بررسی اثر بی وزنی بر تکوین سیاهرگ مرکزی در کبد جنین رت و اثر درمانی اسید فولیک

محورهای موضوعی : زیست شناسی سلولی تکوینی گیاهی و جانوری ، تکوین و تمایز ، زیست شناسی میکروارگانیسم

پونه رحیمی نیا ¹ , شیوا نصیرایی مقدم ² , مهناز اذرنیا ³ , زهرا حاج ابراهیمی ⁴

1 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه ازاد إسلامی واحد تهران شمال، تهران، ایران
2 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه ازاد اسلامی واحد تهران شمال، تهران، ایران
3 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، تهران، ایران
4 - استادیار، پژوهشگاه هوا فضا. وزارت علوم تحقیقات و فناوری، تهران. ایران

تاریخ دریافت : 1396/09/08 تاریخ پذیرش : 1397/06/05 تاریخ انتشار : 1397/09/20

کلید واژه: کبد, موش صحرایی, جنین, بی­ وزنی, سیاهرگ مرکزی,

چکیده مقاله :

بی وزنی تاثیرات زیادی بر سیستم‌های فیزیولوژی بدن می‌گذارد که مطالعه آن هم برای کمک به فضانوردان و هم برای بهبود زندگی بشر بر روی زمین و پاسخ به سوالات زیست شناسی مفید است. هدف از مطالعه حاضر بررسی اثرات بی وزنی بر روی تکوین سیاهرگ مرکزی کبدی و مطالعه اثر دوز درمانگر اسید فولیک در جنین رت بود. رتها پس از بارداری به 5 گروه شامل گروه کنترل، گروه تجربی 1: اعمال بی وزنی در روزهای تکوین کبد (10 تا 15 بارداری)، گروه تجربی2: دریافت خوراکی اسیدفولیک در روزهای تکوین کبد، گروه تجربی 3: اعمال بی وزنی در کل دوره بارداری و گروه تجربی 4: اعمال بی وزنی و دریافت اسیدفولیک در روزهای تکوین کبدی تقسیم شدند. مدل بی‌وزنی پاهای عقبی به‌‌منظور شبیه‌سازی بی‌وزنی بر روی زمین اجرا شد. تمامی گروه‌ها در روز 20 بارداری جراحی و نمونه‌های بافتی با روش هماتوکسلین – ائوزین رنگ آمیزی و توسط میکروسکوپ نوری بررسی شدند. داده‌ها توسط نرم افزار SPSS و آنالیز واریانس یک طرفه و تست Tukey ارزیابی شدند. نتایج این مطالعه نشان داد که اعمال شرایط بی وزنی موجب غیرطبیعی و کشیده شدن شکل ظاهری سیاهرگ مرکزی می‌گردد، در حالی که مصرف اسید فولیک همزمان با اعمال بی وزنی اثر بهبودبخش چشمگیری را نشان می‌دهد. اما اسید فولیک به صورت پارامتری تنها و بدون اعمال شرایط بی وزنی موجب بهم ریختگی شکل ظاهری سیاهرگ مرکزی می‌گردد که نشان دهنده عدم نیاز استفاده از اسید فولیک در شرایط طبیعی می‌باشد.

چکیده انگلیسی:

Microgravity has many effects on the physiological systems. Studying these changes is useful to help astronauts, improve human life and to answer biology questions. The aim of present study was to investigate the impact of microgravity on the development of central vein in rat embryos and therapeatic effect of folic acid. Fertilization animals were randomly divided into five groups: control group, the first experimental group who were exposed to microgravity (days 10-15 of pregnancy), the second experimental group who received an edible daily dose of Folic acid (days 10-15 of pregnancy), the third experimental group who were exposed to microgravity (days 1-19.5 of pregnancy), the fourth experimental group who received Folic acid and exposed to microgravity (days 10-15 of pregnancy). Hindlimb unloading model was used to establish ground-based-model of microgravity. On the 20th day of pregnancy, the embryo was removed, fixed, stained using H&E, and studied under the microscope. Data analyzed using SPSS and One-way ANOVA and Tukey test. The results indicated that exposure to microgravity can produce abnormal central vein. Although folic acid consumption alone does not show a meaningful impact, its consumption combined with microgravity can improve central vein morphology that suggests no need for folic acid in normal condition.

منابع و مأخذ:

[1]     جون کوئیرا، ل.، کانیرو، خ، مترجم: منتظری، م، 1345، بافت شناسی پایه، تهران، انتشارات ارجمند

[2]    Barbera J.P.M., Rodriguez T.A., Greene N.D.E., Weninger W.J., Simeone A., Copp A.J. 2002, Folic acid prevents exencephaly in Cited2 deficient mice. Human Molecular Genetics. 11 (3): 283-293.

[3]    Buckey JC Jr, Lane L.D., Levine B.D., Watenpaugh D.E., Wright S.J., Moore W.E., et al. 1996, Orthostatic intolerance after spaceflight. J Appl Physiol. 81(1):7–18.

