ارزیابی اثر حفاظتی روغن سیاه دانه بر بافت تخمدان در موش های تیمار شده با نانو ذرات نقره

محورهای موضوعی : زیست شناسی سلولی تکوینی گیاهی و جانوری ، تکوین و تمایز ، زیست شناسی میکروارگانیسم

سید محمدعلی شریعت زاده ¹ (گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه اراک، اراک، ایران)
مژگان خواجوی جعفرآباد ² (گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه اراک، اراک، ایران)

تاریخ دریافت : 1396/06/26 تاریخ پذیرش : 1397/02/29 تاریخ انتشار : 1396/12/01

کلید واژه: تخمدان, موش, نانوذرات نقره, استریولوژی, روغن سیاه دانه,

چکیده مقاله :

هدف: هدف از‌ این مطالعه بررسی اثر روغن سیاه دانه به‌عنوان یک آنتی‌اکسیدان کارآمد، بر بافت تخمدان در موش‌های بالغ تیمار‌شده با نانو ذرات نقره بود. مواد ‌و ‌روش‌ها: در این مطالعه موش‌های ماده بالغ نژاد NMRI به 4 گروه (6=n): کنترل، نانوذرات نقره (300 میلی‌گرم بر کیلوگرم در روز)، عصاره سیاه دانه(5 میلی لیتر بر کیلوگرم در روز) و نانو ذرات نقره + عصاره سیاه دانه تقسیم شد. تیمار دهانی تا 30 روز انجام گرفت.‌ بعد ‌از‌ تیمار، تخمدان‌ها خارج و برای ارزیابی‌ هیستولوژیکی پردازش شد. پارامترهای مورفومتریک بافت تخمدان با استفاده از تکنیک استریولوژی تخمین زده شد. داده‌ها با استفاده از روش آنالیز واریانس یک‌طرفه ارزیابی شد و (05/0P<) از لحاظ آماری معنی‌دار در نظر گرفته‌ شد. یافته‌ها: میانگین و آزمون توکی حجم کل تخمدان، کورتکس، مدولا و جسم‌زرد و نیز میانگین تعداد کل‌ فولیکول‌های بدوی، اولیه، ثانویه و گراف در گروه نانوذرات نقره در مقایسه با گروه کنترل به‌طور معنی‌داری کاهش یافت (001/0P<). به علاوه کاهش معنی‌داری در میانگین حجم اووسیت و هسته‌ آن در انواع مختلف فولیکول‌ها در گروه نانوذرات نقره نسبت به گروه کنترل مشاهده شد (001/0P<). تجویز همزمان روغن سیاه دانه و نانوذرات نقره اثرات نامطلوب نانوذرات نقره را بر پارامترهای فوق جبران کرد. از طرفی، میانگین تعداد انواع مختلف فولیکول‌ها‌ در موش‌های تیمار شده با روغن سیاه دانه نسبت به گروه کنترل به‌طور معنی‌داری افزایش یافت (001/0P<). بحث: مصرف همزمان روغن سیاه دانه ونانوذرات نقره از اثرات نامطلوب نانوذرات نقره بر بافت تخمدان موش بالغ جلوگیری نمود.

چکیده انگلیسی:

Aim: the effect of Nigella sativa oil (NSO) as an efficient antioxidant on ovarian follicles following treatment with Silver Nanoparticles (SNP) in adult mice. Material and methods: Twenty-four adult NMRI mice, weighing 27-30g were used in the present experiment. The animals were kept under optimum conditions of temperature (At 21± 2 ° C and ambient lighting conditions 12 hours of darkness and 12 hours of light) humidity and maintained on standard pellet diet with adequate water. They were divided into four groups of (six mice per group): control; Silver Nanoparticles (300 mg/kg/day, orally), Nigella sativa oil (5 ml/kg/day, orally) and finally Silver Nanoparticles plus Nigella sativa oil. After 30 days, the mice were sacrificed and the ovary tissues were separated. The results were analyzed using one-way ANOVA and Tukey’s test, and the means were significantly different at P<0.05. Results: The results of this study showed that, the mean total volume of ovary and the number of primordial, primary, secondary and graph follicles significantly decreased in the Silver Nanoparticles group compared with the control group (p<0.05). Nigella sativa oil significantly increased the above parameters in the SNP +NSO group compared to silver nanoparticles group (p<0.05). Furthermore, the number of follicles and total volume of ovary significantly increased in the Nigella sativa oil treated mice compared to the control ones (p<0.05) (Table 1). Conclusion: So it is not far-fetched that this oil has improved the factors in our study.

