ارزیابی اثرات پیش درمانی با دفروکسامین بر روی بیان ژن‌های آنژیوژنیک VEGF ، ANGP1 و TGFβ1در سلول‌های بنیادی مشتق از چربی بیماران مبتلا به دیابت نوع 2

الموضوعات : پاتوبیولوژی مقایسه ای

راضیه تجلی ¹ , اکرم عیدی ² , حسین احمدی تفتی ³ , عبدالرضا پازوکی ⁴ , علی محمد شریفی ⁵

1 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم و فناوری‌های همگرا، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران.
2 - گروه زیست شناسی، دانشکده علوم و فناوری‌های همگرا، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران.
3 - مرکز تحقیقات فناوری‌های پیشرفته در پزشکی قلب و عروق، بیمارستان مرکز قلب تهران، دانشکده پزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران.
4 - مرکز تحقیقات جراحی کم تهاجمی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران.
5 - -مرکز تحقیقات سلول های بنیادی و پزشکی بازساختی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران. - مرکز تحقیقات دارویی رازی و گروه فارماکولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران. - گروه مهندسی بافت، (NOCERAL)، گروه جراحی ارتوپدی، دانشکده پزشکی، دانشگاه مالایا، کوالالامپور، مالزی.

تاريخ الإرسال : 04 الأربعاء , ذو القعدة, 1444 تاريخ التأكيد : 19 الأحد , محرم, 1445 تاريخ الإصدار : 07 الأربعاء , صفر, 1445

الکلمات المفتاحية: سلول‌های بنیادی مشتق از بافت چ, دفروکسامین, آنژیوژنز, بیان ژن,

ملخص المقالة :

سلول‌های بنیادی مشتق از بافت چربی (ADSCs) یک درمان امیدوارکننده برای ترمیم زخم‌های دیابتی به شمار می‌آید. اما، اثربخشی درمان اتولوگ مبتنی برADSC‌های مشتق از بیماران مبتلا به دیابت نیاز به بهبود دارد. هدف از این پژوهش، بررسی اثر پیش درمانی با دفروکسامین بر روی بیان ژن‌های آنژیوژنیک در ADSC‌های دیابتی درمان شده با دفروکسامین بود. بدین منظور، بافت چربی شکمی از سه بیمار مبتلا به دیابت نوع 2 و سه فرد سالم در بیمارستان آتیه‌ی تهران گرفته شد و ADSCs با روش آنزیمی استخراج و تا پاساژ سه کشت داده شدند. ADSC‌های دیابتی با غلظت‌های 75، 150 و 300 میکرومولار دفروکسامین به مدت 24 و 48 ساعت تیمار شدند. سپس میزان بقای سلول‌ها با استفاده از تست WST1 و میزان بیان ژن‌های VEGF، ANGP1 و TFGβ1 در ADSC‌های نرمال، دیابتی و دیابتی درمان شده با دفروکسامین با تکنیک Real time PCR مورد بررسی قرار گرفت. نتایج مطالعه‌ی حاضر نشان داد که میزان بیان هر سه ژن‌‍‎ در نمونه‌های دیابتی نسبت به گروه نرمال به صورت معنی دار کاهش یافته بود (p<0/05). اما میزان بیان هر سه ژن بعد از درمان سلول‌ها با غلظت‌های 150 و 300 میکرومولار دفروکسامین به مدت 24 ساعت به صورت محسوسی نسبت به گروه دیابتی درمان نشده افزایش یافته بود (P< 0/05). به طور کلی، نتایج مطالعه‌ی ما نشان داد که دفروکسامین به طور قابل‌ توجهی باعث افزایش معنی‌دار بیان VEGF، ANGP1 و TGFβ1 در ADSCهای دیابتی و افزایش ظرفیت آنژیوژنز آن‌ها می‌شود.

المصادر:

1.Gao S, Zhang Y, Liang K, Bi R, Du Y. Mesenchymal Stem Cells (MSCs): A Novel Therapy for Type 2 Diabetes. Stem Cells International. 2022;2022. Available from: doi: 10.1155/2022/8637493.

2. Spampinato SF, Caruso GI, De Pasquale R, Sortino MA, Merlo S. The treatment of impaired wound healing in diabetes: looking among old drugs. Pharmaceuticals. 2020;13(4):60. Available from: doi: /10.3390/ph13040060.

3. El Hage R, Knippschild U, Arnold T, Hinterseher I. Stem Cell-Based Therapy: A Promising Treatment for Diabetic Foot Ulcer. Biomedicines. 2022;10(7):1507. Available from: doi: 10.3390/biomedicines10071507.

4. Blumberg SN, Berger A, Hwang L, Pastar I, Warren SM, Chen W. The role of stem cells in the treatment of diabetic foot ulcers. Diabetes research and clinical practice. 2012;96(1):1-9. Available from: doi:10.1016/j.diabres.2011.10.032.

