and kidney melano macrophage centres in Tilapia mossambica. Journal of Environmental Biology, 30(4): 505-508.
21- Teh, S. J., Adams, S. M and Hinton, D. E., 1997. Histopathologic biomarkers in feral freshwater fish populations exposed to different types of contaminant stress. Aquatic Toxicology, 37(1), 51-70.
22- Thophon, S., Kruatrachue, M., Upatham, E. S., Pokethitiyook, P., Sahaphong, S and Jaritkhuan, S., 2003. Histopathological alterations of white sea bass, Lates calcarifer, in acute and subchronic cadmium exposure. Environmental Pollution, 121(3), 307-320.
23- Wang, C., Zhao, Y., Zheng, R., Ding, X., Wei, W., Zuo, Z and Chen, Y., 2006. Effects of tributyltin, benzo [a] pyrene, and their mixture on antioxidant defense systems in Sebastiscus marmoratus. Ecotoxicology and environmental safety, 65(3), 381-387.
24- Wang, X. H and Leung, K. Y., 2000. Biochemical characterization of different types of adherence of Vibrio species to fish epithelial cells. Microbiology, 146(4), 989-998
_||_