بررسی ایمنی زایی کونژوگه  PLGA- لیپوپلی ساکارید دتوکسیفای شده پروتئوس میرابیلیس برعلیه عفونت ادراری در مدل موشی.

الموضوعات : مجله پلاسما و نشانگرهای زیستی

رضا شاپوری ¹ (عضو هیات علمی دانشگاه آزاد اسلامی زنجان)

تاريخ الإرسال : 22 الإثنين , ذو القعدة, 1441 تاريخ التأكيد : 03 الأحد , صفر, 1442 تاريخ الإصدار : 05 الثلاثاء , صفر, 1442

الکلمات المفتاحية: پروتئوس میرابلیس, نانو واکسن, پلی لاکتیک کو گلیکو اسید, کونژوگاسیون لیپو پلی ساکارید,

ملخص المقالة :

پ زمینه و هدف: پروتئوس، پاتوژن فرصت‌طلب عامل ۱۰ درصد عفونت‌های دستگاه ادراری است. افزایش مقاومت چند داروئی وعوارض جانبی آنتی بیوتیک ها باعث شد یافتن تولید واکسن ضروری به نظرآید. هدف از این پژوهش بررسی ایمنی زایی کونژوگه PLGA و لیپوپلی ساکارید دتوکسیفای شده پروتئوس میرابیلیس برعلیه عفونت ادراری در مدل موشی است. روش کار: در این پژوهش، پس از کشت انبوه پروتئوس میرابلیس، LPS آن استخراج، تخلیص و دتوکسیفه و نهایتاً با نانوذره PLGA کونژوگه گردید.کونژوگاسیون بادستگاه های ZetaSizer، FT-IR و AFM تایید و واکسیناسیون، 3بار به فاصله دو هفته، به صورت عضلانی به 4 گروه3 تایی موش سوری تحت درمان با نرمال سالین(گروه کنترل)، LPS، PLGA وکونژوگه PLGA-LPS انجام شد. برای انجام تست چلنج، به مثانه موش ها CFU/ml 106×6 از باکتری تزریق و بعدازیک هفته سنجش باکتری ها صورت گرفت یافته ها: . نتایج حاصل از تست چلنج مبین موفقیت معنی دارکونژگه PLGA-LPS در مقایسه با دیگر گروه های آزمون بود. به عبارت دیگر، گروه های کنترل و PLGA خالص بیشترین میزان رشد را داشتند و میانگین تعداد کلنی های رشد کرده به طور قابل توجهی از همه گروه ها بیشتر بود. وتعداد کلنی های رشد کرده درگروه های PLGAml)/cfu)10 × 2/6، ml) LPS/cfu)103×6/3،PLGA ml)/cfu)102×3/91 وNSml)/cfu)102×98 بود. نتیجه گیری: می توان نتیجه گرفت که نانو واکسن کونژوگه PLGA-LPS دارای ایمنی زایی مناسب بوده و با بررسی عدم سمیت آن درمطالعات پاتولوژیکی می تواندکاندید نانو واکسن مناسبی برای پیشگیری ازعفونت های ادراری ناشی پروتئوس میرابلیس باشد.

المصادر:

-استفاده از نانو ذرات پلیمری برای دارورسانی هدفمند. روزنامه صمت، شماره 516. ص 6. http://www.smtnews.ir/industry/20896

2-جابری، غ.، شاپوری،ر.، کریمی، ن. 2013. ایمنی زایی کونژوگه آلژینات سودوموناس آئروژینوزا و توکسوئید دیفتری در موش. فصلنامه علمی پژوهشی دنیای میکروب ها، 6: 138-147.‎

3-جانفرا، س.، رضوی، ح.1394. فناوری نانو ذرات پلیمری برای دارورسانی خوراکی. سایت ستاد ویژه توسعه فناوری نانو www.nano.ir

4-رضویان،پ.، شاپوری،ر. 1393. بررسی ایمنی زایی کونژوگه OPS، یرسینیا انتروکولیتیکا8: O با توکسوئید دیفتری به عنوان نامزد واکسن در موش. مجله دانشگاه علوم پزشکی اردبیل، 15(2): 189-197.‎