5. Liu R, Dong R, Chang M, Liang X, Wang HC. Adipose-derived stem cells for the treatment of diabetic wound: from basic study to clinical application. Frontiers in Endocrinology. 2022;13. Available from: doi: 10.3389/fendo.2022.882469.

6. Cianfarani F, Toietta G, Di Rocco G, Cesareo E, Zambruno G, Odorisio T. Diabetes impairs adipose tissue–derived stem cell function and efficiency in promoting wound healing. Wound repair and regeneration. 2013;21(4):545-53. Available from: doi: 10.1111/wrr.12051.

7. Rennert RC, Sorkin M, Januszyk M, Duscher D, Kosaraju R, Chung MT, et al. Diabetes impairs the angiogenic potential of adipose-derived stem cells by selectively depleting cellular subpopulations. Stem cell research & therapy. 2014;5(3):1-12. Available from: doi: 10.1186/scrt468.

8. Noronha NdC, Mizukami A, Caliári-Oliveira C, Cominal JG, Rocha JLM, Covas DT, et al. Priming approaches to improve the efficacy of mesenchymal stromal cell-based therapies. Stem cell research & therapy. 2019;10(1):1-21. Available from: doi: 10.1186/s13287-019-1224-y.

9. Liu GS, Peshavariya HM, Higuchi M, Chan EC, Dusting GJ, Jiang F. Pharmacological priming of adipose‐derived stem cells for paracrine VEGF production with deferoxamine. Journal of tissue engineering and regenerative medicine. 2016;10(3):E167-E76. Available from: doi: 10.1002/term.1796.

10. Zimna A, Kurpisz M. Hypoxia-inducible factor-1 in physiological and pathophysiological angiogenesis: applications and therapies. BioMed research international. 2015;2015. Available from: doi: 10.1155/2015/549412.

11. Sun J, Shen H, Shao L, Teng X, Chen Y, Liu X, et al. HIF-1α overexpression in mesenchymal stem cell-derived exosomes mediates cardioprotection in myocardial infarction by enhanced angiogenesis. Stem Cell Research & Therapy. 2020;11:1-13. Available from: doi: 10.1186/s13287-020-01881-7.

12. Krock BL, Skuli N, Simon MC. Hypoxia-induced angiogenesis: good and evil. Genes & cancer. 2011;2(12):1117-33. Available from: doi: 10.1177/1947601911423654.

13. Mehrabani M, Najafi M, Kamarul T, Mansouri K, Iranpour M, Nematollahi M, et al. Deferoxamine preconditioning to restore impaired HIF‐1α‐mediated angiogenic mechanisms in adipose‐derived stem cells from STZ‐induced type 1 diabetic rats. Cell proliferation. 2015;48(5):532-49. Available from: doi: 10.1111/cpr.12209.

14. Präbst K, Engelhardt H, Ringgeler S, Hübner H. Basic colorimetric proliferation assays: MTT, WST, and resazurin. Cell viability assays: methods and protocols. 2017:1-17. Available from: doi: 10.1007/978-1-4939-6960-9_1.

15. Zhang J, Liu Y, Chen Y, Yuan L, Liu H, Wang J, et al. Adipose-derived stem cells:current applications and future directions in the regeneration of multiple tissues. Stem Cells International. 2020;2020. Available from: doi: Available from: doi: 10.1155/2020/8810813.

16. Desjardins P, Conklin D. NanoDrop microvolume quantitation of nucleic acids. JoVE (Journal of Visualized Experiments). 2010(45):e2565.Available from: doi: 10.3791/2565.

17. Tu H, Avenarius MR, Kubatko L, Hunt M, et al. Distinct Patterns of Emergence of SARS-CoV-2 Spike Variants including N501Y in Clinical Samples in Columbus Ohio. BioRxiv. 2021; Available from: doi: 10.1101/2021.01.12.426407

18. Thornton B, Basu C. Rapid and simple method of qPCR primer design. PCR primer design. 2015:173-9.

19. Rassouli A, Shihmani B, Mehrzad J, Shokrpoor S. The immunomodulatory effect of minocycline on gene expression of inflammation related cytokines in lipopolysaccharide-treated human peripheral blood mononuclear cells. Animal Biotechnology. 2022:1-7.Available from: doi: 10.1080/10495398.2022.2077743

20. Efimenko A, Starostina E, Kalinina N, Stolzing A. Angiogenic properties of aged adipose derived mesenchymal stem cells after hypoxic conditioning. Journal of translational medicine. 2011;9:1-13.Avalable from: doi: 10.1186/1479-5876-9-10.

21. Prism G. one-way ANOVA followed by Tukey’s multiple comparison test was performed using GraphPad Prism version 7.00 for Windows. 2016.

22. Zhang J, Liu Y, Chen Y, Yuan L, Liu H, Wang J, et al. Adipose-derived stem cells: current applications and future directions in the regeneration of multiple tissues. Stem Cells International. 2020;2020. Available from: doi: 10.1155/2020/8810813.

