جداسازی و تعیین هویت مایکوباکتریوم توبرکلوزیس از موشهای موجود در یک دامداری دارای راکتور سلی استان تهران
الموضوعات :خشایار منصوری 1 , نادر مصوری 2 , مهدی بابائی 3 , شجاعت دشتی پور 4
1 - دکترای حرفه‌ای دامپزشکی، دانشكده دامپزشکی، واحد گرمسار، دانشگاه آزاد اسلامی، گرمسار، سمنان، ایران
2 - 2- دانشیار میکروبیولوژی، آزمایشگاه رفرانس سل گاوی، موسسه تحقیقات واكسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی (تات)، کرج، ایران
3 - کارشناس ارشد بیوشیمی، آزمایشگاه رفرانس سل گاوی، موسسه تحقیقات واكسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی (تات)، کرج، ایران
4 - کارشناس ارشد بیوتکنولوژی، آزمایشگاه رفرانس سل گاوی، موسسه تحقیقات واكسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی (تات)، کرج، ایران
الکلمات المفتاحية: سل, موش, مایکوباکتریوم, RFLP-PCR , RD-تایپینگ,
ملخص المقالة :
کمپلکس مایکوباکتریوم توبرکلوزیس، عامل بیماری سل می‌باشد که باعث عوارض و مرگ و میر به ویژه در کشورهای در حال توسعه است. بررسی احتمال سرایت مایکوباکتریوم به حیواناتی مانند موش حائز اهمیت می‌باشد، چرا که در اثر انتقال باکتری به موش، جمعیت موشهای آلوده در دامداری زیاد می‌شود و امکان حذف کل جمعیت دامی واحد را فراهم می‌سازد. از این رو، ابزار انگشت نگاری DNA برای بهبود تشخیص سل توسعه یافته‌اند و از تکنیک‌های تایپینگ مولکولی برای تشخیص و پیگیری گسترش آن استفاده می‌شود. هدف از این مطالعه جداسازی و تعیین هویت مایکوباکتریوم از موشهای موجود در دامداری‌های دارای راکتور سلی بود. پنج عدد موش از گاوداری آلوده به مایکوباکتریوم بوویس در سال 1397 انتخاب شدند. جهت بررسی وجود مایکوباکتریوم، نمونه‌ها در محیط لوین‌اشتاین-جانسون کشت داده شدند. برای تعیین هویت جدایه‌ها از تکنیک PCR براساس قطعه16S rRNA وIS6110 استفاده گردید. در نهایت، با استفاده از RD-تایپینگ گونه مایکوباکتریوم تعیین هویت شد. با کشت نمونه‌ها و بررسی لام حاصل از آن مشخص شد که پنج موش آلوده با مایکوباکتریوم بودند. PCR برای16S rRNA و IS6110 به ترتیب باند 543 و 245 جفت‌باز را نشان داد که تعلق جدایه‌ها به کمپلکس مایکوباکتریوم توبرکلوزیس را اثبات نمود. تکنیک RD-تایپینگ وجود مایکوباکتریوم توبرکلوزیس در جدایه‌ها را تایید کرد. از این مطالعه نتیجه گیری شد که حیواناتی مانند موش می‌توانند باعث انتقال گونه‌های کمپلکس مایکوباکتریوم توبرکلوزیس به فارم‌ها و سایر موجودات زنده شوند.
Akbarein, H., Bahonar, A., Bokaie, S., Mosavar, N., Rahimi-Foroushani, A., Sharifi, H., Makenali, A.S., Rokni, N.D., Marhamati-Khameneh, B. and Broumanfar, S. (2014). Determinants of bovine Tuberculosis in dairy farms covered by the tuberculin screening test: A herd level case control study. Iranian Journal of Epidemiology, 10: 15-24.