5-رنجبر، ا.، ارزنلو، ا.، مظفری، ن.، شکری، ه.، امانی، خ. 1393. مطالعه اثر ضد میکروبی آلیسین در مقابل ایزوله های پروتئوس میرابیلیس جدا شده از بیماران مبتلا به عفونت های ادراری.‎ مجله دانشگاه علوم پزشکی اردبیل، 15(1): 106-117.‎

6-سلطان دلال، م. 1394. بررسی الگوی مقاومت دارویی سویه های پروتئوس جدا شده از بیماران مبتلا به عفونت ادراری.‎ مجله دانشکده پزشکی دانشگاه علوم پزشکی تهران، 61(3): 40-48.‎

7- عاملی، ف.، ملک زاد،ه ف. 1384. بررسی اثر Sub-minimal concentration آمپی سیلین، جنتامایسین و نالیدیگزیک اسید بر رشد، تولید آمونیاک و فعالیت آنزیم اوره آز پروتئوس میرابیلیس. مجله دانشکده پزشکی دانشگاه علوم پزشکی تهران، 61(1): 31-40.‎

8- فومنی، ق.، اسدپور، ل.، سراجی ع.، آقاصادقی، م. 1391. انواع ادجوانت و مکانیسم عمل آن­ها. مجله دانشگاه علوم پزشکی اردبیل، 12(3): 276-291.‎

9-مسننی، م.، صلوتی، م.، شاپوری، ر.1396. بررسی ایمنی زایی ترکیب کونژوگه نانو ذره PLGA به همراه آلژینات سودوموناس آیروژینوزا به عنوان کاندیدای نانو واکسن در مدل خرگوشی،سومین کنفرانس ملی تازه های سلولی مولکولی و اولین سمپوزیوم بین المللی ژنو میکس و پروتئومیکس،اردبیل،

10-میرزا خانلویی، ساسان.1390. ساخت و تعیین ویژگی های نانوالیاف بر پایه کوپلیمر پلی لاکتیک گلایکولیک اسید (PLGA) با استفاده از روش الکتروریسی به منظور به کارگیری در کشت سلول های بنیادی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده علوم و فناوری های نوین. دانشگاه اصفهان.

11-واثق، روح ا... 1395. ارزیابی پاسخ‌های ایمنی(سلولی و همورال) بر علیه کونژوگه نانوذره پلی لاکتیک گلایکولیک اسید(PLGA) و توکسویید تتانی، توکسویید دیفتری و انتروتوکسین B استافیلوکک در مدل موشی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده علوم پزشکی. دانشگاه تربیت مدرس.

12-یاوری، ح.، سیادت، سیدداور.، شاپوری، ر.،  شفیعی اردستانی، م. 1394. تهیه واکسن کونژوگه پلی ریبوزیل ریبیتول فسفات هموفیلوس آنفلوانزای تیپ b با پروتئین Keyhole Limpet Hemocyanin و نانوذره Poly lactic-co-glycolic acid و ارزیابی ایمنی آن در مدل حیوانی.‎ https://civilica.com/doc/783299.

13.Bahrani, F. K., Johnson, D. E., Robbins, D. A. V. I. D., Mobley, H. L. (1991). Proteus mirabilis flagella and MR/P fimbriae: isolation, purification, N-terminal analysis, and serum antibody response following experimental urinary tract infection. Infection and Immunity, 59(10); 3574-3580.

14.Bale, M. J., Mclaws, S. M., Matsen, J. M. (1985). The spot indole test for identification of swarming Proteus. American Journal of Clinical Pathology, 83(1); 87-90.

15.Bandyopadhyay, A., Fine, R. L., Demento, S., Bockenstedt, L. K., Fahmy, T. M. (2011). The impact of nanoparticle ligand density on dendritic-cell targeted vaccines. Biomaterials, 32(11); 3094-3105.

16.Belas, R. O. B. E. R. T., Erskine, D., Flaherty, D. (1991). Proteus mirabilis mutants defective in swarmer cell differentiation and multicellular behavior. Journal of Bacteriology, 173(19); 6279-6288.