23. Shin L, Peterson DA. Impaired therapeutic capacity of autologous stem cells in a model of type 2 diabetes. Stem cells translational medicine. 2012;1(2):125-35.Available from: doi: 10.5966/sctm.2012-0031.

24. Li M, Jiang Y, Hou Q, Zhao Y, Zhong L, Fu X. Potential pre-activation strategies for improving therapeutic efficacy of mesenchymal stem cells: current status and future prospects. Stem Cell Research & Therapy. 2022;13(1):1-21. Available from: doi: 10.1186/s13287-022-02822-2.

25. Yang Y, Lee EH, Yang Z. Hypoxia-Conditioned Mesenchymal Stem Cells in Tissue Regeneration Application. Tissue Engineering Part B: Reviews. 2022. Available from: doi: 10.1089/ten.teb.2021.0145.

26. Yusoff FM, Nakashima A, Kawano K-i, Kajikawa M, Kishimoto S, Maruhashi T, et al. Implantation of Hypoxia-Induced Mesenchymal Stem Cell Advances Therapeutic Angiogenesis. Stem Cells International. 2022;2022. Available from: doi: 10.1155/2022/6795274.

27. Isik B, Thaler R, Goksu BB, Conley SM, Al-Khafaji H, Mohan A, et al. Hypoxic preconditioning induces epigenetic changes and modifies swine mesenchymal stem cell angiogenesis and senescence in experimental atherosclerotic renal artery stenosis. Stem cell research & therapy. 2021;12(1):1-13. Available from: doi: 10.1186/s13287-021-02310-z.

28. Nowak-Stępniowska A, Osuchowska PN, Fiedorowicz H, Trafny EA. Insight in Hypoxia-Mimetic Agents as Potential Tools for Mesenchymal Stem Cell Priming in Regenerative Medicine. Stem Cells International. 2022;2022. Available from: doi: 10.1155/2022/8775591.

29. Xu J, Zuo C. The Fate Status of Stem Cells in Diabetes and its Role in the Occurrence of Diabetic Complications. Frontiers in Molecular Biosciences. 2021;8:745035. Available from: doi: 10.3389/fmolb.2021.745035.

30. Gu JH, Lee JS, Kim DW, Yoon ES, Dhong ES. Neovascular potential of adipose‐derived stromal cells (ASCs) from diabetic patients. Wound Repair and Regeneration. 2012;20(2):243-52. Available from: doi: 10.1111/j.1524-475X.2012.00765.x.

31. Yin M, Zhang Y, Yu H, Li X. Role of hyperglycemia in the senescence of mesenchymal stem cells. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 2021;9:665412. Available from: doi: 10.3389/fcell.2021.665412.

32. Oses C, Olivares B, Ezquer M, Acosta C, Bosch P, Donoso M, et al. Preconditioning of adipose tissue-derived mesenchymal stem cells with deferoxamine increases the production of pro-angiogenic, neuroprotective and anti-inflammatory factors: Potential application in the treatment of diabetic neuropathy. PLoS One. 2017;12(5):e0178011. Available from: doi: 10.1371/journal.pone.0178011.

33. Xie Y, Hou W, Song X, Yu Y, Huang J, Sun X, et al. Ferroptosis: process and function. Cell Death & Differentiation. 2016;23(3):369-79. Available from: doi: 10.1038/cdd.2015.158. Epub 2016 Jan 22.

34. Mursaleen L, Chan SHY, Noble B, Somavarapu S, Zariwala MG. Curcumin and N-Acetylcysteine Nanocarriers Alone or Combined with Deferoxamine Target the Mitochondria and Protect against Neurotoxicity and Oxidative Stress in a Co-Culture Model of Parkinson’s Disease. Antioxidants. 2023;12(1):130. Available from: doi: 10.3390/antiox12010130.

35. Ikeda Y, Tajima S, Yoshida S, Yamano N, Kihira Y, Ishizawa K, et al. Deferoxamine promotes angiogenesis via the activation of vascular endothelial cell function. Atherosclerosis. 2011;215(2):339-47. Available from: doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2011.01.009.

36. Holden P, Nair LS. Deferoxamine: an angiogenic and antioxidant molecule for tissue regeneration. Tissue Engineering Part B: Reviews. 2019;25(6):461-70. Available from: doi: 10.1089/ten.TEB.2019.0111.

37. Howland MA. Risks of parenteral deferoxamine for acute iron poisoning. Journal of Toxicology:34(5):491-7. Available from: doi: 10.3109/15563659609028006.

38. Davis CK, Jain SA, Bae O-N, Majid A, Rajanikant G. Hypoxia mimetic agents for ischemic stroke. Frontiers in cell and developmental biology. 2019;6:175. Available from: doi: 10.3389/fcell.2018.00175.