بررسی وضعیت آلودگی به بیماری ساق سیاه توتون در استان گلستان*
الموضوعات :
دو فصلنامه تحقیقات بیماریهای گیاهی
سید افشین سجادی
1
,
محمدعلی آقاجانی
2
,
هدی عاصمی
3
,
محمدرضا نجفی
4
1 - مربی پژوهش، گروه گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش تیرتاش، بهشهر، ایران
2 - استادیار پژوهش، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان، گرگان، ایران
3 - مربی پژوهش، گروه گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش تیرتاش، بهشهر، ایران.
4 - مربی پژوهش، گروه گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش تیرتاش، بهشهر، ایران.
تاريخ الإرسال : 12 الأحد , جمادى الأولى, 1437
تاريخ التأكيد : 08 الأربعاء , ربيع الأول, 1438
تاريخ الإصدار : 04 الأربعاء , ربيع الأول, 1439
الکلمات المفتاحية:
Phytophthora nicotianae,
وقوع بیماری,
سطح زیر منحنی پیشرفت بیماری,
دوره آلودگی,
ملخص المقالة :
قارچPhytophthora nicotianae (=P. parasitica) با ایجاد بیماری ساق سیاه توتون یکی از عوامل مهم بیماریزا در مزارع توتون میباشد. بیماری میتواند در تمام مراحل رشد گیاه رخ دهد و خسارت در برخی مزارع میتواند به صد درصد برسد. جهت بررسی وضعیت آلودگی به این بیماری در مزارع توتون استان گلستان، در سال زراعی 1393، تعداد 45 مزرعه توتون در پنج منطقه مختلف گرگان (تقرتپه، جعفرآباد، قرق، نوده ملک و والشآباد) و چهار منطقه مختلف علیآباد (پیچکمحله، برفتان، فاضلآباد و الازمن) انتخاب و از زمان ظهور علایم بیماری طی بازدیدهای منظم هفتگی، میزان بیماری روی اندامهای هوایی توتون در طول دوره آلودگی در مزارع یادداشتبرداری شد. تجزیهی آماری دادهها با استفاده از نرمافزار استت گرافیکز سنتوریون 15 صورت پذیرفت. از لحاظ حداکثر وقوع بیماری در مناطق مختلف اختلاف معنیداری وجود نداشت اما در مزارع مختلف یک روستا اختلاف معنیداری در سطح احتمال یک درصد وجود داشت. حداکثر میزان آلودگی در مزرعهای با 4/34 درصد آلودگی در روستای والش آباد دیده شد و در مجموع روستای والش آباد با 96/22 درصد بیشترین آلودگی و روستای نودهملک کمترین آلودگی (72/13درصد) را دارا بود. از لحاظ سطوح زیر منحنیهای پیشرفت بیماری نیز بین مناطق اختلاف معنیداری وجود نداشت، اما در مزارع مختلف اختلاف معنیداری در سطح احتمال یک درصد وجود داشته است. حداکثر سطح زیر منحنی پیشرفت بیماری در یکی از مزارع روستای قرق (3/1743) بود. در مجموع روستای برفتان (1146) بیشترین سطح زیر منحنی پیشرفت بیماری و روستای نودهملک (76/641) کمترین سطح زیر منحنی پیشرفت بیماری را داشت. نتایج حاصل از این بررسی نشان میدهد بیماری ساق سیاه توتون در تمام مناطق توتونکاری استان گلستان با میزان وقوع متفاوت گسترش دارد.
المصادر:
Anonymous. 2012. Statistical repertoire of Iranian Tobacco Company. Behshahr: Iranian Tobacco Company Publishing. 52p. (In Persian).
Campbell C L and Madden L V. 1990. Introduction to plant Disease Epidemiology. London: John Wiley & Sons, Inc. 532 p.
Campbell C L, Jacobi W R, Powell N T and Main C E. 1984. Analysis of disease progression and the randomness of occurrence of infected plants during tobacco black shank epidemics. Phytopathology 74: 230–235.
Cardoso J E, Santos A A, Rossetti A G and Vidal J C. 2004. Relationship between incidence and severity of cashew gummosis in semiarid north-eastern Brazil. Plant Pathology 53: 363–367.
Elahinia A. 1998. Mycology and plant pathology. Rasht: University of Guilan Publishing. 533 p. (In Persian).
Ershad J, Zalpour N and Makki M. 1974. Occurrence of black shank disease of tobacco in Iran. Iranian Journal of Plant Pathology 10 (1): 92–100.
Ferrin D M and Mitchell D J. 1986. Influence of initial density and distribution of inoculum on the epidemiology of tobacco black shank. Phytopathology 76: 1153–1158.
Ferrin D M and Mitchell D J. 1986. Influence of soil water status on the epidemiology of tobacco black shank. Phytopathology 76: 1213–1217.
Guan J and Nutter FWJ. 2003. Quantifying the interarater repeatability and interrater reliability of visual and remote-sensing disease-assessment methods in the alfalfa foliar pathosystem. Canadian Journal of Plant Pathology 25: 143–149.
Jacobi W R, Main C E and Powell N T. 1983. Influence of temperature and rainfall on the development of tobacco black shank. Phytopathology 73: 139–143.
James W C. 1971. An illustrated series of assessment keys for plant disease, their preparation and usage. Canadian Plant Disease Survey 51: 39–65.
Johnson A W, Csinos A S, Golden A M and Glaze N C. 1992. Chemigation for control of black shank-root-knot complex and weeds in tobacco. Supplement to Journal of Nematology 24(4S): 648–655.
Kannwischer M E and Mitchell D J. 1978. The influence of a fungicide on the epidemiology of black shank of tobacco. Phytopathology 68: 1760–1765.
Lucas G B. 1975. Disease of Tobacco, 3rd edition. Releight: Biological consulting Associates. 621pp.
Najjafi M, Salavati M, Sajjadi A and Afshari Azad H. 2013. Efficacy of some fungicides against tobacco damping off caused by soilborne pathogens. Paper presented at: 21th Iranian Plant Protection Congress; 23-26 August; Urmia, Iran.
Powell N T and Nusbaum R. 1960. The black shank root knot complex in flue cured tobacco.Phytopathology 50: 899–906
Sajjadi A and Assemi H. 2012.Antifungal activity of plant extracts of catmint, tobacco and thyme on fungal pathogens of tobacco. Biological Control of Pests and Plant Diseases 3(1): 41–52.
Sajjadi A and Assemi H. 2012.Identification of pathogenic soilborne fungi of tobacco in Golestan province fields. Applied Plant Protection 1(3): 233–248.
Sajjadi A, Hosseininejad A and Assemi H. 2014. Identification and physiological races of root-knot nematode species (Meloidogyne spp.) in the tobacco fields in Golestan province, Iran. Applied Plant Protection 1(3): 233–248.
Shengfu Y, Shew H D and Barker K R. 1994. International of Meloidogyne incognita, Phytophthora nicotianae var nicotianae and Metalaxyl on resistant and susceptible tobacco. Journal of Nematology 26(4): 538–571.
Shew H D. 1987. Effect of host resistance on spread of Phytophthora parasitica var. nicotianae and subsequent development of tobacco black shank under field conditions. Phytopathology 77: 1090–1093.
Van Jaarsveld E, Wingfield M J and Drenth A. 2003. A Rapid seedling based screening technique to assay tobacco for resistance to Phytophthora nicotianae. Journal of Phytopathology 151: 389–394.
_||_