بررسی تغییرات متابولیتی و آنزیمی اشک زنان در دوره قاعدگی

الموضوعات : مجله پلاسما و نشانگرهای زیستی

وهب جعفریان ¹ (زیست شناسی دانشگاه زنجان زنجان ایران)
زهرا بیانی ² (قران و احادیث واحد زنجان، دانشگاه ازاد اسلامی ، زنجان ایران)

تاريخ الإرسال : 19 الثلاثاء , صفر, 1442 تاريخ التأكيد : 25 الأحد , ربيع الثاني, 1441 تاريخ الإصدار : 25 الأحد , ربيع الثاني, 1441

الکلمات المفتاحية: Enzyme, metabolite, HPLC, Menstruation, Tear,

ملخص المقالة :

زمینه و هدف: اشک انسان ترکیب پیچیده ای از پروتئین ها، آنزیم ها، چربی ها، متابولیت ها و الکترولیت ها است که افزون بر تمیز و شفاف نگه داشتن سطح چشم، در تغذیه چشم نقش دارد. هدف از این پژوهشبررسی تغییرات متابولیتی و آنزیمی اشک در زنان در دوره قاعدگی است روش کار: دامنه سنی زنان مورد آزمایش 18 تا 24 سال بود و از سلامت جسمی و بینایی کامل و رژیم غذایی مشابهی در دوره یک ماهه پیش از نمونه گیری برخوردار بودند. نمونه های اشک زنان به عنوان تیمار در روز سوم قاعدگی و نمونه های شاهد سه روز پس از اتمام قاعدگی تهیه گردید. برخی از پروتئین های اشک نیز تحت آنالیز توسطFPLC وRP-HPLC قرار گرفتند. در این پژوهش، تغییرات بیوشیمیایی از قبیل تغییر در آنزیم های لیزوزیم، پراکسیداز، آلفا آمیلاز، تیروزیناز، و تغییر در متابولیت هایی مانند گلوکز، فسفر و کلسیم موجود در اشک زنان در طول دوران قاعدگی و حالت طبیعی بررسی و مقایسه شد. یافته ها: نتایج بیوشیمیایی نشان داد که میزان غلظت پروتئین ها(کمّی و کیفی (SDS-PAGE)) و آنزیم های لیزوزیم، پراکسیداز، تیروزیناز در زنان قاعده نسبت به حالت های طبیعی آن ها افزایش یافت، ولی میزان آلفاآمیلاز، گلوکز، فسفر، و کلسیم در اشک در دوره قاعدگی کمتر بود. نتیجه گیری: بنابر این پژوهش، کاهش گلوکز، فسفر و کلسیم موجود در اشک را می توان به عنوان شاخصی در مطالعات مقایسه ای و تشخیص طبی در زنان در شرایط قاعدگی در نظر گرفت.

المصادر:

1.Beagley, KW., Gockel, CM. (2003). Regulation of innate and adaptive immunity by the female sex hormones oestradiol and progesterone. FEMS Immunology and Medical Microbiology, 38(1); 13-22.

2.Berbic, M., Fraser, IS. (2013). Immunology of normal and abnormal menstruation. Women’s Health, 9(4); 387-395.

3.Bennal, AS., Kerure, SB. (2013). Glucose handling during menstrualcycle. International Journal of Reproduction, Contraception, Obstetrics and Gynecology, 2(3); 284-287.

4.Bhatia, A., Sekhon, HK., Kaur, G. (2014). Sex hormones and immune dimorphism. The Scientific World Journal, 2014; 150-159.

5.Bradford, MM. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Journal of Analytical Biochemistry, 72; 248-254.

6.Bowman, WC., Rand, MJ. (1980). Textbook of pharmacology(No. 2nd ed.). Blackwell Scientific Publications.

7.Cavdar, E., Ozkaya, A., Alkin, Z., Ozkaya, HM., Babayigit, MA. (2014). Changes in tear film, corneal topography and refractive status in premenopausal women during menstrual cycle. Contact Lens and Anterior Eye, 37(3); 209-212.

8.Herbaut, A., Liang, H., Denoyer, A., Baudouin, C., Labbé, A. (2019). Tear film analysis and evaluation of optical quality: A review of the literature. Journal francais d'ophtalmologie, 42(2); 21-35.

9.Gutteridge, JM., Paterson, SK., Segal, AW., Halliwell, B. (1981). Inhibition of lipid peroxidation by the iron-binding protein lactoferrin. Biochemical Journal, 199(1); 259-261.

10.Giuffre, G., Di Rosa, L., Fiorino, F., Bubella, DM., Lodato, G. (2007). Variations in central corneal thickness during the menstrual cycle in women. Cornea, 26(2); 144-146.

11.Inada, K., Baba, H., Okamura, R. (1982). Studies of human tear proteins--1. Analysis of tears from normal subjects by crossed immunoelectrophoresis. Japanese Journal of Ophthalmology, 26(3); 314-325.

12.Jung, D.H. (1980). Preparation and application of procion yellow starch for amylase assay. Clinica Chimica Acta, 100(1); 7-11.

13.Kiely, PM., Carney, LG., Smith, G. (1983). Menstrual cycle variations of corneal topography and thickness. American Journal of Optometry and Physiological Optics, 60(10); 822-829.

14.Laemmli, UK. (1970). Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature, 227; 680–685. 

15.King, A.E., Critchley, H.O., Kelly, R.W. (2003). Innate immune defences in the human endometrium. Reproductive Biology and Endocrinology, 1(1); 116.

16.Montes-Mico, R., Cervino, A., Ferrer-Blasco, T., Garcia-Lazaro, S., Madrid-Costa, D. (2010). The tear film and the optical quality of the eye. Ocul. Surf, 8;185-192.

17.Paulsen, FP., Berry, MS. (2006). Mucins and TFF peptides of the tear film and lacrimal apparatus. Progress in histochemistry and cytochemistry, 41(1); 1-53.

18.Sariri, R., Sajedi, RH., Jafarian, V. (2006). Inhibition of horseradish peroxidase activity by thiol type inhibitors. Journal of molecular liquids, 123(1); 20-23.

19.Schnetler, R., Gillan, WDH., Koorsen, G. (2012). Immunological and antimicrobial molecules in human tears: a review and preliminary report. African Vision and Eye Health, 71(3); 123-132.

20.Sharma, A., Porwal, S., Tyagi, M. (2018). Effect of oral contraceptives on tear film in reproductive age group women. International Journal of Reproduction, Contraception, Obstetrics and Gynecology, 7(3);  861.

21.Versura, P., Fresina, M., Campos, EC. (2007). Ocular surface changes over the menstrual cycle in women with and without dry eye. Gynecological endocrinology, 23(7); 385-390.