شناسایی مولکولی سویه های وحشی ویروس برونشیت عفونی طیور در گله های گوشتی واکسینه استان مازندران

محورهای موضوعی : پاتوبیولوژی مقایسه ای

سید مصطفی آقاجانی میر ¹ , نریمان شیخی ² , هادی حق بین نظرپاک ³ , غلامرضا غلامرضا نیکبخت بروجنی ⁴

1 - گروه علوم بالینی، دانشکده دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران
2 - گروه علوم بالینی، دانشکده دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
3 - گروه علوم بالینی، دانشکده دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
4 - گروه میکروبیولوژی و ایمونولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران

تاریخ دریافت : 1399/04/27 تاریخ پذیرش : 1399/04/27 تاریخ انتشار : 1398/09/01

کلید واژه: ویروس برونشیت عفونی, شناسایی مولکولی, گله های گوشتی, مازندران,

چکیده مقاله :

بیماری برونشیت عفونی یکی از معضلات مهم صنعت پرورش طیور گوشتی در دنیا است و مطالعات اپیدمیولوژی مولکولی و شناسایی مداوم تغییرات ژنتیکی در میان ویروس‌های شایع در مزارع پرورشی نقش مهمی در کنترل، پیشگیری و طراحی واکسن‌های موثر بر علیه بیماری دارد. در تحقیق حاضر مزارع طیور گوشتی مشکوک به بیماری برونشیت عفونی در استان مازندران مورد آزمایش قرار گرفتند. بدین منظور، نمونه‌های سواب نای از 28 گله جوجه گوشتی با علائم تنفسی و تلفات 15 تا 25 درصدی در سال 1396 جمع آوری شدند. برای تشخیص ویروس از روش واکنش زنجیره‌ای پلی‌مراز برای افزوده سازی ژن رپلیکاز با پرایمرهای اختصاصی ژن استفاده شد. سویه مرجع سویه H120 واکسن برونشیت بود. برای تفکیک سویه‌های وحشی از سویه‌های واکسینال از روش توالی یابی مستقیم استفاده شد. در آزمون مقدماتی (افزوده سازی)، در 82 درصد (28/23) از مزارعی که مشکوک به عفونت ویروس برونشیت بودند حضور ویروس برونشیت عفونی تشخیص داده شد. بررسی تعیین توالی مشخص کرد که 5 سویه وحشی در مزارع آلوده (19 مزرعه) وجود دارند. این موضوع نشانده ی تنوع بالایی در جمعیت مورد مطالعه است. نتایج این مطالعه نشان داد که ظهور سویه‌های جدید ویروس برونشیت عفونی در طیور گوشتی استان مازندران می تواند با شرایط پرورشی از جمله تراکم بالا و واکسیناسیون متنوع و مکرر مرتبط باشد.

چکیده انگلیسی:

بیماری برونشیت عفونی یکی از معضلات مهم صنعت پرورش طیور گوشتی در دنیا است و مطالعات اپیدمیولوژی مولکولی و شناسایی مداوم تغییرات ژنتیکی در میان ویروس‌های شایع در مزارع پرورشی نقش مهمی در کنترل، پیشگیری و طراحی واکسن‌های موثر بر علیه بیماری دارد. در تحقیق حاضر مزارع طیور گوشتی مشکوک به بیماری برونشیت عفونی در استان مازندران مورد آزمایش قرار گرفتند. بدین منظور، نمونه‌های سواب نای از 28 گله جوجه گوشتی با علائم تنفسی و تلفات 15 تا 25 درصدی در سال 1396 جمع آوری شدند. برای تشخیص ویروس از روش واکنش زنجیره‌ای پلی‌مراز برای افزوده سازی ژن رپلیکاز با پرایمرهای اختصاصی ژن استفاده شد. سویه مرجع سویه H120 واکسن برونشیت بود. برای تفکیک سویه‌های وحشی از سویه‌های واکسینال از روش توالی یابی مستقیم استفاده شد. در آزمون مقدماتی (افزوده سازی)، در 82 درصد (28/23) از مزارعی که مشکوک به عفونت ویروس برونشیت بودند حضور ویروس برونشیت عفونی تشخیص داده شد. بررسی تعیین توالی مشخص کرد که 5 سویه وحشی در مزارع آلوده (19 مزرعه) وجود دارند. این موضوع نشانده­ی تنوع بالایی در جمعیت مورد مطالعه است. نتایج این مطالعه نشان داد که ظهور سویه‌های جدید ویروس برونشیت عفونی در طیور گوشتی استان مازندران می تواند با شرایط پرورشی از جمله تراکم بالا و واکسیناسیون متنوع و مکرر مرتبط باشد.