17.Beynon, L. M., Dumanski, A. J., McLean, R. J., MacLean, L. L., Richards, J. C., Perry, M. B. (1992). Capsule structure of Proteus mirabilis (ATCC 49565). Journal of Bacteriology, 174(7); 2172-2177.

18.Brandhonneeur, N., Cheanne, F. (2009). Specific and non-specific phagocytosis of igand – grafted PLGA microspheres by macrophages . European Journal of Pharmaceutical Sciences, 36; 474-48.

19.Cryz, SJ., Jr,Fürer, E.,Germanier, R.(1984). Protectionagainstfatal Pseudomonas aeruginosa burnwound sepsis by immunization with lipopolysaccharide andhigh-molecular-weightpolysaccharide. InfectImmun, 43(3); 795-9.

20.Danhier, F., Ansorena, E., Silva, J. M., Coco, R., Le Breton, A., Préat, V. (2012). PLGA-based nanoparticles: an overview of biomedical applications. Journal of Controlled Release, 161(2); 505-522.

21.Drago-Serrano, M. E., de la Garza-Amaya, M., Luna, J. S., Campos-Rodríguez, R. (2012). Lactoferrin-lipopolysaccharide (LPS) binding as key to antibacterial and antiendotoxic effects. International Immunopharmacology, 12(1); 1-9.

22.Ebrahimi, F., Rabiee, A. (2013). Study of adjuvant capability of the gold nanoparticles on immunity of botulinum neurotoxin serotype E in mouse. ADST Journal, 4(2); 87-92.

23.Fisher, S., Foerg, Ch. (2006). All on-step preparation of polyelectrolyte- coated PLGA microparticles and their functionalization with model ligands . Journal of Controlled Release , 111; 135-144.

24.Forbes, B., Sahm D.F., Weiss Feld, A.S. (2112). Bailey and Scott’s Diagnostic Microbiology, 07 th ed, Mosby; p0196-0161.

25.Gadad, A. P., Vannuruswamy, G., Sharath Chandra, P., Dandagi, P. M., Mastiholimath, V. S. (2012). Study of different properties and applications of poly lactic-co-glycolic acid(PLGA) nanotechnology: an overview. Indian drugs, 49(12); 5-22.

26.Gerald, B. (2003). Constraction & Characterization of a Pseudomonas Gerald B.Pier, et al . Constraction & Characterization of a Pseudomonas Vaccine . American Society for Microbiology , 71; 3875-3884.

27.Greatorix, J. S., Thorne, G. M. (1994). Humoral immune responses to shiga-like toxins and escherichia coli 0157 lipopolysaccharide n

 

hemolytic-uremic syndrome patients and healthy  subjects, Journal of Clinical Microbiology, 32; 1172-117.

28.Guggenheim, M., Zbinden, R., Handschin, A. E., Gohritz, A., Altintas, M. A., Giovanoli, P. (2009). Changes in bacterial isolates from burn wounds and their antibiograms: a 20-year study (1986–2005). Burns, 35(4); 553-560.

29. Handschin, A. E. (1994). Immunization-induced human polyclonal antibodies to  lipopolysaccharide subtypes of Pseudomonas aeruginosa Serogroup 06. Infecrion and Immunity, 62; 1137-1143.

30.In, Z. (2004). Pseudomonas aeruginosa .Pathogenicity & Antibiotic Resistance, 2nd ed,56:1. 31.Kadurugamuwa, J., Lam, J. S., Beveridge, T. J. (2003).  Interaction of gentamicin wit the a band and b band. Clinical Microbiology,79(3);65-78.

32.Kearns, D. B., Losick, R. (2003). Swarming motility in undomesticated Bacillus subtilis. Molecular Microbiology, 49(3); 581-590.

33.Khurana, S., Utreja, P., Tiwary, A. K., Jain, N. K., Jain, S. (2009). Nanostructured lipid carriers and their application in drug delivery. International Journal of Biomedical Engineering and Technology, 2(2); 152-171.

34.Knirel, Y., Kaca, W., Rozalski, A., Sidorczyk, Z. (1999). Structure of the O-antigenic polysaccharides of Proteus bacteria. Polish Journal of Chemistry, 73(6); 895-907.