منابع و مأخذ:

[1]     Ahmad A, Husain A, Mujeeb, Khan SH, Najmi AK, Siddique NA, et al.2013."A review on therapeutic potential of Nigella sativa; A miracle herb "Asian pacific journal of tropical biomedicine. (337-52)

[2]     Chen D, Xi T, Bai J. 2007.Biological Effect Induced by Nanosilver Particles: In Vivo Study. Biomed Mater; 2(3):126-28.

[3]     Chen W, Liu Y, Courtney HS, Bettenga M, Agrawal CM, Bumgardner JD, et al. 2006. In vitro antibacterial and biological properties of magnetron co-sputtered silver-containing hydroxyapatite coating. Biomaterials; 27(32): 5512-7.

[4]     Chen X. Schluesener HJ. 2008. Nanosilver: a nanoproduct in medical application. Toxicol Lett; 176(1): 1-12.

[5]     Cristina B, Ivan I, Pache Co, Robbie K.2007.Nanomaterials and nanoparticles: sources and toxicity. Biointer phases; 2,No 4

[6]     Danladi J, Abdulsalam A, Timbuak J, Ahmed S, Aa M, Dahiru A. 2013. Hepatoprotective effect of black seed (Nigella sativa) oil on carbon tetrachloride (ccl4) induced liver toxicity in adult wistar rats. J Dental Med Sci; 4:56-62.

[7]     Elnoury M. A. H, Azmy O. M, Elshal A. O. I, Mohamed A, Ragab H, Elsherbini E. S. A. M, 2013,"Study of the Effects of Silver Nanoparticles Exposure on the Ovary of Rats". Life Science Journal, Vol. 10.

[8]     Elnoury MAH, Azmy OM, Elshal AOI, Mohamed A, Ragab H, Elsherbini E-SA-M. 2013. Study of the Effects of Silver Nanoparticles Exposure on the Ovary of Rats. Life Science Journal, 10(2).

[9]     Gali-Muhtasib H, EL – Najjar N, S chneider – stock R. 2006. "The medicinal potential of Black seed and its components" .Advances in phytomedicine (33-53).

[10] Ghlissi Z., Hamden K., Saoudi M., Sahnoun Z , Zeghal KM., El Feki A., et al. 2012. " Effect of Nigella Sativa seeds on reproductive system of male diabetic rats "African journal of pharmacy and pharmacology;6(20): (1444-50).

[11] Ghorbanzadeh V, Moshtaghian S, Habibian S, Ebadi A. 2011. Influence of Nano-Silver on primary follicles of ovary via intraperitoneal injection in rats. World Journal of Zoology; 6(2): 215-6.

[12] Ghorbanzadeh V, Moshtaghian SJ, Habibian S, Ebadi AG. 2011. Influence of nano-silver on graffian follicles via intraperitoneal injection in rats. Middle-East J Sci Res; 8(1):228-30.

[13] Ghorbanzadeh V, Moshtaghian SJ, Habibian S, Ebadi AG, Vandechali OB. 2012. Influence of nanosilver on secondary follicles of ovary via intraperitoneal injection in rats. European Journal of Experimental Biology; 2 (4): 1367-9.

[14] Hadek R. 1966. Preliminary report on the cellular effect of intravital silver in the mouse ovary. Journal of ultrastructure research; 15(1):66-73.

[15] Hassan SF, Abdel-Fattah SA, Elsalmoney AE.2009. Relationship between some serum enzyme activities, liver functions andbody weight in growing local chickens. International Journal of Poultry Science; 8(7):700-705.

