بررسي و تعيين الگوي مقاومت آنتي بيوتيکي Acinetobacter baumannii جدا شده از بيماران بستري در بيمارستان هاي تهران به روش PCR
پریسا مجدیان فر
1
(
کارشناسی ارشد، گروه میکروبیولوژي، دانشکده علوم و فناوري هاي نوین، علوم پزشکی تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
)
ستاره حقیقت
2
(
عضو هیئت علمی دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران پزشکی-دانشکده فناوری های نوین-گروه میکروب شناسی
)
farshad hashemian
3
(
department of clinical pharmacy, IAUPS, tehran, Iran
)
Bahareh Nowruzi
4
(
گروه بیوتکنولوژی، دانشکده علوم و فناوری¬های همگرا، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
)
کلید واژه: Acinetobacter baumannii, مقاومت به آنتي‌بيوتيک, آنتيبيوگرام, PCR,
چکیده مقاله :
چکيده سابقه و هدف: باکتري Acinetobacter baumannii يک پاتوژن فرصت طلب است که مسئول طيف وسيعي از عفونتهاي بيمارستاني است. اين باکتريها عوامل مختلفي را براي مقاومت در برابر آنتيبيوتيکهاي مختلف از جمله مقاومت در برابر بتالاکتامها، آمينوگليکوزيدها و تتراسايکلينها دارند. هدف از اين مطالعه تعيين الگوي حساسيت ضد ميکروبي و شيوع ژنهاي blaIMP4، blaCTX-M ،tetA و aadB در سويههاي A. baumannii به‌دست‌آمده از بيمارستانهاي امام خميني، بهمن، بوعلي و امير المومنين بود. مواد و روش¬ها: در اين مطالعه مقطعي، 100 ايزوله باليني Acinetobacter baumannii از بيمارستانهاي مختلف تهران جمعآوري شد. پس از شناسايي جدايههاي Acinetobacter baumannii توسط آزمون هاي بيوشيميايي، آزمايش حساسيت به آنتي‌بيوتيک (روش کربي-بائر) طبق توصيه CLSI 2021 در برابر 8 آنتي‌بيوتيک انجام شد. سرانجام، ژنهاي blaIMP4، blaCTX-M ،tetA و aadB در ميان جدايههاي مقاوم به آنتي‌بيوتيک با استفاده از PCR تعيين شدند. يافته¬ها: بر اساس نتايج انتشار ديسک،ميزان مقاومت 90% براي سيپروفلوکساسين، 32% سفتازيديم، 25% ايميپنم، 36% جنتامايسين، 34% استرپتومايسين، 28% پيپراسيلين، 5% پليميکسين B و 63% تتراسايکلين را نشان داد. همه جدايهها به کوليستين حساس بودند. PCR ژنهاي blaIMP4، blaCTX-M،tetA و aadB به ترتيب در 63%، 62%، 76% و 71% از ايزولههاي مقاوم شناسايي شد. نتيجه¬گيري: بطورکلي در اين مطالعه جدايههاي باليني A. baumannii داراي ژنهاي مقاومت به آنتي‌بيوتيک، شناسايي شد، شناسايي الگوهاي مقاومت به آنتي‌بيوتيک در A. baumannii و بررسي اپيدميولوژي مولکولي براي کنترل گسترش سريع سويههاي مقاوم بسيار مهم است
چکیده انگلیسی :
Abstract Aim and Background: Acinetobacter baumannii is an opportunistic bacterial pathogen responsible for a wide range of hospital-acquired infections. These bacteria take a variety of factors for resistance to different antibiotics, including resistance to β-lactams, aminoglycosides, and tetracyclines. The aims of this study were to determine the antimicrobial susceptibility pattern and prevalence of bla IMP4, bla CTX-M, tetA, and aadB genes in A. baumannii strains obtained from Imam Khomeini, Bahman, Bu-Ali, and Momenin hospitals. Material and Methods: In this cross-sectional study, 100 clinical Acinetobacter baumannii isolates were collected from various hospitals in Tehran. After the identification of Acinetobacter baumannii isolates by biochemical tests, the antibiotic susceptibility test (Kirby-Bauer method) was done according to CLSI 2021 advice against 8 antibiotics. Finally, the bla IMP4, bla CTX-M, tetA, and aadB genes were determined among the antibiotic-resistant isolates using PCR. Results: According to results, the disc diffusion results showed resistance rates of 90% for ciprofloxacin, 32% ceftazidime, 25% imipenem, 36% gentamicin, 34% streptomycin, 28% piperacillin, 5% polymyxin B and 63% tetracyclin. All isolates were susceptible to colistin. PCR results for bla IMP4, bla CTX-M, tetA, and aadB genes were detected in 63%, 62%, 76%, and 71% of resistant isolates respectively. Conclusion: This study detected clinical A. baumannii isolates harboring antibiotic resistance genes. Identification of antibiotic resistance patterns in A. baumannii and investigation of molecular epidemiology is critical to controlling the rapid spread of antimicrobial-resistant strains
1. Nguyen M, Joshi S. Carbapenem resistance in Acinetobacter baumannii, and their importance in hospital‐acquired infections: a scientific review. Journal of applied microbiology. 2021;131(6):2715-38.
