اثر نانوذرات سلنیوم بر آسیب اکسایشی DNA، پارامترهای استرس اکسیداتیو و ساختار بافتی تخمدان در مدل حیوانی سندرم تخمدان پلی کیستیک
الموضوعات :محمد امین عدالت منش 1 , سمانه رفیعی 2
1 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
2 - گروه فیزیولوژی ورزشی، دانشکده تربیت بدنی و علوم ورزشی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
الکلمات المفتاحية: استرس اکسیداتیو, موش صحرایی, سندرم تخمدان پلی کیستیک, نانوذرات سلنیوم,
ملخص المقالة :
سندرم تخمدان پلی‌کیستیک (PCOS) با اختلالات هورمونی-متابولیکی، استرس اکسیداتیو و اختلال در تخمک‌گذاری همراه است. پژوهش حاضر به ارزیابی اثر نانوذرات سلنیوم (SeNPs) بر فعالیت آنزیم های آنتی اکسیدانی و ساختار بافت تخمدان و آسیب اکسیداتیو DNA در مدل سندرم تخمدان پلی کیستیک می‌پردازد. تعداد 32 سر موش صحرایی ماده نژاد ویستار به 4 گروه کنترل، PCOS، PCOS+SeNPs0.1 و PCOS+ SeNPs0.1 تقسیم شدند. سندرم تخمدان پلی کیستیک با یک بار تزریق عضلانی استرادیول والرات (4 میلی گرم/کیلوگرم) القاء شد و SeNPs با دوزهای 1/0 و 2/0 میلی‌گرم/کیلوگرم به مدت 14روز به صورت خوراکی تجویز گردید. در پایان دوره تیمار، سطح بافتی آنزیم های سوپراکسید دیسموتاز (SOD)، کاتالاز (CAT)، مالون دی‌آلدهید (MDA) و 8-هیدروکسی داکسی گوانوزین (8-OHdG) در بافت تخمدان توسط روش الایزا سنجش شد و ساختار بافتی تخمدان مورد بررسی هیستوپاتولوژیک قرار گرفت. کاهش معنی‌دار تعداد کیست‌های فولیکولی، 8-OHdG و سطح MDA همراه با افزایش معنی‌دار سطح بافتی آنزیم‌های SOD و CAT در گروه‌های تیمار با SeNPs در مقایسه با گروه PCOS دیده شد. در واقع، SeNPs با عملکرد آنتی‌اکسیدانی سبب بهبود ساختار بافتی تخمدان در مدل سندرم تخمدان پلی‌کیستیک گردید.
1. S. Patel, J, Steroid. Biochem. Mol. Biol. 182, 27-36 (2018)
2. C. Delcour, G. Robin, J. Young, D. Dewailly, Clin. Med. Insights. Reprod. Health. 9, 1179558119871921 (2019)
3. E. Palioura, E. Diamanti-Kandarakis, Rev. Endocr. Metab. Disord. 16(4), 365-712015 (2015)
4. N. Gleicher, S. Darmon, P. Patrizio, D.H. Barad, Biomedicines. 10(7), 1505 (2022)
5. H. Liu, J. Xie, L. Fan, Y. Xia, X. Peng, J. Zhou, X. Ni, Oxid. Med. Cell. Longev. 2022, 8011850 (2022)
6. E. Rudnicka, A. M. Duszewska, M. Kucharski, P. Tyczyński, R. Smolarczyk, Reproduction. 164(6), F145-F154 (2022)
7. M. Mohammadi, Int. J. Prev. Med. 17, 10:86 (2019)
8. H. Shan, R. Luo, X. Guo, R. Li, Z. Ye, T. Peng, F. Liu, Z. Yang, Front. Pharmacol. 13, 904942 (2022)
9. A-M. E. Abdel-Moneim, A. M. Shehata, N. G. Mohamed, A. M. Elbaz, N. S. Ibrahim, Biol. Trace. Elem. Res. 200, 768–779 (2022)
10. R. M. P. Gutiérrez, J. T. Gómez, R. B. Urby, J. G. C. Soto, H. R. Parra, Molecules. 27(17), 5642 (2022)
11. J-S. Zhang, X-Y. Gao, L-D. Zhang, Y-P. Bao, BioFactors. 15(1), 27–38 (2001)
12. S. Hariharan, S. Dharmaraj. Inflammopharmacology. 28(3), 667–695 (2020)
13. M. A. Dkhil, R. Zrieq, S. Al-Quraishy, Molecules. 21(11), 1517 (2016)
14. A. B. E. Abdallah, M. A. El-Ghannam, A. A. Hasan, Biol. Trace. Elem. Res. (2023) https://doi.org/10.1007/s12011-023-03616-0
15. S. Rafiei, M. A. Edalatmanesh, Feyz. 22(6), 564-572 (2018)
16. B. F. Mazloom, M. A. Edalatmanesh, S.E. Hosseini, Comp. Clin.Pathol. 28(10), 281-1286 (2019)
17. M.Ebrahimi, N. Abarshahr, M. A. Edalatmanesh, J. Anim. Biol. 15(1), 191-203 (2022)
18. R. L.Rosenfield, J. Pediatr. Adolesc. Gynecol. 28(6), 412-419 (2015)
19. F. Khazaei, E. Ghanbari, M. Khazaei, Int. J. Reprod. Biomed. 19(6), 515-524 (2021)
20. Y. Zhang, M. Hu, F. Meng, X. Sun, H. Xu, J. Zhang, EBioMedicine. 18, 157-170 (2017)
21. R. Gharaei, F. Mahdavinezhad, E. Samadian, J. Asadi, Z. Ashrafnezhad, L. Kashani, F. Amidi, J. Assist. Reprod. Genet. 38(11), 2817-2831 (2021)
22. L. V. Papp, A. Holmgren, K. K. Khanna, Anti-oxidants. Redox. Signaling. 12(7), 793–795 (2010)
23. C. Ferro, H. F. Florindo, H. A. Santos, Adv. Healthcare. Mater. 10(16), 2100598 (2021)
24. C. Wu, F. Lin, S. Qiu, Z. Jiang, PLoS. One. 9(6), e99155 (2014)
25. M. A. Butt, A. Ullah, M. M. Kiyani, S. Jahan, Int. J. Biomed. Nanosci. Nanotechnol. 4(1–2), 49–69 (2020)