35.Konadu, E. Y., Parke, J. C., Tran, .T. I(1998). Nvestigational vaccine for Escherichia coli  O157, Phase 1 study of o157 specific polysaccharide–Pseudomonas aeruginosa recombinantexoprotein a conjugates in adults. The Journal of Infectious Diseases, 177; 383.

36.Krieg, N. R., Holt, J. G. (1984). Bergey’s manual of systemetic bacteriology.-vol. 1. William and Wilkins, Baltimore, London.

37.Li, X., Lockatell, C. V., Johnson, D. E., Lane, M. C., Warren, J. W., Mobley, H. L. (2004). Development of an intranasal vaccine to prevent urinary tract infection by Proteus mirabilis. Infection and Immunity, 72(1); 66-75.

38.Li, X., Zhao, H., Lockatell, C. V., Drachenberg, C. B., Johnson, D. E., Mobley, H. L. (2002). Visualization of Proteus mirabilis within the matrix of urease-induced bladder stones during experimental urinary tract infection. Infection and Immunity, 70(1); 389-394.

39.O'fallon, E., Gautam, S., D'agata, E. M. (2009). Colonization with multidrug-resistant gram-negative bacteria: prolonged duration and frequent cocolonization. Clinical Infectious Diseases, 48(10); 1375-1381.

40.Penner, JL. (1992). The genera proteus, providencia and morganella. In The Prokaryotes, p 2849–2853. Springer, Berlin.

41.Perry, M. B., MacLean, L. L. (1994). The structure of the polysaccharide produced by Proteus vulgaris (ATCC 49990). Carbohydrate Research, 253; 257-263.

42.Pier, G.B., Koles, N. L., Meluleni, G. (2000).Specificity and function of murine monoclonal antibodies. Carbohydrate Research, 280; 257-263

43.Ramsay, J. W. A., Garnham, A. J., Mulhall, A. B., Crow, R. A., Bryan, J. M., Eardley, H. N. (1989). Biofilms, bacteria and bladder catheters A clinical study. BJU International, 64(4);395-398.

44.Rasko, D. A., Moreira, C. G., Li, D. R., Reading, N. C., Ritchie, J. M., Waldor, M. K. T. (2008). Targeting QseC signaling and virulence for antibiotic development. Science, 321(5892);1078-1080.

45.Ray, S., Suar, M. (2014). Vaccine nanocarriers: The future ahead. handbook of research on diverse applications of nanotechnology in Biomedicine, Chemistry, and Engineering, 221.

46.Różalski, A., Sidorczyk, Z., Kotełko , K. (1997). Potential virulence factors of Proteus bacilli. Microbiol Mol Biol Rev, 61;65–89.

47.Sharp, P. M., Saenz, C. A., Martin, R. R. (1974). Amikacin (BB-K8) treatment of multiple-drug-resistant Proteus infections. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 5(5); 435-438.

48.Stickler, D., Ganderton, L., King, J., Nettleton, J., Winters, C. (1993). Proteus mirabilis biofilms and the encrustation of urethral catheters. Urological Research, 21(6);407-411.

49.Torzewska, A., Budzyńska, A., Białczak-Kokot, M., Różalski, A. (2014). In vitro studies of epithelium-associated crystallization caused by uropathogens during urinary calculi development. Microb Pathog, 71– 72; 25–31.

50.Van Amersfoort, E. S., Kuiper, J. (2007). B18 receptors, mediators, and mechanisms involved in bacterial sepsis and septic shock. Endotoxins: Pyrogens, LAL Testing and Depyrogenation, 383.

51.Wasfi, R., El-Rahman, O. A., Mansour, L. E., Hanora, A. S., Hashem, A. M., Ashour, M. S. (2012). Antimicrobial activities against biofilm formed by Proteus mirabilis isolates from wound and urinary tract infections. Indian Journal of Medical Microbiology, 30(1); 76.

52.Wells, M.,Gaffin ,S.L. (1987). Anti- Pseudomonas activity of anti lipopolysaccharide hyperimmune equine plasma.Clin.exp.Immunol, 68;86-92.

53.Wolf , P., Elsasser-Beile, U. (2116). Pseudomonas exotoxin A: from virulence factor to anti-cancer agent. Int J Med Microbiol, 266(3); 090-7.