دینامیک ریشه در قلمه‌های Bougainvillea glabra Choisy: بررسی تأثیر نوع اکسین، غلظت و نوع قلمه در طول زمان در دو واریته
الموضوعات : مجله گیاهان زینتیمحمدرضا صالحی سلیم 1 , مژگان زنگنه 2
1 - گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ایران
2 - گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ایران
الکلمات المفتاحية: اسید استیک, تولید گلخانه‌ای, تکثیر, تنوع فصلی, قلمه نرم,
ملخص المقالة :
این بررسی تأثیر سه نوع اکسین- اسید ایندول بوتیریک (IBA)، اسید نفتالین‌استیک (NAA) و اسید دی‌کلروفنوکسی‌استیک (2,4-D) را بر ریشه‌زایی قلمه‌های نرم، نیمه‌چوبی و چوبی گل‌کاغذی (Bougainvillea glabra Choisy) در اوایل زمستان و بهار تحت شرایط گلخانه‌ای بررسی کرد. تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی با غلظت‌های ۲۵۰، ۵۰۰ و ۱۰۰۰ میلی‌گرم در لیتر تهیه شدند. قلمه‌های ساقه به مدت ۲۴ ساعت در این محلول‌ها غوطه‌ور شدند و سپس به محیط رشد منتقل شدند. آزمایش به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با ۱۰ تکرار طراحی شد. نتایج نشان داد که زمان (زمستان در مقابل بهار) تأثیر معنی‌داری بر درصد ریشه‌زایی ندارد. با این حال، تفاوت‌های معنی‌داری در شاخه‌دهی مشاهده شد. کوتاه‌ترین میانگین طول شاخه (2 سانتی‌متر) در اوایل زمستان و بلندترین طول (7/4 سانتی‌متر) در اوایل بهار ثبت شد. تفاوت‌های معنی‌داری نیز بین واریته‌ها یافت شد، با عملکرد بهتر واریته قرمز نسبت به واریته سفید. قلمه‌های چوبی نتایج بهتری نسبت به قلمه‌های نرم و نیمه‌چوبی داشتند. از میان تنظیم‌کننده‌های رشد گیاهی، قلمه‌هایی که با ۲۵۰ میلی‌گرم در لیتر IBA یا NAA تیمار شده بودند، بالاترین درصد ریشه‌زایی را نشان دادند. افزایش غلظت این اکسین‌ها منجر به کاهش ریشه‌زایی شد، کمترین درصد ریشه‌زایی در ۱۰۰۰ میلی‌گرم در لیتر 2,4-D مشاهده شد. این مطالعه نشان داد که نوع و غلظت اکسین‌ها تأثیر معنی‌داری بر ریشه‌زایی و شاخه‌دهی قلمه‌های گل‌کاغذی دارد، با نتایج بهینه در ۲۵۰ میلی‌گرم در لیتر IBA و .NAA این یافته‌ها نشان می‌دهد که انتخاب دقیق نوع و غلظت اکسین، همراه با توجه به نوع قلمه و زمان‌بندی، برای تکثیر موفقیت‌آمیز گل‌کاغذی بسیار مهم است.
Abo-Elghiet, F., Ahmed, A. H., Aly, H. F., Younis, E. A., Rabeh, M. A., Alshehri, S. A., Alshahrani, K. S. A. and Mohamed, S.A. 2023. D-Pinitol content and antioxidant and antidiabetic activities of five Bougainvillea spectableilis Willd. cultivars. Pharmaceuticals, 16: 1008. Doi:10.3390/ph16071008
Aghaali, M. 2019. In vitro micropropagation of selected Bougainvillea sp. through callus induction culture. Journal of Agriculture and Veterinary Science, 6(6): 1-6. Doi: 10.9790/2380-06060106
Ashok, A. D. and Ravivarman, J. 2021. Influence of IBA on propagating hardwood cuttings of Lagerstroemia indica (L.) PERS. International Journal of Chemical Studies, 9(1): 3327-3329. Doi: 10.22271/chemi.2021.v9.i1au.11746
Asl, M. B., Shakueefar, S. and Valipour, V. 2012. Effects of indole-3-butyric acid on the rooting ability of semi-hardwood Bougainvillea sp. cuttings. Modern Applied Science, 6(5): 121. Doi: 10.5539/mas.v6n5p121.