منابع و مأخذ:

1. 1. Najafi H, Ghalyanchi LA, Hashemzadeh M, Karimi V, Madadgar O, Khaltabadi FR, et al. Pathogenicity study of Iranian genotype of avian infectious bronchitis virus (IR-1). Vet Res Forum 2017;8(1):35-41.


2. Okino CH, Mores MA, Trevisol IM, Coldebella A, Montassier HJ, Brentano L. Early immune responses and development of pathogenesis of avian infectious bronchitis viruses with different virulence profiles. PLoS One. 2017;12(2):e0172275.


3. Dhama K, Singh SD, Barathidasan R, Desingu PA, Chakraborty S, Tiwari R, et al. Emergence of Avian Infectious Bronchitis Virus and its variants need better diagnosis, prevention and control strategies: a global perspective. Pak J Biol Sci 2014 Jun;17(6):751-67.


4. Fraga AP, Graf T, Pereira CS, Ikuta N, Fonseca ASK, Lunge VR. Phylodynamic analysis and molecular diversity of the avian infectious bronchitis virus of chickens in Brazil. Infect Genet Evol 2018 Jul;61:77-83.


5. Jiang L, Han Z, Chen Y, Zhao W, Sun J, Zhao Y, et al. Characterization of the complete genome, antigenicity, pathogenicity, tissue tropism, and shedding of a recombinant avian infectious bronchitis virus with a ck/CH/LJL/140901-like backbone and an S2 fragment from a 4/91-like virus. Virus Res 2018 Jan 15;244:99-109.


6. Bande F, Arshad SS, Omar AR, Hair-Bejo M, Mahmuda A, Nair V. Global distributions and strain diversity of avian infectious bronchitis virus: a review. Anim Health Res Rev 2017 Jun;18(1):70-83.


7. Khataby K, Fellahi S, Loutfi C, Mustapha EM. Avian infectious bronchitis virus in Africa: a review. Vet Q 2016 Jun;36(2):71-5.


8. Jakhesara SJ, Nath B, Pal JK, Joshi CG, Kumar S. Emergence of a genotype I variant of avian infectious bronchitis virus from Northern part of India. Acta Trop 2018 Jul;183:57-60.


9. Li TT, Li JY, Huang T, Ge XY. Complete Genome Sequence of a Novel Strain of Infectious Bronchitis Virus, Isolated from Chickens in China in 2016. Genome Announc 2017 Nov 9;5(45).


10. Aghakhan S, fshar M, Fereidouni N, Manuresi C, Khodashenas M. Studies on avian viral infections in Iran. Archive de L, Institute Razi 1994;44(45):1-10.


11. Hosseini H, Fard MH, Charkhkar S, Morshed R. Epidemiology of Avian Infectious Bronchitis Virus Genotypes in Iran (2010-2014). Avian Dis 2015 Sep;59(3):431-5.


12. Seyfi Abad Shapouri MR, Mayahi M, Charkhkar S. A survey of the prevalence of infectious bronchitis virus type 4/91 in Iran. Acta Vet Hung 2004;52(2):163-6.


13. Masoudian A, Sheikhi N, Bozorgmehri-Fard MH. Identification of new avian Infectious Bronchitis virus variants in Iranian poultry flocks by High Resolution Melting curve analysis. Journal of the Hellenic Veterinary Medical Society 2018; 69(1):783-90.


14. Hewson KA, Browning GF, Devlin JM, Ignjatovic J, Noormohammadi AH. Application of high-resolution melt curve analysis for classification of infectious bronchitis viruses in field specimens. Aust Vet J 2010 Oct;88(10):408-13.


15. Hewson K, Noormohammadi AH, Devlin JM, Mardani K, Ignjatovic J. Rapid detection and non-subjective characterisation of infectious bronchitis virus isolates using high-resolution melt curve analysis and a mathematical model. Arch Virol 2009;154(4):649-60.


16. Armesto M, Cavanagh D, Britton P. The replicase gene of avian coronavirus infectious bronchitis virus is a determinant of pathogenicity. PLoS One 2009 Oct 9;4(10):e7384.


17. Okino CH, Montassier MFS, Oliveira AP, Montassier HJ. Rapid detection and differentiation of avian infectious bronchitis virus: an application of Mass genotype by melting temperature analysis in RT-qPCR using SYBR Green I. J Vet Med Sci 2018 Apr 27;80(4):725-30.


18. Mousavi FS, Ghalyanchilangeroudi A, Hosseini H, Nayeri FB, Ghafouri SA, Abdollahi H, et al. Complete genome analysis of Iranian IS-1494 like avian infectious bronchitis virus. Virusdisease 2018 Sep;29(3):390-4.