[4]    Collardeau‐Frachon, Sophie, and Jean‐Yves Scoazec. 2008. 'Vascular development and differentiation during human liver organogenesis', The Anatomical Record, 291: 614-27.

[5]    Deavers D.R., Musacchia X.J., Meininger G.A. 1980, Model for antiorthostatic hypokinesia: head-down

[6]    tilt effects on water and salt excretion. Apple Physiol Journal. 49:576–582.

[7]    De Benoist B. 2008, Conclusions of a who technical consultation on folate and vitamin B12 deficiencies. Food, nutr Bull. 29 (2 suppl): S 238-244.

[8]    Glover D.D., AmonkarM., Rybeck B.F., Tracy T.S. 2003, Prescription over - the- counter and herbal Medicine use in rural, obstetric population. Am, JobstetGynecol.188: 1039-1045.

[9]    Hargens A.R., Steskal J., Johansson C., Tipton C.M. 1984, Tissue fluid shift, forelimb loading, and tail tension in tail-suspended rats. Physiologist. 27(Suppl:): S37-S38.

[10]           Macho L., Ficková M., Zórad S., Serova L., Popova I. 1991, Plasma insulin levels and insulin receptors in liver and adipose tissue of rats after space flight. Physiologist 34(1 Suppl): S90–91.

[11] Malacinski G.M., Neff A.W., Alberts J.R., Souza K.A.1989.developmental Biology in Outer Space.Bioscience, 39 (5):314-320 

[12] Marsillach, J., Ferré N., Camps J., Riu F., Rull A., Joven J. 2008, Moderately high folic acid supplementation exacerbates experimentally induced liver fibrosis in rats. Experimental Biology and Medicine. 233(1): 38-47.

[13] Martel E., Champeroux P., Lacolley P., Richard S., Safar M., Cuche JL. 1996, Central hypervolemia in the conscious rat: a model of cardiovascular deconditioning. J Appl Physiol. 80(4):1390–1396.

[14] McDonald S.K., Goh M.S., Chong AH. 2011, Successful treatment of cyclosporine-induced sebaceous hyperplasia with oral isotretinoin in two renal transplant recipients. 52 (3) 227-30.

[15] Merrill Jr. A. H., Wang E., Jones D. P., Hargrove J. L. 1987, Hepatic function in rats after spaceflight: effects on lipids, glycogen, and enzymes. Am J Physiol. 252(2 Pt 2): R222–6.

[16] Morey-Holton E.R., Globus R.K. 2002, Hindlimb unloading rodent model: technical aspects. J Appl Physiol. 92(4):1367–77

[17] Morey-Holton E.R., Globus R.K., Kaplansky A., Durnova G. 2005, The hindlimb unloading rat model: literature overview, technique update and comparison with space flight data. Adv Space Biol Med. 10:7–40

[18] Rabot S., Szylit O.,Nugon-Baudon L., Meslin J. C., Vaissade P., Popot F., Viso M. 2000, Variations in digestive physiology of rats after short duration flights aboard the US space shuttle. Dig Dis Sci. 45: 1687–95.

[19] Racine R. N., Cormier S. M. 1992, Effect of spaceflight on rat hepatocytes: a morphometric study. J Appl Physiol. 73(2 Suppl): 136S–141S.

[20] Soliman, Maha E. 2009. Evaluation of the possible protective role of folic acid on the liver toxicity ınduced experimentally by methotrexate in adult male albino rats. Egypt J Histol. 32: 118-28.

[21] Sram R.J., Binkova B., Lnenickova Z., Solansky I., Dejmek J. 2005, The impact of plasma folate levels of mothers and newboms on intrauterine growth retardation and birth weight. Mutation Research /Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. 591(1-2): 302-10.

[22] Tuday E.C., Meck J.V., Nyhan D., Shoukas A.A., Berkowitz D.E. 2007, Microgravity-induced changes in aortic stiffness and their role in orthostatic intolerance. J Appl Physiol. 102(3):853–858.

[23] Watenpaugh D.E., Hargens A.R. 1996, The cardiovascular system in microgravity. in: Bethesda, editors. Handbook of physiology. Enviromental physiology. American Physiological Society.

[24] Wilkerson M.K., Lesniewski L.A., Golding E.M., Bryan R.M. Jr, Amin A., Wilson E., et al. 2005, Simulated microgravity enhances cerebral artery vasoconstriction and vascular resistance through endothelial nitric oxide mechanism. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 288(4):H1652–H1661.

[25] Yoffe B., Darlington G.J., Soriano H.E., Krishnan B., Risin D.,Pellis N.R., Khaoustov V.I. 1999, Cultures of human liver cells in simulated microgravity environment, Advances in Space Research. 24 (6): 829-836.

[26] Zhang L.F. 2001, Vascular adaptation to microgravity: what have we learned? J Appl Physiol. 91(6):2415–2430.