[16] Howard C, Reed M. 1998. Unbiased stereology: Three dimentional measurement in microscopy; 133-137. BIOS Scientific Publishers, UK.

[17] Hsin YH, Chen CF, Huang S, Shih TS, et al. 2008. The Apoptotic Effect of Nanosilver Is Mediated by a ROS-and JNKDependent Mechanism Involving the Mitochondrial Pathway in NIH3T3 Cells. Toxcol Lett; 179(3):130-9

[18] Johnson A. 2003. Intracellular mechanisms regulating cell survival in ovarian follicles. Animal reproduction science; 78(3):185-201.

[19] Kiernan J. A. 1999. "Histological and histochemical methods: theory and practice." Shock, 12(6): 479.

[20] Lee KJ, Nallathamby PD, Browning LM, Osgood CJ, XU XGN. 2007. In vitro imaging of transport and biocompatibility of single Silver nanoparticles in early development of Zebra fish embryos. ACS Nano; 1: 133-43.

[21] Mandarim-de-Lacerda C. A. 2003. "Stereological tools in biomedical research." Anais da Academia brasileira de Ciências 75(4): 469-486.

[22] McAuliffe ME, Perry MJ. 2007. Are nanoparticles potential male reproductivetoxicants? A literature review. Nanotoxicol; 1(3): 204-10

[23] Moaddab S, AhariH,Shahabzade D. 2011. Toxicity study of nanosilver on osteoblast cancer cell line. IntNanoLett; 1(1):11-16.

[24] Modaresi M. Poor-Naji N. 2012. The effect of black seed (Nigella sativa) hydro-alcoholic extract on breeding factors in female mice. Journal of Shahrekord University of Medical Sciences; 13(6):63-70.

[25] Oberdorster G, Oberdorster E, Oberdorster J. 2005.Nanotxicology: an emerging discipline evolving from studies of ultrafine particles. Environ Health Perspect; 113(7): 823-39.

[26] Parka E, Bae E, Yi J , Kim Y ,Choi K , Lee SH, et ah. 2010. Repeated-dose toxicity and inflammatory responses in mice by oral administration of silver nanoparticles. Environ Toxicol Pharmacol; 30(2): 162-8.

[27] shariatzadeh MA Hajjan karahroodi A. 2015. Evalution of the effect of Nigella sativa oil on sperm parameters inadultNMRI mice treated with bisphenol A.(AMUJ) ،17(93):47-55.

[28] Sriram MI, Kanth SBM, Kalishwaralal K, Gurunathan S. 2010. Antitumor activity of silver nanoparticles in Dalton’s lymphoma ascites tumor model. Int J Nanomedicine5(1):753-62.

[29] Stebounova L, Adamcakova-Dodd A, Sung Kim J. 2011. Nanosilver induces minimal lung toxicity or inflammation in a subacute murine inhalation model. Particle and Fibre Toxicology, 1-12.

[30] Syrvatka V. J, Slyvchuk Y. I, Rozgoni I. I, Gevkan I. I, Shtapenko O. V. 2015. Effect of Silver nanoparticles on maturation of rabbit׳s oocytes co-cultured with granulosa cells in vitro. Institute of Animal Biology NAAS of Ukraine; 57-66.

[31] Toma C. C, Simu G. M, Hanganu D, Olah N, Vata F, Hammami C, Hammami M. 2013."Chemical composition of the tunisian Nigella sativa". Note II. Profile of fatty oil, Farmacia, Vol. 61, pp. 454-458

[32] Wijnhoven SWP, Peijnenburg WJGM, Herberts CA, Hagens WI, Oomen AG, Heugens EHW. 2009.Nano-silver: A review of available data and knowledge gaps in human and enviromental risk assessment. Nanotoxicol; 3(2): 109-38.

[33] Zimmermann KC, Bonzon C, Green DR. 2001. The machinery of programmed cell death. Pharmacology & therapeutics; 92(1):57-70.