Alizadeh, K., Mosavari, N. and Nazari, R. (2018). Isolation and identification of Mycobacterium tuberculosis complex from rodents of infected cattle husbandry. Veterinary Researches and Biological Products, 31: 74-86. https://doi.org/10.22092/vj.2017.110383.1302
Barberis, I., Bragazzi, N.L., Galluzzo, L. and Martini, M. (2017). The history of tuberculosis: from the first historical records to the isolation of Koch's bacillus. Journal of Preventive Medicine and Hygiene, 58: 9-12. PMCID: PMC5432783
Costello, E., O'Grady, D., Flynn, O., O'Brien, R., Rogers, M., Quigley, F., Egan, J. and Griffin, J. (1999). Study of restriction fragment length polymorphism analysis and spoligotyping for epidemiological investigation of Mycobacterium bovis infection. Journal of Clinical Microbiology, 37: 3217-3222. https://doi.org/10.1128/JCM.37.10.3217-3222.1999
Ereqat, S., Nasereddin, A., Levine, H., Azmi, K., Al-Jawabreh, A., Greenblatt, C.L., Abdeen, Z. and Bar-Gal, G.K. (2013). First-time detection of Mycobacterium bovis in livestock tissues and milk in the West Bank, Palestinian Territories. PLoS neglected tropical diseases, 7: 1-7. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0002417
Kipar, A., Burthe, S.J., Hetzel, U., Rokia, M.A., Telfer, S., Lambin, X., Begon, M. and Bennettet, M. (2014). Mycobacterium microti tuberculosis in its maintenance host, the field vole (Microtus agrestis): characterization of the disease and possible routes of transmission. Veterinary Pathology, 51: 903-914. https://doi.org/10.1177/0300985813513040
Lekko, Y. M., Ooi, P. T., Omar, S., Mazlan, M., Ramanoon, S.Z., Jasni, S., Jesse, F. and Che-Amat, A. (2020). Mycobacterium tuberculosis complex in wildlife: Review of current applications of antemortem and postmortem diagnosis. Veterinary world, 13, 1822-1836. https://doi.org/10.14202/vetworld.2020.1822-1836. PMID: 33132593
Loni, R., Mosavari, N., Tadayon, K., Keshavarz, R., Ghaem-Maghami, S., Dashtipour, S. and Mohammad Taheri, M. (2017). Isolation and identification of Mycobacterium tuberculosis complex bacteria from rodents of infected cattle farms in Khuzestan province. Journal of Veterinary Microbiology, 13: 109-119.
Moradi, E., Mosavari, N., Tebianian, M., Tadayon, K., Ghaderi, R., Soleymani-Babadi, K., Mohammad Taheri, M., Dashtipour, S., Loni, R., Moradi Garavand, M., Keshavarz, P., Azarvandi, A. and Aref Pajoohi, R. Pest rodents as the essential elements of Mycobacterium bovis controlling programs. International Journal of Mycobacteriology, 4: 137-144. https://doi.org/10.1016/j.ijmyco.2014.09.007
Moravkova, M., Slany, M., Trcka, I., Havelkova, M., Svobodova, J., Skoric, M., Heinigeova, B. and Pavlik, I. (2011). Human-to-human and human-to-dog Mycobacterium tuberculosis transmission studied by IS6110 RFLP analysis: a case report. Veterinární Medicína, 56: 314-317.
Mosavari, N., Karimi, A., Tadayon, K., Shahhosseini, G., Zavaran Hosseini, A. and Babaie, M. (2021). Evaluation of heating and irradiation methods for production of purified protein derivative (PPD) of Mycobacterium tuberculosis. Archives of Razi Institute, 75: 439-449. https://doi.org/10.22092/ari.2019.123082.1238
Palmer, M.V. (2006). Mycobacterium bovis infection in animals and humans. Emerging Infectious Disease, 12: 1306-1310. https://doi.org/10.3201/eid1208.060526
Quinn, P.J., Markey, B.K., Carter, M.E., Donnelly, W.J. and Leonard, F.C. (2002). Veterinary microbiology and microbial disease. 2st Edition. Iowa State University Press: 44-56.
Tortoli, E., Gitti, Z., Klenk, H.P., Lauria, S., Mannino, R. and Mantegani, P. (2013). Survey of 150 strains belonging to the Mycobacterium terrae complex and description of Mycobacterium engbaekii sp. nov., Mycobacterium heraklionense sp. nov. and Mycobacterium longobardum sp. nov. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 63: 401-411. https://doi.org/10.1099/ijs.0.038737-0
van Soolingen, D., de Haas, P.E., Kremer, K. (2001). Restriction fragment length polymorphism typing of mycobacteria. Methods in Molecular Medicine, 54: 165-203. https://doi.org/10.1385/1-59259-147-7:165. PMID: 21341076.
Warren, R.M., Gey van Pittius, N.C., Barnard, M., Hesseling, A., Engelke, E., de Kock, M., Gutierrez, M.C., Chege, G.K., Victor, T.C., Hoal, E.G. and van Helden, P.D. (2006). Differentiation of Mycobacterium tuberculosis complex by PCR amplification of genomic regions of difference. The International Journal of Tuberculosis And Lung Disease, 10: 818-822. PMID: 16850559