2. López M, Blasco L, Gato E, Perez A, Fernández-Garcia L, Martínez-Martinez L, et al. Response to bile salts in clinical strains of Acinetobacter baumannii lacking the AdeABC efflux pump: virulence associated with quorum sensing. Frontiers in cellular and infection microbiology. 2017;7:143.
3. Wong D, Nielsen TB, Bonomo RA, Pantapalangkoor P, Luna B, Spellberg B. Clinical and pathophysiological overview of Acinetobacter infections: a century of challenges. Clinical microbiology reviews. 2017;30(1):409-47.
4. Viehman JA, Nguyen MH. Treatment options for carbapenem-resistant and extensively drug-resistant Acinetobacter baumannii infections. Drugs. 2014;74(12):1315-33.
5. Poirel L, Bonnin RA, Nordmann P. Genetic basis of antibiotic resistance in pathogenic Acinetobacter species. IUBMB life. 2011;63(12):1061-7.
6. Li F-J, Starrs L, Burgio G. Tug of war between Acinetobacter baumannii and host immune responses. Pathogens and disease. 2018;76(9):ftz004.
7. Yusuf I, Skiebe E, Wilharm G. Evaluation of CHROMagar Acinetobacter and MacConkey media for the recovery of Acinetobacter baumannii from soil samples. Letters in Applied Microbiology. 2023;76(2):ovac051.
8. Medioli F, Bacca E, Faltoni M, Burastero GJ, Volpi S, Menozzi M, et al. Is it possible to eradicate carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii (CRAB) from endemic hospitals? Antibiotics. 2022;11(8):1015.
9. Chang Y, Luan G, Xu Y, Wang Y, Shen M, Zhang C, et al. Characterization of carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii isolates in a Chinese teaching hospital. Frontiers in microbiology. 2015;6:910.
10. Liu Y, Liu X. Detection of AmpC β-lactamases in Acinetobacter baumannii in the Xuzhou region and analysis of drug resistance. Experimental and therapeutic medicine. 2015;10(3):933-6.
11. Aksoy MD, Çavuşlu Ş, Tuğrul HM. Investigation of metallo beta lactamases and oxacilinases in carbapenem resistant Acinetobacter baumannii strains isolated from inpatients. Balkan medical journal. 2015;32(1):79-83.
12. Shoja S, Moosavian M, Rostami S, Abbasi F, Tabatabaiefar MA, Peymani A. Characterization of oxacillinase and metallo-β-lactamas genes and molecular typing of clinical isolates of Acinetobacter baumannii in Ahvaz, South-West of Iran. Jundishapur journal of microbiology. 2016;9(5).
13. Khosroshahi SA, Farajnia S, Azhari F, Hosseini MK, Khanipour F, Farajnia H, et al. Antimicrobial Susceptibility Pattern and Prevalence of Extended-Spectrum β-Lactamase Genotypes among Clinical Isolates of Acinetobacter baumanii in Tabriz, North-West of Iran. Jundishapur Journal of Microbiology. 2017;10(6).
14. Hashemizadeh Z, Emami A, Rahimi M. Acinetobacter antibiotic resistance and frequency of ESBL-producing strains in ICU patients of Namazi Hospital (2008-2009). Journal of Inflammatory Diseases. 2010;14(2):47-53.
15. Peymani A, Nahaei M-R, Farajnia S, Hasani A, Mirsalehian A, Sohrabi N, et al. High prevalence of metallo-β-lactamase-producing Acinetobacter baumannii in a teaching hospital in Tabriz, Iran. Japanese journal of infectious diseases. 2011;64(1):69-71.
16. Sharif M. Molecular identification of TEM and SHV extended spectrum beta -lactamase in clinical isolates of Acinetobacter baumannii from Tehran hospitals. 2014.