Cheng, C., Ma, N., Zheng, Y. and Xi, L. 2023. Editorial: Growth regulation in horticultural plants: New insights in the omics era. Frontiers in Plant Science, 14: 1305520. Doi: 10.3389/fpls.2023.1305520
Dalbro, S. 1975. Ethylene evolution stimulated by succinic acid-2, 2-dimethylhydrazide in endogenous growth substance in normal and dwarf mutants of cort. Journal of the American Society for Horticultural Science, 100(2): 524-527.
Danshūr, M. 2013. Effect of growing media on morphophysiological characteristics of some ground cover plants for usage in an external green wall system. Master’s thesis, Ferdowsi University of Mashhad, Iran.
De Klerk, G. J., Van der Krieken, W. and De Jong, J. 1999. The formation of adventitious roots: New concepts, new possibilities. Annals of Botany, 84(6): 767-776. Doi: 10.1006/anbo.1999.0973
Dhillon, G. P. 2017. Effect of growth hormone (IBA and NAA) on rooting and sprouting behaviour of Gmelina arborea Roxb. Indian Forester, 1432 (2): 81-85. Doi: 10.13140/RG.2.2.317401593
Druege, U., Franken, P. and Hajirezaei, M. R. 2016. Plant hormone homeostasis, signaling, and function during adventitious root formation in cuttings. Frontiers in Plant Science, 7: 381. Doi: 10.3389/fpls.2016.00381
Ersoy, N. and Aydin, M. 2008. The effect of some hormone and humidity levels on rooting of mahaleb (Prunus mahaleb) soft wood top cutting. Suleyman Demirel Universitesi Ziraat Fakultesi Degisi. Turkey.
Gehlot, A., Gupta, R. K., Tripathi, A., Arya, I. D. and Arya, S. 2014. Vegetative propagation of Azadirachta indica: Effect of auxin and rooting media on adventitious root induction in mini-cuttings. Advances in Forestry Science, 1(1): 1-9. Doi: 10.3832/ifor1189-007
Geneve, R. L. and Heuser, C. W. 1982. The effect of IAA, IBA, NAA, and 2,4-D on root promotion and ethylene evolution in Vigna radiata cuttings. Journal of the American Society for Horticultural Science, 107(2): 202-205. Doi: 10.21273/JASHS.107.2.202
Hartmann, H.T., Kester, D.E., Davies, F.T. and Geneve, R.L. 2002. Plant propagation: Principles and practices. 7th Edition, Prentice-Hall, Englewood Cliffs.
Kaushik, S. and Shukla, N. 2020. A review on effect of IBA and NAA and their combination on the rooting of stem cuttings of different ornamental crops. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 9(3): 1881-1885. Doi: 10.22271/phyto.2020.v9.i3.329
Levengood, H., Zhou, Y. and Zhang, C. 2024. Advancements in plant transformation: From traditional methods to cutting-edge techniques and emerging model species. Plant Cell Reports, 43: 273. Doi: 10.3390/agronomy14102289
Lin, H., Xu, J., Wu, K., Gong, C., Jie, Y., Yang, B. and Chen, J. 2024. An efficient method for the propagation of Bougainvillea glabra ‘New River’ (Nyctaginaceae) from in vitro stem segments. Forests, 15(3): 519. Doi: 10.3390/f15030519
Loreti, F. and Morini, S. 1985. Rooting responses to BS, B2 and GF677 rootstocks cuttings. Acta Horticulturae, 173: 261-269. Doi: 10.17660/ActaHortic.1985.173.30
Mumtaz, S., Kasana, M. I., Alam, R., Khan, N., Noman, M., Sabahat, S. and Shah, H. 2022. Rooting in hardwood cuttings of different litchi (Litchi chinensis) cultivars as influenced by varied concentrations of IBA. Pakistan Journal of Agriculture Research, 35(4): 637-645. Doi: 10.17582/journal.pjar/2022/35.4.637.645
OuYang, F., Wang, J. and Li, Y. 2015. Effects of cutting size and exogenous hormone treatment on rooting of shoot cuttings in Norway spruce [Picea abies (L.) Karst.]. New Forests, 46: 91–105. Doi: 10.1007/s11056-014-9449-1
Rademacher, W. 2015. Plant growth regulators: Backgrounds and uses in plant production. Journal of Plant Growth Regulation, 34: 845-872. Doi: 10.1007/s00344-015-9541-6
Sabagh, A. E., Hossain, A., Barutçular, C., Islam, M. S. and Raza, M. A. 2021. Effect of different concentrations of IBA and time of taking cutting on rooting, growth, and survival of Ficus binnendijkii ‘Amstel Queen’ cuttings. African Journal of Biotechnology, 20 (3): 123-128. Doi: 10.5897/AJB2021.17123
Santos-Rufo, A., Rodríguez-Solana, R., Fernández-Recamales, Á., Sayago-Gómez, A. and Weiland-Ardáiz, C. 2024. Machine learning unveils the action of different endogenous phenolic compounds present or formed along the rooting development in olive stem cuttings. Scientia Horticulturae, 331: 113175.
