بررسی پاسخ‌های ایمنی ذاتی جوجه‌ گوشتی به واکسن نیوکاسل

الموضوعات : پاتوبیولوژی مقایسه ای

پریسا میرزائی ¹ , غلامرضا نیکبخت ² , احمد نازک تبار ³ , افرا وطن خواه ⁴

1 - دانشجوی تخصص ایمنی شناسی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران-ایران
2 - گروه میکروبیولوژی و ایمونولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران-ایران
3 - گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه فناوری‌های نوین آمل، آمل-ایران
4 - گروه میکروبیولوژی و ایمونولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران-ایران

تاريخ الإرسال : 22 الأربعاء , رجب, 1443 تاريخ التأكيد : 22 الأربعاء , رجب, 1443 تاريخ الإصدار : 15 الإثنين , محرم, 1443

الکلمات المفتاحية: پاسخ فاز حاد, استرس, جوجه گوشتی, واکسن, نیوکاسل,

ملخص المقالة :

پاسخ‌های ایمنی ذاتی جوجه‌های گوشتی به واکسن‌های مختلف نیوکاسل می‌تواند متفاوت باشد. این تفاوت‌ها در سطوح مختلف هومورال و یاخته‌ای ایمنی ذاتی و در طی فرایند التهاب و پاسخ فاز حاد قابل بررسی هستند. 150 جوجه گوشتی نژاد راس 308 که همه از یک گله مولد تهیه شدند و به پنج گروه تقسیم شدند. سه گروه به ترتیب با واکسن‌های غیر فعال روغنی به روش تزریقی، ویتاپست و لاسوتا به روش چشمی واکسینه شدند. دو گروه دیگر به عنوان شاهدهای منفی محلول نمکی-بافری-فسفاتی(PBS) دریافت کردند. خونگیری از جوجه‌ها در یک روز قبل از واکسیناسیون و دو روز متوالی پس از واکسیناسیون انجام شد. میزان سرم آمیلوئید آ (SAA) و آلفا-یک اسید گلیکوپروتئین (AGP) در پلاسما با روش الایزای اختصاصی طیور اندازه گیری شد. همچنین شمارش گلبول‌های سفید خون و محاسبه نسبت هتروفیل به لنفوسیت به عنوان شاخص استرس صورت گرفت. نتایج به دست آمده نشان دادند که تزریق واکسن موجب افزایش پروتئین‌ فاز حاد SAA و ایجاد استرس در گله‌های طیور می‌شود وبر میزان AGP تاثیر چندانی نداشت. واکسن غیرفعال تزریقی بیشترین اثر را در میان واکسن‌ها داشت و همچنین موجب افزایش منوسیت و کاهش خفیف بازوفیل‌ها در گلبول‌های سفید خون شد. با شناسایی تاثیرات واکسن‌های مختلف بر ایمنی ذاتی می‌توان در تصمیم‌گیری برای انتخاب واکسن موردنیازهر گله اقدام کرد. همچنین بررسی اثرات تزریق واکسن بر پروتئین‌های فاز حاد و استرس می‌تواند به طراحی هرچه بهتر واکسن‌ها و مدیریت گله‌های طیور کمک نماید.

المصادر:

1. Absalón A, Cortés-Espinosa DV, Lucio E, Miller P, Afonso C. Epidemiology, control, and prevention of Newcastle disease in endemic regions: Latin America. Tropical animal health and production. 2019;51(5):1033-48.


2. Alexander DJ, Aldous EW, Fuller CM. The long view: a selective review of 40 years of Newcastle disease research. Avian pathology. 2012;41(4):329-35.


3. Dimitrov KM, Afonso CL, Yu Q, Miller PJ. Newcastle disease vaccines—A solved problem or a continuous challenge? Veterinary microbiology.2017;206:126-36.


4. Reynolds D, Maraqa A. Protective immunity against Newcastle disease: the role of antibodies specific to Newcastle disease virus polypeptides. Avian diseases. 2000:138-44.


5. Eckersall P, Bell R. Acute phase proteins: Biomarkers of infection and inflammation in veterinary medicine. The veterinary journal. 2010;185(1):23-7.


6. Perez L. Acute phase protein response to viral infection and vaccination. Archives of biochemistry and biophysics. 2019;671:196-202.


7. Bakogiannis C, Sachse M, Stamatelopoulos K, Stellos K. Platelet-derived chemokines ininflammation and atherosclerosis. Cytokine. 2019;122:154157.

8. Scanzello CR. Chemokines and inflammation in osteoarthritis: insights from patients and animal models. Journal of Orthopaedic Research.2017;35(4):735-9.


9. Adler KL, Peng PH, Peng RK, Klasing KC. The kinetics of hemopexin and α1-acid glycoprotein levels induced by injection of inflammatory agents in chickens. Avian diseases. 2001:289-96.


10. Charlie-Silva I, Klein A, Gomes JM, Prado EJ, Moraes AC, Eto SF, et al. Acute-phase proteins during inflammatory reaction by bacterial infection: Fish-model. Scientific reports. 2019;9(1):1-13.


11. Thomas F, Geraghty T, Simões P, Mshelbwala F, Haining H, Eckersall P. A pilot study of acute phase proteins as indicators of bovine mastitis caused by different pathogens. Research in veterinary science. 2018;119:176-81.


12. Marques AT, Nordio L, Lecchi C, Grilli G, Giudice C, Ceciliani F. Widespread extrahepatic expression of acute-phase proteins in healthy chicken (Gallus gallus) tissues. Veterinary immunology and immunopathology. 2017;190:10-7.


13. Petersen HH, Nielsen JP, Heegaard PMH. Application of acute phase protein measurements in veterinary clinical chemistry. Veterinary research. 2004;35(2):163-87.


14. Sack GH. Serum amyloid A–a review. Molecular Medicine. 2018;24(1):1-27.


15. Smole U, Gour N, Phelan J, Hofer G, Köhler C, Kratzer B, et al. Serum amyloid A is a soluble pattern recognition receptor that drives type 2 immunity. Nature immunology.2020;21(7);756-65.


16. Ceciliani F, Lecchi C. The immune functions of α1 acid glycoprotein. Current Protein and Peptide Science. 2019;20(6):505-24.


17. Finkelstein M, Grasman K, Croll D, Tershy B, Smith D. Immune function of cryopreserved avian peripheral white blood cells: potential biomarkers of contaminant effects in wild birds. Archives of environmental contamination and toxicology. 2003;44(4):0502-9.


18. Mitchell EB, Johns J. Avian hematology and related disorders. Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice. 2008;11(3):501-22.


19. Kaab H, Bain MM, Eckersall PD. Acute phase proteins and stress markers in the immediate response to a combined vaccination against Newcastle disease and infectious bronchitis viruses in specific pathogen free (SPF) layer chicks. Poultry science. 2018;97(2):463-9.


20. Bello MB, Yusoff K, Ideris A, Hair-Bejo M, Peeters BP, Omar AR. Diagnostic and vaccination approaches for Newcastle disease virus in poultry: The current and emerging perspectives. BioMed research international. 2018;2018.