Saradha, M. and Samydurai, P. 2015. Effect of different rooting media and plant growth hormones on rooting of critically endangered species, Utleria salicifolia leafy stem cuttings: A conservation effort. Indian Journal of Plant Sciences, 4(4): 30-34.
Sattler, R. and Perlin, L. 1982. Floral development of Bougainvillea spectableilis Willd., Boerhaavia diffusa L. and Mirabilis jalapa L. (Nyctaginaceae). Botanical Journal of the Linnean Society, 84(3): 161-182. Doi: 10.1111/j.1095-8339.1982.tb00532.x
Selby, C., Kennedy, S. J. and Harvey, B. M. R. 1992. Adventitious root formation in hypocotyl cuttings of Picea sitchensis (Bong.) Carr. - the influence of plant growth regulators. New Phytologist, 120: 453-457. Doi: 10.1111/j.1469-8137.1992.tb01792.x
Seyedi, A., Esmaeili, A., Zadeh, K. N. A. and Porsiabidi, M. M. 2014. Comparative evaluation of the rooting in cuttings in Bougainvillea glabra L. International Journal of Farming and Allied Sciences, 3(8): 872-875.
Singh, K., Rawat, J. and Tomar, Y. 2011. Influence of IBA on rooting potential of torch glory Bougainvillea glabra during winter season. Journal of Horticultural Science & Ornamental Plants, 3(2): 162-165.
Sytar, O., Kumar, A., Latowski, D. and Strzałka, K. 2019. Influence of length of cutting on root and shoot growth in dragon fruit (Hylocereus undatus). Journal of Plant Growth Regulation, 41(3): 567-576.
Tripathi, S., Singh, A. and Sharma, R. 2022. Influence of length of cutting on root and shoot growth in dragon fruit (Hylocereus undatus). Journal of Plant Growth Regulation, 41(3): 567-576.
Vives-Peris, V., López-Climent, M. F., Pérez-Clemente, R. M. and Gómez-Cadenas, A. 2020. Root involvement in plant responses to adverse environmental conditions. Agronomy, 10 (7): 942. Doi: 10.3390/agronomy10070942
Yan, Y. H., Li, J. L., Zhang, X. Q., Yang, W. Y., Wan, Y., Ma, Y. M., Zhu, Y. Q. and Peng, Y. 2014. Effect of naphthalene acetic acid on adventitious root development and associated physiological changes in stem cutting of Hemarthria compressa. PLOS One, 9(3): e90700. Doi: 10.1371/journal.pone.0090700
Zhao, Y., Chen, Y., Jiang, C. Lu, M.Z. and Zhang, J. 2022. Exogenous hormones supplementation improve adventitious root formation in woody plants. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 10: 1009531. Doi: 10.3389/fbioe.2022.1009531
Zheng, L., Xiao, Z. and Song, W. 2020. Effects of substrate and exogenous auxin on the adventitious rooting of Dianthus caryophyllus L. HortScience, 55(2): 170-173.
